Post on 02-Oct-2018
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
CARRERA DE ODONTOLOGÍA
“EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS
RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA CLÍNICA DE
RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”
PROYECTO DE TITULACIÓN PRESENTADO COMO REQUISITO
PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE ODONTÓLOGO
Autor: FONSECA PALLANGO JORGE SANTIAGO
Tutor: Dr. JUAN VITERI
Septiembre - 2017
ii
DERECHOS DEL AUTOR
Yo, Jorge Santiago Fonseca Pallango en calidad de autor del trabajo de investigación de
tesis realizada sobre “EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS
RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR”, por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR, hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o de parte de los que
contienen esta obra, con fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8; 19 y además pertinentes de la Ley de Prioridad Intelectual y su
Reglamento.
También autorizo a la Universidad Central del Ecuador realizar la digitalización y
publicación de este trabajo de investigación en el repositorio virtual, de conformidad a lo
dispuesto en el Art. 144 de la Ley Orgánica de Educación Superior.
________________________________
JORGE SANTIAGO FONSECA PALLANGO
C.I. 172023062-0
jsfp_90@hotmail.com
iii
APROBACIÓN DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
Yo, Juan Alberto Viteri Moya, en mi calidad de tutor del trabajo de Investigación,
elaborado por Jorge Santiago Fonseca Pallango; cuyo título es: “EVALUACIÓN
MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA
CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, previo a la obtención de Grado de
Odontólogo; considero que el mismo reúne los requisitos y méritos necesarios para ser
sometido a la evaluación por parte del tribunal examinador que se designe, por lo que lo
APRUEBO, a fin de que el trabajo sea habilitado para continuar con el proceso de
titulación determinado por la Universidad Central del Ecuador.
En la ciudad de Quito, 5 de octubre de 2017
___________________________________
DR. JUAN ALBERTO VITERI MOYA
C.I.: 170846190-8
iv
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL
El tribunal constituido por:
Luego de receptar la presentación oral del trabajo de titulación previo a la obtención del
título del Odontólogo presentado por el Señor Jorge Santiago Fonseca Pallango.
Con el título:
“EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS
INTRAORALES DE LA CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”
Emite el siguiente veredicto:
______________________________________________________________________
______________________________________________________________________
Fecha: 05 de Octubre de 2107
Para constancia de lo actuado firman:
Nombre-Apellido Calificación Firma
Presidente Dr. Gustavo Rueda ………………… …………………
Vocal 1 Dra. Erika Espinoza ………………… …………………
v
DEDICATORIA
A mis padres Jorge y Cecilia
Por todo el apoyo brindado durante mi vida universitaria, por su ejemplo de trabajo,
lucha, superación, tenacidad, por su esfuerzo diario para ayudarme a cumplir mis metas,
por su amor incondicional para guiarme durante toda mi vida, por sus consejos que día a
día me han enseñado a ser una mejor persona.
A mi esposa Victoria
Por todo el amor, paciencia, felicidad que me ha brindado durante los años que
compartimos juntos, su apoyo ha sido fundamental en los momentos más difíciles
cuando el camino no parecía claro, con su luz que iluminaba mi vida para cumplir
sueños y metas y que aún quedan por realizar, y por darme el mejor regalo del mundo,
mi hija Renata la razón de mi ser y lucha diaria.
A mis hermanos Pablo y Belén
Que han sido, son y serán mis amigos, cómplices y ejemplo, cada uno con sus
virtudes que me han enseñado y ayudado a superar las más adversas situaciones, por
cada momento que compartimos juntos de alegría y tristeza y por muchos más que
vendrán.
vi
AGRADECIMIENTO
Agradezco a la Universidad Central del Ecuador, a la Facultad de Odontología y a
sus maestros por todos los conocimientos brindados durante mi vida universitaria, por
sembrar en mí la valiosa necesidad de servir a toda la comunidad de la que soy parte.
A mis padres y hermanos por todo el cariño hacia mí, por ser mi fortaleza y mi apoyo
durante mi vida, con sus consejos, que me han ayudado y me han guiado durante mi
vida para ser una mejor persona, un mejor profesional, un buen hijo y un buen hermano;
son el pilar fundamental de mi vida.
A mi esposa y mi hija que son la razón de mi vida, la razón para seguir adelante
luchando por ellas, para ser un buen hombre, esposo y padre, por todo el amor que me
brindan y por todo el amor que tengo para ofrecerles.
A mis amigos que han sido una parte principal de mi vida también, por tantos
momentos compartidos, por los años ya vividos y los que quedan por vivir cosechando
una verdadera y duradera amistad.
Al Instituto Nacional Mejía por sembrar en mi las primeras semillas de
conocimiento, por todas las enseñanzas, vivencias y anécdotas que viví en
sus aulas y por impulsar el deseo de ser mejor cada día.
A mi Tutor de Tesis Dr. Juan Viteri por ser la guía para que este trabajo de
investigación se realizara de la mejor manera.
vii
ÍNDICE DE CONTENIDO
DERECHOS DEL AUTOR ............................................................................................................ ii
APROBACIÓN DEL TUTOR DEL TRABAJO DE TITULACIÓN ....................................................... iii
APROBACIÓN DE LA PRESENTACIÓN ORAL/TRIBUNAL ............................................................iv
DEDICATORIA ........................................................................................................................... v
AGRADECIMIENTO ...................................................................................................................vi
LISTA DE TABLAS ...................................................................................................................... x
LISTA DE GRÁFICOS .................................................................................................................. xi
LISTA DE FIGURAS ................................................................................................................... xii
LISTA DE ANEXOS ................................................................................................................... xiii
RESUMEN ............................................................................................................................... xiv
ABSTRACT ................................................................................................................................ xv
INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................ 1
CAPITULO I ............................................................................................................................... 2
1. TEMA ......................................................................................................................... 2
1.1 PROBLEMA ................................................................................................................. 2
1.1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ...................................................................... 2
1.2 OBJETIVOS .................................................................................................................. 3
1.2.1 OBJETIVO GENERAL ............................................................................................. 3
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ...................................................................................... 3
2.1 HIPÓTESIS ................................................................................................................... 3
CAPÍTULO II .............................................................................................................................. 4
1. MARCO TEÓRICO ....................................................................................................... 4
1.1 USO DE RAYOS X EN ODONTOLOGÍA .................................................................... 4
1.1.1 HISTORIA ....................................................................................................... 4
1.1.2 EQUIPOS DE RAYOS X INTRAORALES ............................................................. 4
1.1.3 TÉCNICAS RADIOGRÁFICAS INTRAORALES .................................................... 5
1.1.3.1 TÉCNICA DE LA BISECTRIZ ......................................................................... 5
1.1.3.2 TÉCNICA DEL PARALELISMO ...................................................................... 7
1.1.3.3 TÉCNICA BITEWING ................................................................................... 7
1.1.3.4 PROYECCIÓN OCLUSAL .............................................................................. 7
1.1.4 PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA RADIOGRÁFICA INTRAORAL .................... 7
2.1 ENFERMEDADES TRANSMISIBLES EN ODONTOLOGÍA ............................................... 8
2.1.1 VIRUS ................................................................................................................... 9
2.1.1.1 HEPATITIS B .................................................................................................. 9
viii
2.1.1.2 HERPES SIMPLE ............................................................................................ 9
2.1.1.3 VIH ................................................................................................................ 9
2.1.1 BACTERIAS, HONGOS, PROTOZOARIOS ............................................................ 10
2.1.1.1 ENTEROBACTERIAS ..................................................................................... 10
2.1.1.2 GRUPO STPHYLOCPCCUS ........................................................................... 10
2.1.1.3 GRUPO STREPTOCOCCUS ........................................................................... 11
2.1.1.4 CANDIDA ALBICANS ................................................................................... 11
2.1.1.5 ENTAMOEBA GINGIVALIS ........................................................................... 12
3.1 INFECCIÓN Y TRANSMISIÓN .................................................................................... 12
3.1.1 TRANSMISIÓN DIRECTA..................................................................................... 12
3.1.2 TRANSMISIÓN INDIRECTA ................................................................................. 12
3.1.3 A TRAVÉS DEL AIRE ............................................................................................ 13
3.1.4 INFECCIÓN CRUZADA ........................................................................................ 13
3.1.4.1 FACTORES DE RIESGO................................................................................. 13
4.1 BIOSEGURDAD EN ODONTOLOGÍA .......................................................................... 13
4.1.1 CONTROL DE INFECCIONES CRUZADAS ............................................................. 13
4.1.1.1 ASEPSIA ...................................................................................................... 14
4.1.2.2 ANTISEPSIA ................................................................................................. 14
4.1.1.3 DESINFECCIÓN ............................................................................................ 14
4.1.1.4 ESTERILIZACIÓN .......................................................................................... 14
4.1.2 BARRERAS DE BIOSEGURIDAD .......................................................................... 16
4.1.2.1 INTERNAS ................................................................................................... 16
4.1.2.2 EXTERNAS ................................................................................................... 17
4.1.2.2.1 LAVADO DE MANOS ............................................................................ 17
4.1.2.2.2 GUANTES ............................................................................................. 17
4.1.2.2.3 MASCARILLAS ...................................................................................... 17
4.1.2.2.4 GORROS, BATAS .................................................................................. 18
4.1.2.2.5 PROTECCIÓN PARA EL PACIENTE ........................................................ 18
4.1.3 BIOSEGURIDAD EN LA PRÁCTICA RADIOLÓGICA ............................................... 18
CAPÍTULO III ........................................................................................................................... 19
3. METODOLOGÍA .............................................................................................................. 19
3.1. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN ............................................................................... 19
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA........................................................................................... 19
3.2.1 CRITERIOS DE INCLUSIÓN .................................................................................. 19
3.2.2 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN ................................................................................. 19
3.3 OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES .............................................................. 20
ix
3.4. ESTANDARIZACIÓN .................................................................................................. 20
3.5 MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................................................ 20
3.5.1 MATERIALES ...................................................................................................... 20
3.5.2 MÉTODO ............................................................................................................ 22
3.5.3. ANÁLISIS ESTADÍSTICO ..................................................................................... 33
CAPÍTULO IV ........................................................................................................................... 34
4. RESULTADOS ........................................................................................................... 34
CAPITULO V ............................................................................................................................ 40
5. DISCUSIÓN ............................................................................................................... 40
CAPITULO VI ........................................................................................................................... 43
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .................................................................. 43
6.1. CONCLUSIONES ....................................................................................................... 43
6.2. RECOMENDACIONES ............................................................................................... 43
BIBLIOGRAFÍA ......................................................................................................................... 44
ANEXOS .................................................................................................................................. 46
x
LISTA DE TABLAS
Tabla N° 1 Angulación Vertical .................................................................................. 6
Tabla N° 2 Desinfección ............................................................................................ 14
Tabla N° 3 Esterilización ........................................................................................... 15
Tabla N° 4 Cuadro de Inmunizaciones Básicas ......................................................... 16
Tabla N° 5 Operacionalización de las variables ........................................................ 20
Tabla N° 6 Manejo de Desechos................................................................................ 32
Tabla N° 7 Resumen de procesamiento de datos ....................................................... 38
xi
LISTA DE GRÁFICOS
Gráfico N° 1 Aparición de microorganismos según la superficie analizada .......................... 34
Gráfico N° 2 Aparición de microorganismos en relación al horario de toma de muestra...... 35
Gráfico N° 3 Identificación de microorganismos en relación al día de toma de la muestra .. 36
Gráfico N° 4 Presencia de microorganismos en cada equipo radiográfico intraoral ............. 37
xii
LISTA DE FIGURAS
Figura N° 1 Materiales Utilizados ............................................................................. 21
Figura N° 2 Diferentes medios de cultivos utilizados ............................................... 21
Figura N° 3 Tubos de ensayo conteniendo 1ml de Tioglicolato................................ 22
Figura N° 4 Introducción de Hisopo en tubo de ensayo de toma de muestra ............ 23
Figura N° 5 Toma de muestra del tubo colimador..................................................... 23
Figura N° 6 Toma de muestra del cabezal ................................................................. 24
Figura N° 7 Toma de muestra del brazo de extensión ............................................... 24
Figura N° 8 Toma de muestra del tablero de control ................................................. 25
Figura N° 9 Toma de muestra del botón de exposición ............................................. 25
Figura N° 10 Etiquetado de medios de cultivo con códigos únicos .......................... 26
Figura N° 11 Medios de cultivo etiquetados ............................................................. 26
Figura N° 12 Medio de Cultivo " Chromagar" .......................................................... 27
Figura N° 13 Medio de Cultivo "Sal Manitol" .......................................................... 27
Figura N° 14 Medio de cultivo "Bilis Esculina" ........................................................ 28
Figura N° 15 Incubación de muestras obtenidas ....................................................... 28
Figura N° 16 Cultivo por estriamiento en Chromagar ............................................... 29
Figura N° 17 Cultivo por estriamiento en Sal Manitol .............................................. 29
Figura N° 18 Cultivo por estriamiento en Billis Esculina ......................................... 29
Figura N° 19 Sal Manitol con crecimiento positivo de Staphylococcus aureus ........ 30
Figura N° 20 Bilis Esculina con crecimiento positivo de Enterococcus faecalis ...... 31
Figura N° 21 Chromagar con crecimiento positivo de Cándida albicans .................. 32
xiii
LISTA DE ANEXOS
Anexo N°1 Autorización de la Clínica de Radiología de la FOUCE
Anexo N°2 Autorización de Laboratorio de Microbiología
Anexo N°3 Hoja de Ruta (Datos)
Anexo N°4 Cartas de Idoneidad Ética
Anexo N°5 Declaración de conflicto de intereses
Anexo N° 6 Certificado de Viabilidad Ética
Anexo N°7 Certificado Urkund Tutor
Anexo N°8 Certificado Urkund Sistema
Anexo N°9 Tablas Cruzadas
Anexo N°10 Abstract
Anexo N°11 Autorización de Publicación en el Repositorio Institucional
xiv
“EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS
INTRAORALES DE LA CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”
Autor: Jorge Santiago Fonseca Pallango
Tutor: Juan Alberto Viteri Moya
RESUMEN
En la práctica odontológica, las que se utilizan en mayor porcentaje son las radiografías
periapicales intraorales (1); esto las vuelve potencialmente riesgosas teniendo en cuenta
los diversos tipos de microorganismos presentes en la saliva que pueden producir
contaminación entre paciente - profesional, paciente – paciente o contaminación de
superficies. Tanto para el profesional como para el paciente se vuelve fundamental la
utilización y practica de normas de bioseguridad a la hora de realizar la toma de este tipo
de radiografías (2). En base a lo antes mencionado se vuelve meritorio la identificación
mediante toma de muestras y cultivo de microorganismos; dicho estudio nos permitirá
determinar o no la presencia de: Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Cándida
albicans, de las superficies que contactan al momento de la toma de radiografías
intraorales en los equipos de la Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología de
la Universidad Central del Ecuador.
Los resultados obtenidos y después de su análisis nos indican que el Enterococcus
faecalis fue el que tuvo más presencia en todas las superficies analizadas de los equipos
radiográficos intraorales; en cuanto al horario de recolección de muestras, el horario de
la tarde el Enterococcus faecalis tuvo más presencia que los otros microorganismos.
PALABRAS CLAVE: EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA, EQUIPOS
RADIOGRÁFICOS INTRAORALES, STAPHYLOCOCCUS AUREUS,
ENTEROCOCCUS FAECALIS, CÁNDIDA ALBICANS.
xv
“MICROBIOLOGICAL EVALUATION IN INTRAORAL RADIOGRAPHIC
EQUIPMENT OF THE RADIOLOGY CLINIC OF THE FACULTY OF
DENTISTRY OF THE CENTRAL UNIVERSITY OF ECUADOR”
Author: Jorge Santiago Fonseca Pallango
Tutor: Juan Alberto Viteri Moya
ABSTRACT
In dental practice, the most used are intra-periapical radiographs (1); This makes them
potentially risky taking into account the different types of microorganism present in the
saliva that can produce contamination between patient – profesional, patient – patient or
contamination of surfaces. So, the use and practice of biosecurity standards for taking this
type of radiography is essential for both, the professional and the patient (2). Base don
the aforementioned it becomes meritorious the identification by sampling and culture of
microorganisms. This study will allow us to determine or not the presence of
Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Cándida albicans, on the surfaces that
contact at the time of the intraoral radiographs in the equipment of the Clinic of Radiology
of the Faculty of Dentistry of the Central University of Ecuador. The analysis of the
results obtained indicates that Enterococcus faecalis was the one that had more presence
in all the analyzed surfaces of the intraoral radiographic equipment; in the afternoon
sampling Schedule, Enterococcus faecalis had more presence tan the other
microorganisms.
KEY WORDS: MICROBIOOGICAL EVALUATION/ INTRAORAL
RADIOGRAPHIC/ STAPHYLOCOCCUS AUREUS/ ENTEROCOCCUS FAECALIS/
CANDIDA ALBICAN
1
INTRODUCCIÓN
En la actualidad es prioritario para la práctica odontológica la utilización de exámenes
preliminares antes de realizar el diagnóstico, tratamiento y control de enfermedades de la
cavidad bucal, es por esto que es más frecuente la utilización de radiografías tanto intraorales
como extra orales augurando así mejores resultados (3).
Dentro de la práctica odontológica, las que se utilizan en mayor porcentaje son radiografías
periapicales intraorales; esto las vuelve potencialmente riesgosas a la hora de hablar de
contaminación teniendo en cuenta los diversos tipos de microorganismos presentes en la boca
(1).
En el estudio realizado por Ochoa (2) menciona que tanto para el profesional como para el
paciente se vuelve fundamental la utilización y practica de normas de bioseguridad a la hora
de realizar la toma de este tipo de radiografías; debido al potencial patogénico de los
organismos presentes en boca y al riesgo de contagio al estar en contacto con la saliva, medio
en el que se encuentran los mismos.
En base a lo antes mencionado se vuelve meritorio el análisis e identificación de los
microorganismos que se aíslen y permanezcan en los equipos que se utilizan a la hora de
practicar la toma de radiografías intraorales; dicho estudio nos permitirá determinar el tipo de
bacterias presentes en las superficies que se contactan al momento de la toma de radiografías
intraorales en los equipos de la Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador y manejar de manera adecuada normas de bioseguridad
aplicadas tanto al profesional como al paciente evitando así la presencia de contaminación
cruzada (4).
2
CAPITULO I
1. TEMA
Evaluación microbiológica en equipos radiográficos intraorales de la clínica de radiología de
la facultad de odontología de la universidad central del ecuador.
1.1 PROBLEMA
1.1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Dentro de su práctica el Odontólogo está expuesto a una serie de riesgos debido a las
actividades que realiza diariamente, las mismas que están sujetas a contaminación como nos
menciona Lee (5), contaminación principalmente por microorganismos procedentes de
secreciones provenientes del paciente tales como saliva y sangre (6), que pueden llegar a
contaminar superficies cercanas al área de trabajo del profesional y de esta manera facilitar la
infección cruzada entre odontólogo y paciente.
Con lo antes mencionado es donde empieza a tomar mayor importancia el conocimiento de que
microorganismos están contaminando las superficies contactadas por el profesional en la
utilización de equipos de radiología intraoral así como la utilización de normas de bioseguridad
en la práctica radiológica con la utilización de barreras de protección para el personal de salud
y para el paciente, su uso en equipos y superficies que podrían contaminarse con facilidad en
la práctica diaria.
Teniendo en cuenta lo antes mencionado surge la inquietud ¿Qué tipo de microorganismos
pueden estar presentes en las superficies de los equipos radiográficos intraorales?
3
1.2 OBJETIVOS
1.2.1 OBJETIVO GENERAL
Identificar el tipo de microorganismos presentes en equipos radiográficos intraorales de la
Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
1.2.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
- Identificar la presencia de bacterias (Staphylococcus aureus) en el tubo colimador, el
cabezal, el brazo de extensión, el tablero de control y el botón de exposición de los
equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
- Identificar la presencia de enterobacterias (Enterococcus faecalis) en el tubo
colimador, el cabezal, el brazo de extensión, el tablero de control y el botón de
exposición de los equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la
Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
- Identificar la presencia de levaduras (Cándida albicans) en el tubo colimador, el
cabezal, el brazo de extensión, el tablero de control y el botón de exposición de los
equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
2.1 HIPÓTESIS
H1= En equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador existirá presencia de microorganismos.
H0= En equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador no existirá presencia de microorganismos.
4
CAPÍTULO II
1. MARCO TEÓRICO
1.1 USO DE RAYOS X EN ODONTOLOGÍA
1.1.1 HISTORIA
A finales del siglo XIX, el 8 de Noviembre de 1895, Wilhlem Conrad descubrió en su
laboratorio un tipo de rayos que por su naturaleza desconocida los llamo “Rayos x”, mismos
que fueron de mucho aporte a las ciencias médicas, su uso en la medicina fue inmediato tanto
que empezó tan solo unos meses después de su descubrimiento (7).
En Alemania el Dr. Otto Walkhoff tomó la primera radiografía dental, para esto tuvo que tener
un tiempo de exposición de 23 minutos. La Radiología dental ha seguido evolucionando
llegando a la Radiología Digital logrando mejores imágenes facilitando el diagnóstico y
tratamiento de las diversas situaciones que se le presentan (7) (8).
1.1.2 EQUIPOS DE RAYOS X INTRAORALES
Partes que componen el equipo de Rayos x Intraoral (9):
- Cabeza del tubo: esta contiene un tubo de vacío que genera rayos X.
- Brazo de extensión: este sostiene la cabeza del tubo de rayos X contiene alambres
eléctricos en su interior y permite mover o colocar la cabeza del tubo en la posición
deseada.
- Módulo de control: permite al operador regular el haz de rayos X.
5
1.1.3 TÉCNICAS RADIOGRÁFICAS INTRAORALES
Son aquellas que se realizan dentro de la cavidad bucal, son utilizadas para realizar diagnóstico
dentario (7), de sus tejidos de sostén, así como para ubicar elementos como dientes retenidos
dentro de los huesos maxilares (8).
Indicaciones para el uso de Radiografías Intraorales (10):
- Visualizar la región periapical
- Diagnóstico de patología periapical
- En casos de tratamiento de endodoncia
- Evaluar etapas de erupción dentaria
- Evaluación pre y post quirúrgica
- Durante el diagnóstico protésico (prótesis fija y removible)
Las técnicas radiográficas más comúnmente utilizadas, según la ubicación de la película
radiográfica, son (7):
1. Técnica de la Bisectriz
2. Técnica del Paralelismo
3. Técnica Bitewing
4. Proyección Oclusal
1.1.3.1 TÉCNICA DE LA BISECTRIZ
Llamada también Técnica del cono corto, Técnica de bisección del ángulo (9); está técnica se
realiza manteniendo la película radiográfica lo más cerca al diente como sea posible, el rayo
central es dirigido perpendicularmente sobre la bisectriz que divide el ángulo formado entre el
eje mayor de la pieza dental y la película radiográfica (11).
La angulación vertical horizontal son específicas según la pieza dentaria que se va a realizar
la toma radiográfica (12), así tenemos:
6
Tabla N° 1 Angulación Vertical
Angulación Horizontal:
En esta angulación el rayo central debe ser paralelo a las caras proximales de las piezas
dentarias (11).
Existen puntos anatómicos de referencia para la ubicación y toma radiográfica:
- Maxilar Superior:
o Incisivos centrales y laterales: punta de la nariz.
o Canino: ángulo naso-geniano.
o Premolares: donde de intercepta la línea bipupilar con el plano de Camper.
o Molares: ángulo externo del ojo.
- Maxilar Inferior: Línea 1 cm por encima del borde inferior de la mandíbula.
o Incisivos centrales y laterales: mentón.
o Canino: comisura labial.
o Premolares: 1 cm por fuera de la comisura labial.
o Molares: ángulo externo del ojo.
Piezas Dentarias Superiores Piezas Dentarias Inferiores
Incisivos: …………40° Incisivos: …………-20°
Canino: …………...45° Canino: …………...-25°
Premolares: ……….30° Premolares: ……….-10°
Molares: …………..28° Molares: …………..-5°
7
1.1.3.2 TÉCNICA DEL PARALELISMO
Esta técnica también es conocida como la del cono largo, técnica del ángulo recto (7); esta
técnica se basa como su nombre lo indica en el paralelismo, se consigue al colocar la película
radiográfica paralela al eje mayor de la pieza dentaria, el haz central de rayos x incide
perpendicularmente sobre la pieza dentaria y la película radiográfica formando un ángulo recto
(8).
1.1.3.3 TÉCNICA BITEWING
Esta técnica es específica para la identificación y el diagnóstico precoz de la caries
interproximal, así como también nos ayudará a visualizar los tejidos de sostén (7); para realizar
esta técnica las películas radiográficas tienen un aditamento que es una lengüeta horizontal la
cual el paciente debe morder al momento de la toma (10).
Para realizar la toma con esta técnica, se debe utilizar una angulación vertical de 0° - 5°, el haz
central de rayos ira paralelo a las superficies interproximales de las piezas dentales o paralelo
al plano oclusal (8).
1.1.3.4 PROYECCIÓN OCLUSAL
En esta técnica radiográfica la película se va a situar entre el maxilar superior y la mandíbula,
sobre el plano oclusal y el haz central de Rayos X se va a dirigir desde arriba o abajo según la
proyección oclusal que se necesite (7).
1.1.4 PROCEDIMIENTO PARA LA TOMA RADIOGRÁFICA INTRAORAL
A continuación nos detalla los pasos que seguiremos para realizar una toma radiográfica
intraoral (10):
1. Recepción de la orden: aquí determinaremos que tipo de radiografía vamos a proceder
a realizarle al paciente.
8
2. Anamnesis: preguntaremos detalles del estado de salud del paciente, si está en estado
de gestación o posee alguna enfermedad donde sea contraindicado la exposición a
radiación.
3. Medidas de protección para el paciente y el profesional: se recomienda el uso de un
mandil plomado y un collarín tiroideo.
4. Preparación del paciente: se pedirá al paciente que en caso de utilizar objetos metálicos
estos sean retirados para la toma radiográfica, ya que estos pueden aparecer
superpuestos en la película radiográfica.
5. Colocación en posición correcta al paciente: se le pedirá al paciente que tome asiento,
su espalda debe estar en contacto permanente con el espaldar de la silla, la cabeza se
colocará dependiendo la zona que se va a examinar.
6. Colocación de la película radiográfica: se colocará la película con suavidad centrándola
en el área de interés; se le pedirá al paciente que colabore sosteniendo la película en su
lugar con ayuda de su dedo pulgar.
7. Colocación del cabezal y tubo colimador: se colocara el cabezal y el tubo sobre el área
de interés a examinar; se ajustará la angulación vertical y horizontal respectiva.
8. Realizar los ajustes correspondientes en el tablero de control: ajustar la intensidad y
tiempo de exposición adecuada para cada pieza dentaria y accionara el botón de
exposición para realizar la toma.
9. Retiro de la película radiográfica: el profesional retirará la película con cuidado de no
lesionar tejidos blandos, procederá a la desinfección de la película radiográfica y su
posterior revelado en el cuarto obscuro.
2.1 ENFERMEDADES TRANSMISIBLES EN ODONTOLOGÍA
La posibilidad de contraer una infección dentro del ambiente laboral es muy alta dentro de la
práctica odontológica, va a depender mucho del tipo de microorganismo y de la susceptibilidad
9
que tenga el hospedador y de que tan contaminado se encuentre el entorno en el que se
desarrollen las actividades (13); esta contaminación puede darse por el contacto con
secreciones tales como sangre, saliva procedentes del paciente, las mismas que pueden incidir
directamente en el resultado final del tratamiento que se esté realizando (14).
2.1.1 VIRUS
2.1.1.1 HEPATITIS B
(Hepadnaviridae) la mayoría de los pacientes infectados se presentan asintomáticos o con
sintomatología que no es fácil de identificar (cefalea, trastornos gastro-intestinales leves, fatiga,
rigidez en las articulaciones), la vía de transmisión puede ser por exudados, vía parenteral,
saliva contaminada, accidentes con instrumentos contaminados y por vía sexual (15).
2.1.1.2 HERPES SIMPLE
(VHS-1 y VHS-2), este virus produce lesiones a manera de vesículas que son dolorosas,
eritematosas, que ulceran y finalmente costran, las mismas que pueden sanar en una o dos
semanas aproximadamente (15).
2.1.1.3 VIH
Se descubrió aproximadamente en los años 70, la infección de este virus produce depleción
total de Linfocitos CD4 por lo tanto se ve infecciones oportunistas y lesiones tumorales en los
infectados que son la causa de muerte, el más frecuente se transmite por contacto sexual, vía
parenteral, transplacentaria y perinatal por leche materna, el virus se puede encontrar en sangre,
suero, plasma, médula ósea, líquido céfalo raquídeo, saliva, orina, lágrimas y secreciones
genitales (15).
10
2.1.1 BACTERIAS, HONGOS, PROTOZOARIOS
2.1.1.1 ENTEROBACTERIAS
Este grupo de bacterias pueden causar problemas infecciosos en cavidad oral como pulpitis,
osteítis, gingivoestomatitis; son bacterias gramnegativas que típicamente tienen localización
intestinal, dentro de estas podemos citar Escherichia coli, Citrobacter freundii, Kleibsiella
pneumoniae, Enterococcus faecalis (15).
2.1.1.2 GRUPO STPHYLOCPCCUS
Son bacterias esféricas, Gram positivas, que generalmente se agrupan en racimos, son aerobios
facultativos, son parte de la flora normal de piel, mucosas (15); también en el ambiente pero
en ocasiones pueden provocar complicaciones como infecciones, abscesos, septicemias que
pueden llegar a ser mortales (5).
Dentro de los más importantes de este grupo de acuerdo a la producción de coagulasa tenemos:
- Coagulasa positivos:
o Staphylococcus aureus: con frecuencia lo podemos localizar en nariz anterior
aunque puede ser parte de todo el organismo y contaminando el ambiente, puede
producir queilitis, abscesos periapicales, osteomielitis en la cavidad oral,
sistémicamente puede producir faringo amigdalitis, abscesos de diferente
localización, intoxicación por alimentos causada por una enterotoxina (15).
- Coagulasa negativos
o Staphylococcus saprophyticus: contaminante del ambiente, forma parte de la
flora normal del organismo pero puede actuar como oportunista, puede producir
infecciones de vías urinarias en mujeres (15).
11
o Staphylococcus epidermidis: forma parte de la flora normal del organismo, pero
puede producir rechazo de dispositivos protésicos en pacientes portadores de
los mismos (ortopédicos, cardiovasculares, implantes) (15).
2.1.1.3 GRUPO STREPTOCOCCUS
Este grupo de cocos se asocia en parejas o cadenas largas o cortas, son Gram positivos,
anaerobios facultativos (16); tienen más de 13 grupos serológicos según características
antígenas de su pared celular.
Dentro de este grupo tenemos:
- Streptococcus pyogenes: habitan en piel y faringe, son β-hemolíticos, pueden producir
faringitis, fiebre reumática, glomérulo-nefritis dentro de las más importantes (15).
- Streptococcus viridans: son α-hemolíticos, normalmente se encuentran en la cavidad
oral, faringe, tracto respiratorio.
- Streptococcus mutans, S. sobrinus: iniciadores de la caries dental, esto por su acción
fermentadora de azúcares de la dieta dando como resultado el metabolismo ácido-
láctico, lo que produce desmineralización del esmalte (16).
- Streptococcus pneumoniae: α-hemolítico, dispuesto en parejas de cocos (diplococos),
causante de neumonía, otitis, meningitis, endocarditis, se encuentra en cavidad oral y
faringe (4).
2.1.1.4 CANDIDA ALBICANS
Se le considera un oportunista y tiene importancia en pacientes que padecen inmunosupresión,
su localización más frecuente es en cavidad oral e intestinal y es responsable de la candidiasis
oral, gingivoestomatitis, lesiones en piel y uñas.
12
2.1.1.5 ENTAMOEBA GINGIVALIS
A este parásito se le puede encontrar en asociación en casos de periodontitis, en cavidad oral
se puede ubicar en las criptas amigdalinas, su presencia es exclusiva en cavidad bucal y su
transmisión puede darse de persona a persona y por medio de secreciones (15).
3.1 INFECCIÓN Y TRANSMISIÓN
La infección es el proceso por el cuál un microorganismo patógeno logra invadir los tejidos de
un ser vivo; la transmisión es el mecanismo por el cual el microorganismo patógeno se propaga
hacia el ambiente o de una persona a otra (5).
La saliva es el principal vehículo de transporte de estos patógenos y en la práctica de la
radiología dental intraoral constituye el principal riesgo ya que si bien este tipo de
procedimientos no son invasivos, siempre están en contacto frecuente con secreciones
procedentes de la cavidad oral aumentando el riesgo de transmisión e infección (17).
3.1.1 TRANSMISIÓN DIRECTA
En este caso la transferencia de agentes infecciosos es directa e inmediata y se la realiza por
cualquier medio de entrada que sea susceptible y que pueda producir infección, como piel y
mucosas (oral, nasal, conjuntival y genitales) (5).
3.1.2 TRANSMISIÓN INDIRECTA
La transferencia de los agentes infecciosos se realiza de dos maneras:
- Mediante vectores: en este caso la transferencia de los agentes infecciosos se realiza
por medio de un insecto volador o reptante (5).
- Mediante vehículos: se realiza por medio de objetos o materiales que estén previamente
contaminados, incluyendo productos biológicos como sangre, saliva, suero (5).
13
3.1.3 A TRAVÉS DEL AIRE
La transferencia se realiza por aerosoles microbianos transportados hacia una puerta de entrada
que generalmente son las vías respiratorias, estos pueden permanecer largos periodos de tiempo
suspendidos en el aire, pueden estar en altas concentraciones a una distancia de 60 cm alrededor
del paciente o contaminado superficies, mobiliario inclusive instrumental que se encuentre
expuesto (18).
3.1.4 INFECCIÓN CRUZADA
Se le llama infección cruzada al acto de diseminar microorganismos de una persona hacia otra
ya sea por contacto directo o a través de vehículos que faciliten su transporte, dichos vehículos
se llaman fómites (13) (19).
3.1.4.1 FACTORES DE RIESGO
Podemos considerar como factores de riesgo a los siguientes (18):
- Desconocimiento de las normas básicas de Bioseguridad por parte del profesional,
personal auxiliar y personal de limpieza.
- Desconocimiento de los riesgos bilógicos a los que se está expuesto en el ambiente de
trabajo.
- Equipos e instrumental en condiciones que no permitan su desinfección total y que su
uso represente un riesgo.
- Ambientes clínicos contaminados con aerosoles, polvo, vapores y otros.
- Personal profesional y auxiliar que no presenten los cuadros de inmunización básica.
4.1 BIOSEGURDAD EN ODONTOLOGÍA
4.1.1 CONTROL DE INFECCIONES CRUZADAS
Son un conjunto de normas, actitudes y pautas que propiamente van a ayudar al odontólogo,
personal auxiliar y a pacientes a prevenir la propagación y contagio de enfermedades (19).
14
4.1.1.1 ASEPSIA
Es el conjunto de procedimientos y actividades empleados para impedir el acceso de
microorganismos al campo de trabajo y disminuir al mínimo las posibilidades de
contaminación (18) (20).
4.1.2.2 ANTISEPSIA
Es la eliminación e inhibición del crecimiento de todas formas vegetativas de bacterias
patogénicas tejidos corporales como la piel, mucosas, incluso sobre heridas y picaduras (19); para este
fin se usan sustancias conocidos como “antisépticos”, ejemplo de estos tenemos: jabones,
alcoholes, gluconato de clorhexidina, peróxido de hidrógeno, yodo (21).
4.1.1.3 DESINFECCIÓN
Consiste en aplicar un procedimiento químico a una concentración y tiempo determinados
sobre elementos inanimados (19).
Tabla N° 2 Desinfección
PRODUCTO QUÍMICO TIEMPO DE EXPOSICIÓN PARA
DESINFECTAR
Formaldehído 30 minutos
Glutaraldehído acídico 10 minutos
Glutaraldehído alcalino 10 minutos
Solución de Cloro al 1% 30 minutos
Solución Yodada al 1% 30 Minutos
4.1.1.4 ESTERILIZACIÓN
Consiste en la aplicación de procedimientos físicos o químicos para destruir todos los
patógenos, incluidas las bacterias altamente resistentes y esporas micóticas sobre objetos
inanimados (19).
15
Los medios de esterilización pueden ser:
- Físicos: por calor seco o húmedo
- Químico: soluciones, gases
Tabla N° 3 Esterilización
ESTERILIZACIÓN
MÉTODOS
FÍSICOS
Calor
Seco
Se realiza en estufas, por
conducción de calor, destruye
microorganismos por quemadura
de proteínas
Temperatura:
60´-------
170°C
120´-------
160°C
Calor
Húmedo
Se realiza en autoclave, por
vapor saturado a presión,
producirá coagulación de las
proteínas de los
microorganismos.
Se logra:
121 °C a 1.5
atmosferas de
presión, por 15
minutos.
MÉTODOS
QUÍMICOS
Óxido de
Etileno
Es un agente gaseoso,
Modifica irreversiblemente
las enzimas de microorganismos.
Se lo realiza
a una
temperatura de
25 – 55 °C, de
10 a 16 horas.
Formalde
hído 2%
Actúa inactivando enzimas y
proteínas de la pared celular,
Se lo utiliza
por 10 horas a
16
4.1.2 BARRERAS DE BIOSEGURIDAD
4.1.2.1 INTERNAS
Se refiere a las inmunizaciones que debe recibir el profesional Odontólogo y el personal
auxiliar que trabaja en la consulta dental, se presenta un esquema de vacunación básico que se
debe cumplir por todo el personal, en los tiempos señalados (20).
Tabla N° 4 Cuadro de Inmunizaciones Básicas
VACUNA DOSIS INTERVALO ENTRE CADA
DOSIS
DOSIS, VÍA Y
LUGAR DE
APLICACIÓN
Hepatitis B Dos dosis y
un refuerzo
4 semanas entre la primera y la
segunda, refuerzo 6 meses
después de aplicada la segunda
dosis
1cc Vía
Intramuscular
Tetanica-
Difterica
Dos dosis y
un refuerzo al
año de la
última dosis
4 semanas entre la primera y
segunda dosis y un refuerzo 1 año
después de la segunda dosis.
Luego cada 10 años
0,5 cc Vía
Intramuscular
proceso que se denomina
alquilación.
una temperatura
ambiente.
Glutarald
ehído
Es un agente no gaseoso, es
un agente alquilante, se lo utiliza
en soluciones al 2%
Se lo utiliza
por 10 horas a
una temperatura
ambiente.
17
Influenza Una dosis Ninguno 0,5 cc Vía
Intramuscular
4.1.2.2 EXTERNAS
En este caso se pretende prevenir la exposición directa a sangre y fluidos orgánicos
potencialmente contaminantes, impidiendo el contacto con microorganismos procedentes de
los pacientes; y en otros casos, microorganismos del personal sanitario sean transmitidos a los
pacientes (20) (21).
4.1.2.2.1 LAVADO DE MANOS
El propósito del lavado de manos es eliminar la flora bacteriana transitoria (formada por
microorganismos, algunos patógenos, que contaminaron las manos por contacto u otras formas
de exposición a superficies contaminadas. y reducir la residente (formada por microorganismos
que colonizan la piel y se convierten en residentes permanentes) y evitar su transporte (20).
4.1.2.2.2 GUANTES
Se recomienda para el examen clínico guantes descartables no esterilizados (20) (22); evite
realizar acciones ajenas a la atención del paciente mientras lleva los guantes puestos. Si el
tratamiento no es quirúrgico y debe ser momentáneamente interrumpido para luego continuar
con el mismo procedimiento (17).
4.1.2.2.3 MASCARILLAS
Con su uso protegemos la mucosa nasal de microorganismos que se propagan por medio de
aerosoles durante la consulta odontológica; esta debe encajar cómoda y adecuadamente sobre
el puente de la nariz para evitar el empañamiento de los protectores oculares (20) (22); las
mascarillas deben ser descartables repelentes a líquidos e idealmente deberían ser de la fibra
de vidrio o la mezcla de fibras sintéticas que filtran mejor los microbios que las de papel (18).
18
4.1.2.2.4 GORROS, BATAS
Es obligatorio utilizar batas encima de la vestimenta normal o en sustitución de la misma, esta
se debe lavar y desinfectar separado del resto de la ropa de casa o en el área de trabajo, debe
ser cambiada diariamente o después de realizar procedimientos invasivos, la bata debe ser
cerrada adelante hasta el cuello, manga larga, con cierre en los puños y debe cubrir la ropa
hasta la rodilla (18).
Se recomienda también utilizar siempre gorros desechables para evitar la contaminación de los
cabellos por aerosoles o gotas de saliva y/o sangre generadas por el trabajo odontológico (22).
4.1.2.2.5 PROTECCIÓN PARA EL PACIENTE
Protección ocular, utilizando lentes protectores que le cubran los ojos (18).
4.1.3 BIOSEGURIDAD EN LA PRÁCTICA RADIOLÓGICA
El equipo de Rayos X dental pueden estar contaminados con sangre saliva que contienen
microorganismos potencialmente patógenos como el estreptococo piógeno, el estafilococo
áureo y el estreptococo pneumoniae (20); pueden ser transferidos de un paciente a otro por
contacto con el equipo radiográfico dental (18).
- Preparación del área de tratamiento:
Se debe preparar las superficies con las que se hará contacto durante la exposición; se cubren
estas partes con materiales impermeables y desechables (plástico, papel o aluminio), lo cual
proporciona protección adecuada y elimina la necesidad de limpiarlas y desinfectadas entre
cada consulta, en el caso de no utilizar materiales desechables, es necesario desinfectar todas
las áreas contaminadas después de los procedimientos radiográficos (19).
- Control de infecciones durante la toma radiográfica:
Colocados los guantes, el profesional debe tener cuidado especial de tocar solo las superficies
cubiertas, después de la toma radiográfica, la película debe ser retirada y secada con una toalla
de papel para eliminar el exceso de saliva (19).
19
CAPÍTULO III
3. METODOLOGÍA
3.1. DISEÑO DE LA INVESTIGACIÓN
Estudio transversal, sobre la evaluación microbiológica en equipos radiográficos intraorales de
la Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador
Transversal: El estudio se realizó en un periodo de tiempo determinado (Julio 2017)
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA
Para el estudio se tomó en cuenta los tres equipos radiográficos intraorales de la Clínica de
Radiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, que están en
funcionamiento en las horas del turno de la Clínica Integral de la Facultad de Odontología.
Se seleccionó las partes de los aparatos de radiología intraoral que más contacto tiene el
operador al momento de la toma radiográfica, así tenemos: el tubo colimador, el cabezal, el
brazo de extensión, el tablero de control y el botón de exposición, de los cuales se tomó una
muestra en dos momentos diferentes del día, por tres días al azar que dio un total de 90
muestras.
3.2.1 CRITERIOS DE INCLUSIÓN
o Equipos Radiográficos Intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
3.2.2 CRITERIOS DE EXCLUSIÓN
o Equipos Radiográficos Extraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad
de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
20
3.3 OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES
Tabla 5 Operacionalización de las variables
Variables Tipo de
Variable
Definición
Operacional
Indicadores Escala Tipo de
Variable
Superficies Independie
nte
Partes que
están
expuestas al
contacto del
operador al
momento del
uso de los
equipos
radiográficos
intraorales
- Tubo
colimador
- El cabezal
- Brazo de
extensión
- Tablero
de control
- Botón de
exposición
0
1
2
3
4
Cualitativa
Nominal
Tiempo Independie
nte
Se toman
dos periodos
de tiempo:
antes del
inicio de las
actividades y
al finalizar las
mismas para
evaluar la
presencia o
no de
microorganis
mos
- Antes del
inicio de
actividades
clínicas 8:00
am
-Cierre de
actividades
clínicas 17:00
pm
0
1
Cualitativa
Nominal
Microorganismos Dependient
e
Se toman
en cuentan 3
tipos de
microorganis
mos que son
patógenos
para el ser
humano
-
Staphylococcus
aureus
-
Enterococcus
faecalis
-Cándida
albicans
0
1
2
Cualitativa
Nominal
3.4. ESTANDARIZACIÓN
Este estudio por ser In Vitro no se realizará estandarización.
3.5 MATERIALES Y MÉTODOS
3.5.1 MATERIALES
- 90 Hisopos estériles
- 90 Tubos de ensayo conteniendo 1 ml de Tioglicolato
21
- Solución Fisiológica
- Guantes
- Marcador permanente para etiquetado de tubos con códigos individuales
- Lámpara de alcohol
- 90 Cajas Petri conteniendo Agar Chromoagar
- 90 Cajas Petri conteniendo Agar Sal-Manitol
- 90 Cajas Petri conteniendo Agar Bilis Esculina
- Mascarillas
Figura N° 1 Materiales Utilizados
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 2 Diferentes medios de cultivos utilizados
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
22
3.5.2 MÉTODO
Se obtendrá el permiso para la toma de muestra dado por parte del Director de la Clínica de
Radiología de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador. (Anexo 1)
Se obtendrá el permiso para el uso del Laboratorio de Microbiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador para el procesamiento de las muestras de
este estudio. (Anexo 2)
- TOMA DE LA MUESTRA
Prepararemos medios de transporte en tubos de ensayo:
Prepararemos Tioglicolato y colocaremos 1 ml en cada tubo de ensayo (90 tubos de ensayo en
total); y cada tubo se rotula según el número de equipo, el día, el horario que se toma la muestra
y la superficie que se va a analizar.
Figura N° 3 Tubos de ensayo conteniendo 1ml de Tioglicolato
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Para la toma de muestras se utilizará hisopos que fueron esterilizados previamente; para la
toma de las muestras se introduce el hisopo en el tubo de ensayo que contiene Tioglicolato y
se friccionó el hisopo contra la superficie a ser analizada, el hisopo se introdujo de nuevo en
el tubo de ensayo y se tapó el mismo.
23
Figura N° 4 Introducción de Hisopo en tubo de ensayo de toma de muestra
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
El total de muestras que se obtendrán en los tres días nos dio un total de 90 muestras.Se tomarán
2 muestras por día, durante 3 días (lunes, miércoles, viernes) durante la semana: La primera
muestra se tomará antes de iniciar las actividades en la Clínica de Radiología (8:00 am) de las
siguientes superficies: el tubo colimador, el cabezal, el brazo de extensión, el tablero de control
y el botón de exposición, con un hisopo estéril utilizando técnica de hisopado; las muestras
serán llevadas al laboratorio de microbiología de la Facultad de Odontología para su
procesamiento, se transportara en un tubo de ensayo que contiene 1 ml de Tioglicolato que
contiene el hisopo utilizado para obtener las muestras.
Figura N° 5 Toma de muestra del tubo colimador
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
24
Figura N° 6 Toma de muestra del cabezal
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 7 Toma de muestra del brazo de extensión
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
25
Figura N° 8 Toma de muestra del tablero de control
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 9 Toma de muestra del botón de exposición
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
La segunda muestra se tomará al finalizar las actividades en la Clínica de Radiología (17:00
am) de las siguientes superficies: el tubo colimador, el cabezal, el brazo de extensión, el tablero
de control y el botón de exposición; con un hisopo estéril utilizando técnica de hisopado; las
muestras serán llevadas al laboratorio de microbiología de la Facultad de Odontología para su
procesamiento, se transportara en un tubo de ensayo que contiene 1 ml de Tioglicolato que
contiene el hisopo utilizado para obtener las muestras.
26
Las muestras que se lleven al Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología, las
muestras obtenidas serán procesadas de la siguiente manera:
Contamos con tres medios de cultivo selectivos para los microorganismos que vamos a
investigar, que nos serán proporcionados por el Laboratorio Medibac Inc., se procede a su
etiquetado con códigos únicos para su posterior identificación.
Figura N° 10 Etiquetado de medios de cultivo con códigos únicos
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 11 Medios de cultivo etiquetados
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
27
Los medio de cultivo que utilizaremos son:
- BBL Chromagar Cándida:
Figura N° 12 Medio de Cultivo " Chromagar"
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
- Agar Sal Manitol:
Figura N° 13 Medio de Cultivo "Sal Manitol"
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
28
- Agar Bilis Esculina:
Figura N° 14 Medio de cultivo "Bilis Esculina"
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Se realizará la inoculación de las muestras en cada uno de los medios de cultivo por
estriamiento, se incubará a 37 ºC aproximadamente, durante 24-48 horas.
Figura N° 15 Incubación de muestras obtenidas
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
29
Figura N° 16 Cultivo por estriamiento en Chromagar
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 17 Cultivo por estriamiento en Sal Manitol
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Figura N° 18 Cultivo por estriamiento en Billis Esculina
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
30
Para la identificación de los microorganismos lo haremos así:
Para el Staphylococcus aureus:
- La fermentación de manitol, indicada por el cambio del indicador de rojo fenol, facilita
la diferenciación de la especie de estafilococos. Los estafilococos positivos a la
coagulasa como en el caso del Staphylococcus aureus producen colonias de color
amarillo y un medio circundante de color amarillo.
Figura N° 19 Sal Manitol con crecimiento positivo de Staphylococcus aureus
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Para el Enterococcus faecalis tenemos el medio de cultivo específico en el que lograremos
identificar al microorganismo de la siguiente manera:
- Crecimiento de bueno a excelente
- Colonias de color beige
- Halos de color negro fuerte
31
Figura N° 20 Bilis Esculina con crecimiento positivo de Enterococcus faecalis
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
Cándida albicans tenemos el medio de cultivo específico BBL Chromagar Cándida en el que
lograremos identificar al microorganismo de la siguiente manera:
Con la inclusión de sustratos cromogénicos en el medio de cultivo, las colonias de Candida
albicans, Candida tropicalis y Candida krusei producen diferentes colores.
Las colonias de Candida albicans son verdes, las de Candida tropicalis son de color azul
oscuro o azul metálico y las colonias de Candida krusei aparecen rosadas.
32
Figura N° 21 Chromagar con crecimiento positivo de Cándida albicans
Autor: Jorge Fonseca
Fuente: Laboratorio de Microbiología de la Facultad de Odontología. U.C.E
3.5.1.1.MANEJO DE DESECHOS
Tabla N° 6 Manejo de Desechos
DESECHOS MANEJO INICIAL MANEJO FINAL
- Hisopos
- Aplicadores
- Desinfectar en frasco con Hipoclorito
de Na al 1% por 30 minutos como
mínimo.
-Decantar el hipoclorito en
el vertedero.
- Dejar correr abundante
agua.
- Desechar los elementos
en bolsa roja.
- Tubos
- Pipetas
-Frascos
contaminados
-Esterilizar en frasco de boca ancha con
solución de Hipoclorito de Na al 1% por
30 minutos.
- Lavar con solución
jabonosa.
- Enjuagar.
33
Elementos de
barrera:
- Gorro
- Guantes
- Mascarilla
- Desechar en bolsa roja - Llevar al sitio de
almacenamiento
intermedio.
3.5.3. ANÁLISIS ESTADÍSTICO
La recolección de datos y elaboración de tablas se realizara en el programa de ofimática
Microsoft Excel 2013 para Windows y se utilizara un programa estadístico para la tabulación
de los datos obtenidos.
34
CAPÍTULO IV
4. RESULTADOS
Los datos obtenidos y procesados en la Facultad de Odontología – Laboratorio de
Microbiología, se compilaron en una base de datos (ver Anexo N° 9), utilizamos el paquete
estadístico SPSS 23, y se presentan en gráficos y tablas de la siguiente manera:
Gráfico N° 1 Aparición de microorganismos según la superficie analizada
Fuente: Jorge Fonseca
Elaboración: Ing. Luis Yumi
El microorganismo Cándida albicans está presente en el botón de exposición en un 4,4%, en
el brazo de extensión un 6,7%, la presencia en el cabezal, el tablero de control y el tubo
colimador es del 8,9%. En el caso del Staphylococcus aureus el porcentaje de presencia en el
botón de exposición y el cabezal es de 7,8%, en el brazo de extensión el 10%, mientras que en
el tablero de control un 11,1% y el tubo colimador el 14,4%. Y el Enterococcus faecalis, la
aparición en el botón de exposición es del 12,22%, en el brazo de extensión el 11,11%, en el
Botón de
exposición
Brazo de
extensión
Cabezal Tablero de
control
Tubo
colimador
4,4
% 6,7
% 8,9
%
8,9
%
8,9
%
7,8
% 10
%
7,8
%
11
,1%
14
,4%
12
,22
%
11
,11
%
13
,33
%
20
%
20
%Partes del equipo vs microorganismo
Cándida albicans Staphylococcus aureus Enterococcus faecalis
35
cabezal la presencia se ubica en el 13,3%, en cuanto al tablero de control y el tubo colimador
el porcentaje de presencia es del 20%.
Gráfico N° 2 Aparición de microorganismos en relación al horario de toma de
muestra
Fuente: Jorge Fonseca
Elaboración: Ing. Luis Yumi
En el horario de la mañana, el microorganismo Cándida albicans se encuentra presente en un
16,67% y en la tarde un 21,11%. En el horario de la mañana y en la tarde, el microorganismo
Staphylococcus aureus está presente en un 25,56%. En cuanto, al porcentaje de presencia de
Enterococcus faecalis durante el horario de la mañana es del 25,56% y en la tarde el 33,33%.
Cándida albicans Staphylococcus aureus Enterococcus faecalis
16
,67
%
25
,56
%
25
,56
%
21
,11
%
25
,56
%
33,3
3%
Microorganismo - Horario
Mañana Tarde
36
Gráfico N° 3 Identificación de microorganismos en relación al día de toma de la
muestra
Fuente: Jorge Fonseca
Elaboración: Ing. Luis Yumi
La presencia de Cándida albicans durante los día lunes, miércoles y viernes son un 3,33%,
17,78% y el 16,78% respectivamente. En el caso del Staphylococcus aureus la presencia el
día lunes es un 14,44%, el día miércoles es un 25,56% y el día viernes es un 11,11%. Y en el
caso del Enterococcus faecalis la aparición el día lunes, miércoles y viernes corresponden al
14,44%, 24,44% y 20% respectivamente.
Lunes Miércoles Viernes
3,3
3%
17
,78
%
16
,67
%
14
,44
%
25
,56
%
11
,11
%
14
,44
%
24
,44
%
20
%
Días a la semana vs microorganismo
Cándida albicans Staphylococcus aureus Enterococcus faecalis
37
Gráfico N° 4 Presencia de microorganismos en cada equipo radiográfico intraoral
Fuente: Jorge Fonseca
Elaboración: Ing. Luis Yumi
La presencia del microorganismo Cándida albicans en el equipo N° 1 es del 18,9%, en el
equipo N° 2 del 12,2% y el 6,7% en el equipo N° 3. En el caso de la Staphylococcus aureus el
porcentaje de presencia en el equipo N° 1, 2 y 3 es del 17,8%, 16,7% y 16,7% respectivamente.
Y en el Enterococcus faecalis la aparición de esta en el equipo N° 1 es el 24,4%, en el N° 2
del 17,8% y en el N° 3 la presencia es del 16,7%.
Cándida albicans Staphylococcus aureus Enterococcus faecalis
18
,9%
17
,8%
24
,4%
12
,2%
16
,7%
17
,8%
6,7
%
16
,7%
16
,7%
Equipos vs microorganismo
Equipo N° 1 Equipo N° 2 Equipo N° 3
38
Prueba estadística Chi Cuadrado de Pearson.
Datos descriptivos.
Tabla N° 7 Resumen de procesamiento de datos
Resumen de procesamiento de casos
Casos
Válidos Perdidos Total
N Porcentaje N Porcentaje N Porcentaje
Equipo * Cándida albicans 90 100,0% 0 0,0% 90 100,0%
Equipo * Staphylococcus
aureus 90 100,0% 0 0,0% 90 100,0%
Equipo * Enterococcus
faecalis 90 100,0% 0 0,0% 90 100,0%
En los datos descriptivos, se evidencia que la población analizada son 30 muestras analizadas
(equipo 1 – 2 -3) en diferentes superficies, horarios, que sumados dan 90 por cada
microorganismos (Cándida albicans, Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis).
Se quiere comprobar si en los equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de
la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador existe presencia de
microorganismos. Al verificar que la tabulación contiene datos cualitativos (ver Anexo N° 9),
se procede a utilizar la Prueba de Chi Cuadrado, que ayuda determinar el ajuste entre las
distribuciones de frecuencias observadas y esperadas de los diferentes niveles categoriales
entre equipos y microorganismos.
Tabla N° 8 Análisis estadístico Chi Cuadrado Pearson
Pruebas de chi-cuadrado
Detalle Valor gl Significación
asintótica (bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson Equipo * Cándida
albicans 8,603a 2 ,014
Chi-cuadrado de Pearson Equipo *
Staphylococcus aureus ,089a 2 ,957
Chi-cuadrado de Pearson Equipo *
Enterococcus faecalis 3,947a 2 ,139
39
a. 0 casillas (0,0%) han esperado un recuento menor que 5. El recuento mínimo esperado
es 12,33.
Fuente: Jorge Fonseca
Elaboración: Ing. Luis Yumi
De acuerdo al Prueba estadística se evidencia que si existe la presencia de microorganismos,
el más significante es la Cándida albicans con un valor de significancia p (0,014) < 0,05;
mientras el Staphylococcus aureus p (0,957)>0,05; y, Enterococcus faecalis con p(0,139) >
0,05.
Al utilizar las pruebas Chi Cuadrado de Pearson, se contrasta la hipótesis, la misma que sirve
para comprobar afirmaciones acerca de las funciones de probabilidad o densidad de las
variables. Se concluye que las microorganismos más significantes son Cándida albicans,
Enterococcus faecalis.
40
CAPITULO V
5. DISCUSIÓN
El control de infecciones en la práctica odontológica representa una parte fundamental de la
misma, ya que su falta de control conlleva a una serie de problemas de salud, sociales y
económicos que afectan al profesional, su personal auxiliar y a los pacientes; el presente trabajo
tiene como objetivo demostrar la presencia de microorganismos en los equipos radiográficos
intraorales, mediante un análisis cualitativo de las superficies que son contactadas por el
operador durante la toma radiográfica.
Los resultados de este trabajo nos muestran que si existe presencia de microorganismos
Staphylococcus aureus, Enterococcus faecalis, Cándida albicans en las superficies de los
equipos radiográficos intraorales, al momento que el operador contacta dichas superficies,
hecho que resulta similar al estudio realizado por Lee (5), Cornejo et al (14), Zambrano et al
(23) y Paipay et al (3).
El microorganismo que más presencia tuvo en las superficies analizadas de cada equipo
radiográfico intraoral, fue el Enterococcus faecalis, resultado que difiere del estudio realizado
por Paipay et al (3), en donde el microorganismo que más se identifico fue el Staphylococcus
aureus; la Cándida albicans también pudo ser identificada al igual que en otros estudios que
presentaron dicho microorganismo Lee (5), Paipay et al (3); la superficie que más presencia de
los tres microorganismo tuvo fue el tubo colimador, que resulta diferente a los estudios
realizados por otros autores.
Estos microorganismos, generalmente pertenecen a la flora ambiental y a la flora presente en
partes del cuerpo como cavidad bucal, vías respiratorias, aparato gastrointestinal de los seres
humanos, pero hay que tomar en cuenta que su presencia en muchas ocasiones puede generar
enfermedades si son llevados a sitios donde su localización no es frecuente y si el huésped
mantiene mecanismos de defensa que sean insuficientes para su control.
41
De acuerdo al horario de recolección de las muestras, el Enterococcus faecalis en el horario de
la tarde fue el que más se logró identificar, el Staphylococcus aureus tuvo igual presencia en
el horario de la mañana y la tarde, la Cándida albicans tuvo menos presencia que los otros dos
microorganismos, siendo los resultados diferentes al estudio realizado por Lee (5) en el que la
mayor cantidad de microorganismos fueron identificados en la recolección de muestras de la
mañana, siendo el Staphylococcus aureus y el Enterococcus faecalis los de mayor presencia.
El Enterococcus faecalis forma parte de la flora gastrointestinal de los seres humanos, puede
causar infecciones secundarias de conductos radiculares obturados y frecuentemente son
aislados en canales radiculares que presentan necrosis pulpar, es un microorganismo
oportunista ya que puede producir también infecciones de tipo nosocomial, por su facilidad de
encontrar vías de contaminación.
La presencia de Cándida albicans en los equipos radiográficos intraorales fue baja en
comparación a los otros dos microorganismos presentes en este estudio, resultado que contrasta
con los datos obtenidos por Paipay et al (3), y que difiere con el estudio realizado por Cornejo
et al (14), en donde la presencia de Cándida albicans fue similar al de otros microorganismos;
la Cándida albicans es considerada un microorganismo normal de la flora bucal, aunque es
responsable de infecciones oportunistas en pacientes inmunosuprimidos.
El día de la semana que más presencia de microorganismos tuvo fue el día miércoles,
presentándose en mayor porcentaje el Staphylococcus aureus, seguido por el Enterococcus
faecalis y por último la cándida albicans, esto pudiendo ser por la cantidad de pacientes que
acuden a la Clínica de Radiología.
La presencia de estos microorganismos en las superficies analizadas de los equipos
radiográficos intraorales, nos sugiere que estos fueron transportados desde la cavidad bucal de
los pacientes por medio de los guantes del operador hacia dichas superficies, lo que indica que
42
la contaminación cruzada durante exámenes radiográficos es una probabilidad muy alta como
se ha demostrado en otros estudios como el realizado por Arredondo (4).
Revisados los resultados de este estudio y otros estudios, se hace más evidente la necesidad de
mejorar los métodos de bioseguridad y su aplicación en la práctica diaria, así como evaluar que
los métodos de desinfección sean efectivos para todas las áreas clínicas para eliminar o reducir
los riesgos de transmisión de microorganismos.
43
CAPITULO VI
6. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
6.1. CONCLUSIONES
- En los equipos radiográficos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador, fueron identificados el
Staphylococcus aureus, Cándida albicans, Enterococcus faecalis.
- El Enterococcus faecalis es el microorganismo que más presencia tuvo en las
superficies analizadas, seguido por el Staphylococcus aureus y la Cándida albicans.
- Tomando en cuenta los horarios de recolección de las muestras, el Enterococcus
faecalis fue el que más presencia tuvo en el horario de la tarde, seguido por el
Staphylococcus aureus y la Cándida albicans, en el mismo horario.
- El equipo radiográfico intraoral Número 3 fue el que más presencia tuvo de
Staphylococcus aureus, Cándida albicans, Enterococcus faecalis, en comparación a
los otros dos equipos analizados.
6.2. RECOMENDACIONES
- Se recomienda realizar un estudio en condiciones similares a este a los equipos
radiográficos extraorales que se utilizan en la Clínica de Radiología de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
- Continuar la investigación de otros microorganismos que pudieran estar presentes en
los equipos intraorales de la Clínica de Radiología de la Facultad de Odontología de la
Universidad Central del Ecuador.
- Buscar en otras áreas de la Clínica de Radiología, como el cuarto de revelado, lavabos,
paredes, la presencia o no de microorganismos.
44
BIBLIOGRAFÍA
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45
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FACULTAD PILOTO DE ODONTOLOGÍA. 2012..
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819.
48
ANEXO 3 HOJA DE RUTA (DATOS)
HOJA DE RUTA
N° Equipo ______
N° Día _________ Horario de recolección de la muestra ______________
Superficie Medio de Transporte
Agar en el que se sembró
Tubo Colimador
Agar Chromoagar
Agar Sal Manitol Agar Bilis Esculina
Cabezal Agar Chromoagar Agar Sal Manitol
Agar Bilis Esculina
Brazo de extensión
Agar Chromoagar
Agar Sal Manitol Agar Bilis Esculina
Tablero de control
Agar Chromoagar
Agar Sal Manitol Agar Bilis Esculina
Botón de
exposición Agar Chromoagar
Agar Sal Manitol
Agar Bilis Esculina
Firmas:
_______________________ _________________________
Microbiólogo Responsable del protocolo
49
ANEXO 4 CARTAS DE IDONEIDAD ÉTICA
Quito, DM, 5 de Julio de 2017
Yo, Jorge Santiago Fonseca Pallango con número de cédula 172023062-0 estudiante egresado
de la Facultad de Odontología autor del proyecto de tesis: “EVALUACIÓN
MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA
CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, por medio de la presente carta declaro que
este trabajo de investigación el primero que he realizado, el mismo que es de mi autoría, y que
no ha sido formulado ni presentado por otra persona para ningún grado o calificación
profesional
Atentamente
_________________________________
Jorge Santiago Fonseca Pallango
C.I: 172023062-0
50
Quito, DM, 5 de Julio de 2017
Yo, Dr. Juan Alberto Viteri Moya con número de cédula 170846190-8 docente de la catedra
de Microbiología de la Facultad de Odontología, por medio de la presente declaro que he
tutorado 6 proyectos de tesis anteriormente y que en la actualidad soy tutor del proyecto de
tesis: “EVALUACIÓN MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS
INTRAORALES DE LA CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE
ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, realizado por
el Sr. Jorge Santiago Fonseca Pallango, el mismo que no ha sido formulado por otro/a
estudiante de la Facultad, ni tutorado por otro docente de la misma
Atentamente
_________________________________
Dr. Juan Alberto Viteri Moya
C.I: 1708461908
51
ANEXO 5 DECLARACIÓN DE CONFLICTO DE INTERESES
Quito, DM, 5 de Julio de 2017
Yo, Jorge Santiago Fonseca Pallango con número de cédula 172023062-0 estudiante egresado
de la Facultad de Odontología autor del proyecto de tesis: “EVALUACIÓN
MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA
CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, por medio de la presente carta declaro no
tener ningún tipo de conflicto de intereses, ni ninguna relación económica, personal, ni interés
financiero. Declaro además no haber recibido ningún tipo de beneficio monetario, bienes ni
subsidios de alguna fuente que pudiera tener interés en los resultados de esta investigación.
Atentamente
_________________________________
Jorge Santiago Fonseca Pallango
C.I: 172023062-0
52
Quito, DM, 5 de Julio de 2017
Yo, Dr. Juan Alberto Viteri Moya con número de cédula 170846190-8 docente de la catedra
de Microbiología de la Facultad de Odontología Tutor del proyecto de tesis: “EVALUACIÓN
MICROBIOLÓGICA EN EQUIPOS RADIOGRÁFICOS INTRAORALES DE LA
CLÍNICA DE RADIOLOGÍA DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR”, por medio de la presente carta declaro no
tener ningún tipo de conflicto de intereses, ni ninguna relación económica, personal, ni interés
financiero. Declaro además no haber recibido ningún tipo de beneficio monetario, bienes ni
subsidios de alguna fuente que pudiera tener interés en los resultados de esta investigación.
Atentamente
_________________________________
Dr. Juan Alberto Viteri Moya
C.I: 1708461908
56
ANEXO 9 TABLAS CRUZADAS
Equipo * Cándida albicans
Tabla cruzada
Cándida albicans
Total No Si
Equipo Equipo N° 1 Recuento 13 17 30
Recuento esperado 18,7 11,3 30,0
% del total 14,4% 18,9% 33,3%
Equipo N°2 Recuento 19 11 30
Recuento esperado 18,7 11,3 30,0
% del total 21,1% 12,2% 33,3%
Equipo N°3 Recuento 24 6 30
Recuento esperado 18,7 11,3 30,0
% del total 26,7% 6,7% 33,3%
Total Recuento 56 34 90
Recuento esperado 56,0 34,0 90,0
% del total 62,2% 37,8% 100,0%
Pruebas de chi-cuadrado
Valor gl
Significación
asintótica
(bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson 8,603a 2 ,014
Razón de verosimilitud 8,826 2 ,012
N de casos válidos 90
a. 0 casillas (0,0%) han esperado un recuento menor que 5. El recuento
mínimo esperado es 11,33.
57
Equipo * Staphylococcus aureus
Tabla cruzada
Staphylococcus aureus
Total No Si
Equipo Equipo N° 1 Recuento 14 16 30
Recuento esperado 14,7 15,3 30,0
% del total 15,6% 17,8% 33,3%
Equipo N°2 Recuento 15 15 30
Recuento esperado 14,7 15,3 30,0
% del total 16,7% 16,7% 33,3%
Equipo N°3 Recuento 15 15 30
Recuento esperado 14,7 15,3 30,0
% del total 16,7% 16,7% 33,3%
Total Recuento 44 46 90
Recuento esperado 44,0 46,0 90,0
% del total 48,9% 51,1% 100,0%
Pruebas de chi-cuadrado
Valor gl
Significación
asintótica
(bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson ,089a 2 ,957
Razón de verosimilitud ,089 2 ,956
N de casos válidos 90
a. 0 casillas (0,0%) han esperado un recuento menor que 5. El recuento
mínimo esperado es 14,67.
58
Equipo * Enterococcus faecalis
Tabla cruzada
Enterococcus faecalis
Total No Si
Equipo Equipo N° 1 Recuento 8 22 30
Recuento esperado 12,3 17,7 30,0
% del total 8,9% 24,4% 33,3%
Equipo N°2 Recuento 14 16 30
Recuento esperado 12,3 17,7 30,0
% del total 15,6% 17,8% 33,3%
Equipo N°3 Recuento 15 15 30
Recuento esperado 12,3 17,7 30,0
% del total 16,7% 16,7% 33,3%
Total Recuento 37 53 90
Recuento esperado 37,0 53,0 90,0
% del total 41,1% 58,9% 100,0%
Pruebas de chi-cuadrado
Valor gl
Significación
asintótica
(bilateral)
Chi-cuadrado de Pearson 3,947a 2 ,139
Razón de verosimilitud 4,068 2 ,131
N de casos válidos 90
a. 0 casillas (0,0%) han esperado un recuento menor que 5. El recuento
mínimo esperado es 12,33.