Post on 07-Apr-2015
EXAMEN GENERAL DE HECES
El adulto normal defeca a intervalos que varíanentre:
3 veces/ día 3 veces/ semana
El patrón mas común es el 1 vez/ día un volumende 100 a 200 gr. de heces.
Las 2/3 partes de peso de la materia fecal lo constituyen:
Bacterias Celulosa Secreciones intestinales Células exfoliadas del epitelio intestinal
CONSISTE EN:
Examen Directo: Microscópico y macroscópico.
Parasicológico parcial para la demostración de parásitos comunes
Se puede ampliar para estudios mas completos (bacteriológicos, virológicos, inmunológicos, químicos)
OBTENCIÓN DE LA MUESTRA:
1. Se deben obtener en recipientes limpios y secos de material no absorbente.
2. La muestra debe ser suficiente y representativa de una deposición.
3. Debe hacerse directamente al recipiente o en una bolsa plástica, si no se puede utilizar el método de Hoffman.
4. Muestras obtenidas por hisopado rectal no es recomendable. Única indicación: siembra inmediata de cultivo bacteriológico en caso de diarrea aguda.
5. Puede obtenerse a cualquier hora del día y deber ser llevada con prontitud al laboratorio.
6. Deben obtenerse en forma natural, el uso de laxantes con base de magnesio, bismuto o aceite mineral es perjudicial.
7. Es recomendable hacer examen seriado: por lo menos 3 muestras periodicidad: intervalos de 2 o 3 días. Una sola muestra detecta 30-50% de parásitos.
8. Evitar uso de: antibióticos, antiácidos, Bario y compuestos Anti diarreicos. Esperar 7 días después de administrados.
COLORACIONES:
Tipos:
Húmedas (examen en fresco): los microorganismos se suspenden en un liquido.
Permiteo Observar movimientoso Observar la morfología
Seca (coloración o tinción)o Simple: morfología celularo Diferencial: Estructuras celulares
DETECCIÓN DE GRASALa cantidad de grasa en las heces depende de: La cantidad de grasas en la dieta Funcionamiento del proceso de la digestión Absorción del aparato digestivo
En los adultos normales se excreta de 1-7 gr/día
Causas de la mala absorción Deficiencia de lipasa pancreático Disminución de sales biliares Resección intestinal o enfermedad del íleon terminal Aumento del transito intestinal Emulsificacion inadecuada de grasas Alteración del pH duodenal Enfermedad que afectan mucosa y linfáticos intestinales.
MÉTODOS PARA EL ESTUDIO DE LÍPIDOS
Microscópicos cualitativos mediante el uso de colorantes como el sudan III y Oil Red O.
Complejos utilizando luz infrarroja.
Cuantitativos.
SANGRE OCULTA Es un estudio no invasivo que detecta la presencia de
sangre oculta en heces.
Existen dos tipos: Frotis de guayaco Desechable con reactivo
Frotis de guayaco se base en la oxidación de un compuesto
fenolito contenido en la resina, a una estructura quinonica.
La oxidación fenolica del guayaco en presencia de hemoglobina da un color azul.
Falsos positivos: Presencia de alimentos que contienen per oxidasas como frutas frescas y carnes.
Falsos negativos: agentes oxidantes (acido ascórbico), atraso de varios días para efectuar examen, deshidratación de las muestras.
Resultados positivos nos pueden hacer pensar en: Ca de colon Pólipos en colon Esofagitis Gastritis Hemorroides Enfermedad intestinal inflamatoria Ulcera péptica Varices esofágicas Infecciones intestinales.
COPROCULTIVO
SE DEBE SOLICITAR LOS EXÁMENES MAS DEMOSTRATIVOS SEGÚN EL CUADRO CLÍNICO, CONOCIENDO LA EPIDEMIOLOGIA LOCAL. SOLO SI HAY PRESENCIA DE LEUCOCITOS EN EXAMEN EN FRESCO.
Se incuban los cultivos aeróbicamente.
se pueden encontrar :
Klebsiella-enterobacter, E. Coli, citrobacter, proteus.
Los agentes establecidos que se buscan:
E. Coli. Salmonella Shigella Vibrio Entamoeba Giardia Raro: estafilococos coagulasa positiva
MÉTODOS PARA SALMONELLA Y SHIGELLA
Agar eosina azul de metileno Agar endo Agar McConkey Agar Desoxicolato
PROCEDIMIENTOSCLASIFICACIÓN DEL EXAMEN COPROPARASITOLÓGICO
Por el tipo de procesamiento de la muestra1. Directo: macro y micro2. Por: a. flotacion b.
sedimentacion c. Termotropismo d. Dilucion e. Cultivo f.
Aclaracion g. TincionColorantes 3. Húmedos 4. Fijos: temp y perm.
EXPRESIÓN NUMÉRICA
CUALITATIVOS:
A. FRESCOB. CENTRIFUGACIÓN (WILLIS)C. SEDIMENTACIÓN (RITCHIE) CUANTITATIVOS:
A. CONCENTRACIÓN DE FERREIRAB. DILUCIÓN DE STOLL.
MOMENTO DE REALIZACIÓN
1. INMEDIATO O EN FRESCO2. MEDIATO O PRESERVADO.
Especialidades a. Tamizado b. Graham c. Baermand. Harada Morie. Coloración Khon f. Biopsia de Tejidos g. Microscopia Electrónica
HECES FRESCAS
Examen directo Kato Katz Baerman Harada Mori
•Conteo de huevos•Huevos de helmintos•Larvas nematodos•Trofozoitos de protozoos•Quistes •Ooquistes de apicomplexas•Leucocitos , Eritrocitos•Cristales de Charcott Layden
•Conteo de huevos•Huevos de Taenia•Ooquistes de Isospora belli
•Extracción de larvas de Strongyloides
•Diferenciación de larvas de nematodos
EXAMEN PARASITOLÓGICO
La selección de los métodos para demostrar infecciones parasitarias depende de:
Propósito del estudio. La condición de la muestra fresca o fijada. Para enterobius: Método de Graham (cinta adhesiva transparente para
recuperar huevos) Humedecer un hisopo con vaselina estéril y recubrirlo
con parafina.
Para Strongyoides: Método Baerman (concentracion de larvas
usando vaso cervecero, gasa y pascón). Cultivo en Agar peptonado con extracto de
carne Para angyostrongylus costarricenses: Examen serológico e histológico Huevos de uncinarias: Metodo Harada Mori (papel-filtro -gradilla-
agua-heces)
Huevos de Trichuris Trichuria y Áscaris: Método de Kato Katz (paleta-portaobjetos –
celofán-y templete)
En muchos casos no es posible que la muestra sea examinada inmediatamente se recomienda el uso de fijadores como:
1. PVA (alcohol polivinilico)2. SAF (solución de formalina –ac. Acético –
acetato de Na.3. Formalina 5 al 10%
EXISTEN OTROS MÉTODOS DE CONCENTRACIÓN:
SHEATER, SULFATO DE ZINC, FORMOL-ETER, ETC.
Algunos parásitos y su forma encontrada en las heces
•Entamoeba histolityca-dispar Trofozoito y quiste
•Giardia intestinal (G. Lamblia) Trofozoito y quiste
•Balantidium coli Trofozoito y quiste
•Isospora belli Ooquiste
•Taenia solium huevo, segmento, occ scolex
•Ascaris lumbricoides huevo
•Enterobius vermicularis adulto, occ. Huevo
•Strongyloides stercolaris larva
•Trichuris trichuria huevo