06 - TRAB INVESTIGACION - MONTE DE OCA A
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TRABAJODEINVESTIGACIÓN
*ACCIÓNPROTECTORADELAADVENTICIASOBRELACALCIFICACIÓNVASCULAR
1 1 2 1 3MontesdeOcaA ,González ,A.González-Castro ,F.GuerreroPavón ,C.HerenciaBellido ,Y.3 1 4 1Almadén ,I.López-Villalba ,M.Rodríguez ,E.Aguilera-Tejero
1DepartamentodeMedicinayCirugíaAnimal,IMIBIC,HospitalUniversitarioReinaSofía.UniversidaddeCórdoba,España.2DepartamentodeCienciasFisiológicas,FacultaddeCienciasVeterinarias,UniversidadNacionaldeAsunción,Paraguay.3Investigación,IMIBIC,HospitalUniversitarioReinaSofía.UniversidaddeCórdoba,España.4Nefrología,IMIBIC,HospitalUniversitarioReinaSofía.UniversidaddeCórdoba,España.*ResumenpublicadoenlaRevistaNefrologíadelaSociedadEspañoladeNefrología.España.
Direcciónparacorrespondencia:Dra.AdrianaY.GonzálezCastro.FacultaddeCienciasVeterinarias,UniversidadNacionaldeAsunción,CasilladeCorreoN°1061-RutaMcal.Estigarribiakm10,5-CampusUniversitario-SanLorenzo-ParaguayE-Mail:[email protected]:03denoviembrede2013/Aceptado:09dediciembrede2013
RESUMEN. El rol del endotelio y de las células del músculo liso vascular de la media en la formación de
calcificacionesvasculares(CV)sehaestudiadoconprofundidad.Sinembargo,nosehaprestadoatenciónalpapelde
laadventiciaenesteprocesoynosehaconsideradoelpotencialdeestetejidocomotalporqueseasumequela
adventiciaesnadamásqueunsimple«tejidoconectivolaxo»querodealosvasossanguíneosaparentementesinuna
funciónespecífica.Untrabajopublicado(1)apoyaunnuevoparadigmadeCVde«afuerahaciaadentro»,enelquela
adventiciapuedeparticiparcomoprecursoraenlarespuestaaunalesiónvascular.Elobjetivodelpresenteestudio
fuedeterminarelpapeldelaadventiciaeneldesarrollodeCVenunmodeloinvitro.Paraellosecultivaronanillos
aórticosprocedentesderatasWistarconadventicia (c/adv)ysinadventicia (s/adv)enmediosconnivelesde
fósforonormal(controlP0,9mM)yelevado(P3,3mM).Sedeterminóelcontenidomineral(CayP)delosanillospor
colorimetríaymediantecorteshistológicosteñidosconVonKossa.LaadicióndeP(3,3Mm)almediodecultivo
resultóenunincrementoenelcontenidomineraldetodoslosanillos.Losanillosdelgrupos/advtratadosconP(3,3
mM)presentaronmayorcontenidomineralquelosanillosc/advcultivadosbajolasmismascondiciones.Nohubo
diferenciasencuantoacontenidomineralenlosgruposc/advys/advcultivadosconconcentracionesnormalesdeP
(0,9mM).Enconclusión,laadventiciadesempeñaunpapelprotectordelaCVenanillosdeaortaexpuestosaaltas
concentracionesdePinvitro.
Palabrasclave:calcificacionesvasculares,fósforo,calcio,invitro
ABSTRACT.TheroleofendotheliumandthevascularSmoothMuscleCellsofthemiddlelayerontheformationof
vascularcalcifications(VC)hasbeenstudyindeep.However,noattentionwaspayedtotherolofadventiciousinthis
process.Perhaps,thepotentialofthistissuewasoverlookedbecausetheadventiciouswasconsidedhardlyasasoft
connectivetissue,withoutaspecificfunction.Ontheotherhand,apublishedwork(1)stressesanewparadigmaVC
of“Fromouttoin”,inwhichtheadventiciouscanparticipateasaforerunnerintheanswertovascularlesion.The
aimofthepresentstudywastodeterminetherolloftheadventiciousinthedevelopmentofVCinainvitromodel.For
thisporpose,aorticringsofwistarratswereculturedwithadventicious(with/adv)andwithout(wout/adv)in
culturemediawithnormallevelsofphosphorus(Control–P0,9mM)andelevated(P3,3mM).mineralcontent(Ca
andP).OftheaortalringsweremeasuredbycolormetryandbymeanofhistologicalcoloredslidetissuesbyVon
Kossamethod.TheaditionofP3,3mMtotheculturemediaresultedinanincreaseinmineralcontentofalltherings.
Theringsofthewout/advtreatedwithP3,3mMshowedhighermineralcontentthanthoseofw.advgroupcultured
under thesameconditions.Therewerenodifferences inmineralcontentofbothw.advandwoutadvgroups
culturedundernormalconcentrationofP(0,9mM).Inconclusion,theadventiciousplayanprotectiverollontheVC
inaortalringsexposedtohighconcentrationsofinvitro.
Keywords:vascularcalcifications,phosphorus,calcium,invitro.
COMPENDIO DE
VETERINARIASCIENCIAS
PROTECTIVEACTIONOFADVENTICIOUSONTHEVASCULARCALCIFICATION
26 ISSN 2225-5214Compend. cienc. vet. 2013; 03 (02) : 26 - 31
INTRODUCCIÓN
Lacalcificaciónvascular(CV) hacereferenciaal
depósito anormal de sales de calcio en los vasos
sanguíneos, miocardio y válvulas cardíacas (2). Esta
patologíacontribuyeconsiderablementealamortalidad
cardiovascular en pacientes con enfermedad renal
terminal(3).Aproximadamenteel50%delamortalidad
enestospacientesseatribuyealaCV(4).
LaCVhasidoconsideradadurantemuchotiempo
como un proceso pasivo y degenerativo. Sin embargo,
hallazgosrecientessugierenqueesunprocesoactivode
regulaciónsimilaralaosteogénesis(5),consistenteenla
transdiferenciación de las células del músculo liso
vascular(CMLV)aosteoblastos,capacesdesintetizarlas
proteínas requeridasparalacalcificación(6).Sibien,la
CV ha sido reconocida hace más de 200 años, la
comprensión de la patogénesis de este trastorno es
todavíaincompleta(7).
EneldesarrollodelasCV,losdepósitosdefosfato
decalcioenformadeapatitaseasientanenlasdistintas
capas del vaso sanguíneo y se asocian a patologías
específicas.Lacalcificacióndelaíntimaseobservaenlas
lesionesarterioscleróticas,mientrasquelacalcificación
delamediaescomúnenlaarteriosclerosisasociadaala
edad,ladiabetesylainsuficienciarenalcrónica(IRC)(8).
En la IRC, la CV de la media ocurre en la matriz
extracelulardelasCMLV comoresultadooproductode
losdesequilibriosdelmetabolismomineralquesufrenlos
enfermos renales, destacándose a la hiperfosfatemia,
como principal factor de riesgo de mortalidad
cardiovascularenpacientesconIRC,desempeñandoun
papelclaveeneldesarrollodelaCV(9,10).
Diversos estudios in vitro (11, 8, 12, 4) han
reveladoquelaselevadasconcentracionesdefosfatoenel
mediodecultivoconstituyenunpotente inductorde la
calcificación vascular, la cual sucede mediante una
transformación de las CMLV hacia un fenotipo
osteocondrogénico. Después del tratamiento con altos
niveles de fósforo, las CMLV expresan proteínas
marcadoras de hueso y cartílago que rigen la
diferenciación osteoblástica y condrocítica tales como
os teopont ina , fos fa tasa a l ca l ina , regu lador
multifuncional de la formación ósea (Runx2/Cbfa1),
proteína morfogénica ósea 2 (BMP2), músculo liso
homeobox2(Msx2),osterixyregióndeterminantesexual
Y-box9(Sox9).Además,encondicionesricasenfósforo,
las CMLV muestran una dramática disminución de las
proteínaspropiasdesuestirpecomoα-actinamuscular
lisa(SMα-actina),calponinaα-22proteínamuscularlisa
(SM22α)(6,2,13,14).Estosmismoscambioscelularesy
moleculares se han observado en pacientes
hiperfosfatémicosconIRC(15, 10, 16,17,18).Eneste
contexto, se resaltaque laproteínamatricial glutámica
(MGP) contiene cinco residuos del aminoácido
dependiente de vitamina K [ácido α-carboxiglutámico
(Gla)]yseexpresanormalmenteenlastúnicasadventicia
ymedia de las arterias (más en la adventicia), aunque
también se localiza en huesos, cartílagos, riñones y
válvulas cardíacas. En la adventicia está asociada a la
matrizextracelular,ysupapelenlaCVnoestádeltodo
clarificado.Enotrosestudiossehademostradoqueenlas
CMLVinvitro,laexpresióndeMGPseincrementacuando
losnivelesdecalcioextracelularaumentan,loquesugiere
que MGP participa en un mecanismo homeostático
destinadoacontrolarylimitarlamineralización(11,19).
Porlotanto,teniendoencuentalapresenciadeMGPenla
túnicaadventicia,lamismapodríaactuarcomoprotector
delasCV.
Los investigadores no han dimensionado el
potencial de este tejidopor considerarlo solo comoun
“tejidoconectivolaxo”quecircundalosvasossanguíneos,
sinningunafunciónespecíficadistintaqueactuarcomo
soporte de los grandes vasos (20). Sin embargo, un
trabajo publicado (1) apoya un nuevo paradigma
hipotético de “afuera hacia adentro”, en el que la
adventicia podría participar como reguladora en la
respuestaaunalesiónoinflamaciónvascular.
Considerandoquelaenfermedadcardiovascular
eslaprimeracausademuerteenenfermosrenalesytiene
unaprofundainfluenciasobrelafuncióncardiovasculary
lasalud,eldesafíoessaberquémecanismosestánactivos
y/opredominanendiversosestadiosdelaenfermedad
para desarrollar estrategias terapéuticas eficaces que
puedan prevenir y potencialmente revertir la
calcificaciónvascularenlainsuficienciarenalcrónica.Los
objetivosdelapresenteinvestigaciónfueron:desarrollar
un modelo in vitro de explantes de aortas (EA) sin
adventicia,y examinarenestenuevomodeloelpapelde
la misma en el desarrollo de las calcificaciones
vasculares.
MATERIALESYMÉTODOS.
El trabajo experimental de investigación, se
realizó en el laboratorio del área de Nefrología del
Instituto Maimónides de Investigación Biomédica de
Córdoba(IMIBIC)emplazadoenelHospitalUniversitario
Reina Sofía, conjuntamente con el departamento de
MedicinayCirugíadelaUniversidaddeCórdoba,España.
Lospasosrealizadossonesbozadosseguidamente:
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Figura 2. Procesamiento de los explantes aórticostranscurrido el tiempo del experimento, para sudesmineralizaciónycuantificacióndecalcioyfósforo.
Figura 1. Representación esquemática del proceso deobtención y cultivo de las aortas torácicas de ratasdestinadasaexplantesaórticos.
1.Cultivosinvitro.
Las aortas torácicas fueron obtenidas de ratas
Wistar, de 8 semanas de edad, con peso promedio
comprendido entre 200 a 300 gramos. Las aortas
torácicasfueronclasificadasalazarendosgrupos:unode
aortassinadventiciayotrodeaortasconadventicia. Las
aortasselimpiaroncuidadosamenteconsuerofisiológico
estéril,enunacampanadeflujolaminar.Finalmente,las
aortas fueron seccionadas en anillos de 2 a 3 mm de
grosor.Losanillosdeaortasecolocaronenplacasde6
pocillos, con medio de cultivo. El medio de cultivo
utilizado fue Dulbecco's modified eagle's medium
(DMEM)suplementadocon1mmol/Ldepiruvatosódico,
4,5g/Ldeglutamina,100U/mLdepenicilina,100mg/mL
de estreptomicina y 20 mM de 4-(2-hydroxyethyl)-1
piperazineethanesulfonic acid (HEPES) un agente
tampón. Los explantes semantuvieron en una estufa a
37ºC, en una atmósfera húmeda y 5% de dióxido de
carbono(CO2).Elmediodecultivoserenovócada2días.
Lospasosdelprocedimientodeobtenciónycultivodelas
aortaspuedenobservarseenlaFigura1.
2.Induccióndecalcificación.
Lainduccióndecalcificacióndelosexplantesde
aorta se consiguió en unmedio con alto contenido en
fósforo,quefuepreparadoconDMEMañadiendofósforoy
3,75U/mLdefosfatasaalcalina.Losexplantescultivados
no sintetizan fosfatasa alcalina, de ahí la necesidad de
suplementar.Elmediotuvounaconcentracióndecalcio
de1,8mMyelfosfatofueincorporadoenunaproporción
2:1defosfatomonobásicoydibásico.
3.Cuantificacióndecalcio.
Alfinalizareltiempodelexperimento,losanillos
de aorta fueron colocados en placas de 24 pocillos
conteniendo una solución de lavado preparada con:
cloruro cálcico (CaCl2) (0,147g/l), HEPES (0,0476g/l),
cloruro sódico (NaCl) (0,0876g/l) y nitrato sódico
(NaNO3) (0,002g/L). Las aortas permanecieron en la
solución de lavado durante 48 horas (renovando la
soluciónalas24horas);duranteestetiempoeltejidose
mantuvoenagitaciónya37ºC,enunaatmósferahúmeda
con5%deCO2.
Finalizado el procedimiento anterior, los
explantesfueronlavadosconaguabidestiladaysecados
conpapeldefiltro.Luego,fueronpesadosenunabalanza
de precisión y desmineralizados en ácido fórmico al
10%,duranteunperiodode48horas. El contenidode
calcio en el extracto de ácido fórmico, obtenido de la
desmineralizacióndelosexplantesdeaorta,sedeterminóTMcolorimétricamente medianteelkitde QuantiChrom
CalciumAssayKit.Elresultadodelamedicióndelcalciose
estandarizóconelpesodelasaortas, lasunidadesylas
concentracionesexpresadasenμgdecalcio/mgdetejido.
En la Figura 2 se observa un esquema del proceso
completo.
4.Cuantificacióndefósforo
Elcontenidodefósforoenelextractodeácidofórmico,
obtenido de la desmineralización de los explantes de
aorta,sedeterminócolorimétricamentemedianteunkit
deBioSystems.Elresultadodelamedicióndefósforofue
estandarizadoconelpesodelasaortas,enunidadesde
medidadeμgdefósforo/mgdetejido.
5.TinciónVonKossa
Paraladeteccióndelosdepósitos mineralesen
losexplantes,seutilizólatinciónVonKossa,consistente
enlasustitucióndelosionesdecalciointratisularesen
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forma de fosfatos o carbonatos por iones de plata, en
soluciónacuosasometidosaunprocesodeexposiciónala
luz. Los depósitos iniciales de calcio se colorean de
marrón-negro. Así mismo se llevó a cabo una
contratinciónconhematoxilina-eosina,paraelestudiode
laarquitecturatisular.
RESULTADOSYDISCUSIÓN
1.Calcificaciónenexplantesdeaortacultivadoscon
concentracionesaltasdefósforo.
Conelpropósitodedeterminarlaconcentración
adecuadadefosfatoparainducircalcificaciónserealizó
unacurvadosis–respuesta.Losresultadosdemostraron
quelosEAcultivadosconconcentracionescrecientesde
fosfatodurante9díascalcificarondeunamaneradosis-
dependiente(Figura3).Lacalcificaciónobtenidadelos
EA cultivados con 2,3 mM, 2,8mM, 3,3 mM y 3,8 mM
(1,59±0,15; 2,46±0,33; 4,00±0,32; 3,63±0,47 µg de
ca l c io/mg de te j ido , respec t ivamente) fue
significativamente (p<0,05) más alta que la del grupo
control(0,13±0,09µgdecalcio/mgdetejido).
Paraconocerlaprogresióndelacalcificacióna
travésdeltiempo,secultivaronlosexplantescon3,3mM
defosfatoendinámicasde5,7y9días(Figura4).
LacalcificaciónenlosEAsemultiplicócasitres
veces entre los días 5 (0,67±0,24 µg de calcio/mg de
tejido) y 7 (1,93±0,22 µg de calcio/mg de tejido) en
cultivo,yseduplicósisecomparanlosvaloresobtenidos
alos7y9días(4,01±0,32µgdecalcio/mgdetejido).Las
diferenciasentrelosdías5,7y9decultivoconP3,3mM
fueronsignificativas(p<0,001).
2.Papel de la adventicia en la calcificación de EA
expuestosaaltasconcentracionesdefósforo
Unavez corroborada laviabilidaddelmodelo
experimental y en base al objetivo 2 del trabajo, se
investigóenestemodeloelposiblepapeldelaadventicia
en el desarrollo de las CV. Para ello, se realizaron 3
ensayosexperimentalesindependientes,endinámicade
9días.Seincluyerongruposdepocillosdistribuídosdela
siguientemanera:pocilloscontrolconadventicia(c/adv)
ypocillos sinadventicia(s/adv);yungrupodepocillos
tratados con elevada concentración de fósforo (P 3,3
mM), nuevamente subdividido en un grupo con
adventicia(Pc/adv)yotrosinadventicia(Ps/adv).
2.1.Análisisconjuntodelosexperimentos
El análisis conjunto de los tres experimentos
revelóque,comoseesperaba,losgrupostratadosconP
depositaron más calcio (Figura 5) que los grupos
controles (5,16±2,24 y 7,47±4,70 µg de calcio/mg de
tejido,Pc/advyPs/advrespectivamentevs.0,10±0,14;
0,30±0,44µgdecalcio/mgdetejido,Cc/advyCs/adv
respectivamente).EncuantoalosgrupostratadosconP,
losEAs/adv registraronunamayorcantidaddecalcio
que el grupo P c/adv (7,47±4,70 vs. 5,16±2,24 µg de
calcio/mgdetejido,respectivamente)estadiferenciafue
estadísticamentesignificativa(p<0,05).
Además, el conjuntode los tres experimentos
evidencióquelacantidaddefósforoacumulado(Figura
6)en losgrupostratadosconP fuesignificativamente
(p<0,001)másaltaquelosgruposcontroles(13,17±8,29
y15,96±11,11µgdefósforo/mgdetejido,Pc/advyP
s/advrespectivamentevs.0,18±0,10;1,95±4,86µgde
Figura 3. La calcificación en EA cultivados conconcentracionescrecientesdefosfatodurante9días.(a),p< 0,005 versus control; (b), p< 0,001 vs. todos losgrupos excepto P 3,8 mM; (c), p<0,001 vs. todos losgruposexceptoP3,3mM.
MontesdeOcaA.ycol.
Figura4.CalcificaciónobtenidaenEAalsercultivadosconP3,3mMdefosfatodurante5,7y9días.(a),p<0,001vs. controles; (b), p< 0,001 vs. P 3,3 mM 5 días; (c),p<0,001vs.P3,3mM7días
Control P1,8mM P2,3mM P2,8mM P3,3mM P3,8mM
a
a
a,ba,c
5Días
a
a,b
a,b,c
7Días 9Días
Control P3,3mM
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fósforo/mgdetejido,Cc/advyCs/advrespectivamente).
Sinembargo,noseobservódiferenciasignificativaentre
losgupostratadosconP.
3.Determinacióninsitudelapresenciadedepósitos
mineralesencorteshistológicosdelosEAenestudio
Paraconfirmarlosdatosobtenidosmediantela
cuantificacióndecalcioyfósforoenlosEAalos9días,se
realizó la tinción Von Kossa (VK) y la contratinción
hematoxilina-eosinaalos4gruposdeestudio(Figuras7y
8). Tal y como sucede en las determinaciones
colorimétricas, en estas imágenes se aprecia una
deposiciónmineralmásextensaen elgrupoPs/adven
comparaciónconelgrupoPc/adv.
La presente investigación se centró en el
desarrollodeunmodelodeEAsinadventicia,objetivo
llevadoa cabo conéxito, lograndomantener en cultivo
durante9díaslosEAencondicionesfavorables.Además,
losEAsinadventiciaexpuestosaconcentracionesaltasde
fósforocalcificaronmásqueaquellosquepermanecieron
con todas las túnicas. Los hallazgos han revelado una
aproximaciónimportanteenelconocimientodelpapelde
laadventiciaeneldesarrollodelasCV.
El desarrollo del modelo de explantes sin
adventiciaefectuadoenestetrabajosebasóenelmodelo
decalcificacióndelamediapuestoapuntoporuntrabajo
experimental anterior (21). Estos cultivos pueden
realizarsealargoplazosinnecesidaddeutilizarfactores
de crecimiento. Los EA tienen la ventaja de mantener
intacta la arquitectura tisular. Además, la presencia de
todaslaspoblacionescelularesqueconformanlaaortay
elcontactointercelular hacenqueestemodeloseamuy
semejanteaunorganismovivo.Numerososestudios(22,
23, 12) han demostrado anteriormente que las CMLV
expuestasaconcentracionesaltasdefosfatocalcificany
sufrenunatransiciónfenotípica.
Los resultados obtenidos en el presente trabajo han
confirmado lo que se había reportado previamente,
demostrando en el modelo experimental utilizado, un
aumento del depósito mineral tras cultivar con altos
niveles de fósforo. Los hallazgos de este estudio están
acordesconlosresultadosobtenidosporvariosautoresal
Figura5.CantidaddecalcioobtenidaenEAcultivadosconconcentracionesaltasdefosfato.(a,),p<0,001 vs gruposcontroles.(b),p<0,05vs.Pc/adv.
Figura 6.Cantidad de fósforo obtenido de los EA. (a,),p<0,001vs.gruposcontroles
Figuras7y8.SeccionesdelosEAsometidosatinciónVonKossa(VK)ylacontratinciónhematoxilina-eosina(H-E) de EA de grupos tratados con altas concentracionesdefósforoconysinadventicia.
Controlc/adv
aa,b
Experimentos1,2,3
Controls/adv Pc/adv Ps/adv
Controlc/adv
aa
Experimentos1,2,3
Controls/adv Pc/adv Ps/adv
GrupoControls/advGrupoControlc/adv
GrupoPs/advGrupoPc/adv
VK H-E
Compend. cienc. vet. 2013; 03 (02) : 26 - 32
demostrarquelacalcificacióndelasCMLVexpuestasa
concentracionesaltasdefósforoseincrementaconel
pasodeltiempoyqueelgradodecalcificacióninducida
esdependientede lasmismasenelmediodecultivo
(12,3,24,25,26).Porlotantoesposibleafirmarquelas
CMLVsufrenunacalcificacióntiempodependienteyen
correlacióndirectaconlaconcentracióndefosfatoenel
medio de cultivo. Esta investigación fue la primera
enfocadaeneldesarrollodeunmodelo invitropara
conocerelpapeldelaadventiciaeneldesarrollodelas
CV.
En este trabajo de investigación se pudo
observarademás,quelosEAsinadventiciacalcificaron
másqueelgrupodelosEAconadventiciaexpuestosa
altas concentraciones de fósforo. La calcificación se
comprobómediantelacuantificacióndecalcio,fósforo
y deposición mineral (Von Kossa). Los resultados
obtenidos demuestran de una manera sólida que el
proceso de mineralización se acentúa al retirar la
adventicia de la aorta; los valores de fósforo no
muestranunincrementosignificativoentrelosgrupos
de estudio (P c/adv y P s/adv) pero se observa una
tendenciaclaraaincrementarlaacumulacióndeeste
mineralcuandoesretiradalaadventicia.Sinembargo,
el incremento del depósito de calcio en los EA sin
adventicia es diferente estadísticamente respecto de
losEAconadventicia.
Losdatosexpuestospreviamentesugierenque
laadventiciaactúacomoprotectordelasCV,estopodría
deberse a que la (MGP) presente en la pared de la
arteria normal, principalmente en la adventicia,
participaenunmecanismohomeostáticodestinadoa
controlarylimitarlamineralizaciónjugandounpapel
fundamental en la prevención de las CV. Un posible
mecanismo por el cual MGP podría inhibir la
calcificación es que regule indirectamente la
mineralizaciónmediante efectos en la diferenciación
osteogénicadelascélulasmesenquimales,medianteel
secuestro de BMP-2, con la cual MGP forma un
complejo,previniendolainteraccióndeBMP-2consus
receptores(11).Portodoesto,seríainteresanteenun
futuropróximoevaluarlaexpresióngénicadeMGPy
BMP-2enestenuevomodelodesarrollado.
En definitiva, este estudio aporta datos
importantes acerca del papel de la adventicia en el
desarrollo de la calcificación vascular. También abre
una nueva línea de investigación para ahondar los
conocimientos de los mecanismos celulares y
molecularesdelaCVydeestamaneradesarrollar
estrategiasterapéuticaseficacesquepuedanpreveniry
potencialmenterevertirestapatología.
CONCLUSIONES.
1.Sehaconseguidodesarrollarunmodeloinvitrode
explantesdeaortas(EA)sinadventicia.
2. El presente estudio sugiere que, en este nuevo
modelo,laadventiciapodríaactuarcomoprotectoren
eldesarrollodelascalcificacionesvasculares.
AGRADECIMIENTO.
Al equipo de trabajo del laboratorio del área de
Nefrologíadel InstitutoMaimónidesde Investigación
Biomédica de Córdoba (IMIBIC), departamento de
Medicina y Cirugía Animal de la Universidad de
Córdoba, España por hacer posible la realización de
estetrabajodeinvestigación.
BIBLIOGRAFÍA
1.LiuZY,KongW.Theroleofadventitia inatherosclerosis.
ShengLiKeXueJinZhan41(3):177-82.2010
2.SpeerM,YangH,BrabbT,LeafE,LookA,LinW,FrutkinA,
Dichek D, Giachelli C. Smooth Muscle Cells Give Rise to
Osteochondrogenic Precursors and Chondrocytes in
CalcifyingArteries.Circ.Res104;733-741.2009
3.LiX,YangH,GiachelliC.BMP-2promotesphosphateuptake,
phenotypicmodulation,andcalcificationofhumanvascular
smoothmusclecells.Atherosclerosis199:271-277.2008
4. Li X, Yang H, Giachelli C. Role of the sodium-dependent
phosphatecotransporterpit-1,invascularsmoothmusclecell
calcification.CircRes98:905-912.2006
5.JonoS,ShioiA,IkariY,NishizawaY.Vascularcalcificationin
chronic kidney disease. J Bone Miner Metab 24:176–181.
2006
6.MontesdeOcaA,MadueñoJ,Martinez-MorenoJ,GuerreroF,
Muñoz-Castañeda,Rodriguez-OrtizME,MendozaF,Almaden
Y,LópezI,RodriguezM,Aquilera-TejeroE.Hight-Phosphate-
induced calcification is related to sm22α promoter
methylationinvascularsmoothmusclecells.J.BoneMinRes
25:1996–2005.2010
7. Wallin R, Wajih N, Greenwood G, Sane D. Arterial
calcification:areviewofmechanisms,animalmodels,andthe
prospectsfortherapy.MedResRev21:274-301.2001
MontesdeOcaA.ycol.
31ISSN 2225-5214 Compend. cienc. vet. 2013; 03 (02) : 26 - 32
8. Giachelli C. The emerging role of phosphate in vascular
calcification. Kidney Int (advance online publication)
doi:10.1038/ki.2008.644.2009
9.IbelsL,AlfreyA,HufferW,CraswellP,AndersonJ,WeilR.
Arterial calcification and pathology in uremic patients
undergoingdialysis.AmJMed66:790-796.1979
10.EjerbladS.Theaorticcontentofglycosaminoglycansand
hydroxyproline in experimental uraemia. Scand J Urol
Nephrol13:171-176.1979
11. Abedin M, Tintut Y, Demer L. Vascular calcification:
mechanisms and clinical ramifications. Arterioscl Thromb
VascBiol24:1161-1170.2004
12.JonoS,MckeeM,MurryC,ShioiA,NishizawaY,MoriK,
MoriiH,GiachelliC.Phosphateregulationofvascularsmooth
musclecellcalcification.CircRes87:e10–e17.2000
13.TintutY,AlfonsoZ,SainiT,RadcliffK,WatsonK,BoströmK,
DemerL.MultilineagePotentialofCellsfromtheArteryWall.
Circulation108:2505-2510.2003
14.WangN,YangJ,YuX,HuJ,XingC,JuX,ShenX,QianJ,ZhaoX,
WangX.Radialarterycalcificationinend-stagerenaldisease
patients is associated with deposition of osteopontin and
diminished expression of alpha-smooth muscle actin.
Nephrology(Carlton)13:367-375.2008
15. Block G, Port F. Re-evaluation of risk associated with
hyperphosphatemia and hyperparathyroidism in dyalisis
patients.Recommendationsforachangeinmanagement.Am
JKidneyDis35:1226-1237.2000
16.GaneshS,StackA,LevinN,ShearonT,PortF.Associationof
Elevated Serum PO4, Ca X PO4 Product, and Parathyroid
Hormone with Cardiac Mortality Risk in Chronic
Hemodia lys i s Pat ients . J Am Soc Nephro l 12 :
2131–2138.2001
17. Rodriguez-Benot A, Martin-Malo A, Alvarez-Lara A,
Rodriguez M, Aljama P. Mild hyperphosphatemia and
mortalityinhemodialysispatients.AmJKidneyDis46(1):68-
77.2005
18. Sakata N, Noma A, Yamatomo Y, Okamoto K, Meng J,
TakebayashiS,NagaiR,HoriuchiS.Modificationofelastinby
pentosidineisassociatedwiththecalcificationofaorticmedia
in patients with end-stage renal disease. Nephrol Dial
Transplant18:1601–1609.2003
19.SpronkH,SouteB,SchurgersL,CleutjensJ,ThijssenH,De
Mey J, Vermeer C. Matrix Gla Protein Accumulates at the
BorderofRegionsofCalcificationandNormalTissueinthe
MediaoftheArterialVesselWall.BiochemandBioResCom
289:485–490.2001
20.WilcoxJ,ScottN.Potentialroleoftheadventitiainarteritis
andatherosclerosis.IntJofCard54:821-835.1996
21.LomashviliK,CobbsS,HennigarR,HardcastleK,O´NeillW.
Phosphate induced vascular calcification: role of
pyrophosphate and osteopontin. J Am Soc Nephrol
15:1392–1401.2004
22.ChenN,O'NeillK,DuanD,MoeS.Phosphorusanduremic
serumupregulateosteopontinexpressioninvascularsmooth
musclecells.KidneyInt62:1724–1731.2002
23.GiachelliC,SpeerM,LiX,RajacharR,YangH.Regulationof
vascular calcification: roles of phosphate and osteopontin.
CircRes96:717-722.2005
24.LomashviliK,GargP,O'NeillW.Chemicalandhormonal
determinants of vascular calcification in vitro. Kidney Int
69:1464-1470.2006
25.SonB,AkishitaM,IijimaK,EtoM,OuchiY.Mechanismof
Piinducedvascularcalcification-regulationofGrowthArrest
Specific Gene 6 (GASG6)-mediated survival pathway. J
AtherosclerThromb15:63-68.2008
26.SteitzS,SpeerM,CuringaG,YangH,HaynesP,AebersoldR,
Schinke T, Karsenty G, Giachelli C. Smooth muscle cell
phenotypic transition associated with calcification:
upregulationofCbfa1anddownregulationofsmoothmuscle
lineagemarkers.CircRes89:1147-1154.2001
32 ISSN 2225-5214Compend. cienc. vet. 2013; 03 (02) : 26 - 32