Enfermedades parasitarias (aves, primates y roedores)

Mv. Nidia E. Puray Chávez.

Histomona smeleagridis

Davainia proglottina

Raillietina spp.

Hymenolepis carioca.

Ascaridia galli

Capillaria annulata

Eimeria spp.

Choanotaenia

Amaebotaenia

Cheilospirura sp.

Dispharynx nasuta

Menacanthus stramineus

Menopon gallinae

Goniocotes gallinae

Lipeuros caponis

Cuclotogaster heterographus

Eechinophaga gallinacea

Dermanyssus gallinae

Ornithonyssus sylviarum

Argas persicus

Prosthogonimus macrorchis

Heterakis gallinarum

Histomonas meleagridis.

Eimeria spp.

Syngamus

trachea

Cnemidocoptes mutans

Leucocytozoon spp.

Haemoproteus spp.

Plasmodium spp.

Capillaria contorta

Trichomonas gallinae

Extremidades

Traquea

Ciego

Piel

Hígado

Molleja

Oviducto

Intestino delgado Esófago /buche

Sangre

PARASITOS EN AVES

POLLOS

Eimeria Medidas en um PPP localización

Eimeria acervulina 18x15 4 días Intestino delgado anterior

Eimeria brunetti 25x19 5 días Intestino delgado posterior, recto

Eimeria maxima 30x21 5 días Porción medio y posterior de ID

Eimeria mivati 16x13 4 días Intestino delgado anterior

Eimeria necatrix 20x17 6 – 7 días Porción media del intestino delgado ⃰

Eimeria tenella 22x19 6-7 días Ciego.

PAVO

Eimeria adenoides 26x17 4 días Ciego

Eimeria dispersa 26x21 5 días ID

Eimeria gallopavonis 27x17 4 días Porción posterior ID y recto

Eimeria meleagridis 19x16 4 días Porción media del ID.

PATOS

Eimeria aythyae 20x16 ------- ID

Eimeria burcephalae 20x16 -------- ID

Eimeria somateriae 32x14 ------- Riñon

Eimeria truncata 17x21 5 – 6 días Riñon

Tyzzeria perniciosa 12x10 6 días ID

GANSO

Eimeria auseris 22x17 7 días Porción posterior ID

Eimeria kotlani 31x24 ------ Ciego y recto

Eimeria truncata 17x21 5 – 6 días Riñon

Eimerias

Estadios infectantes

Ooquiste

Merozoitos

Estadios infectantes

•esiones

Macroscopica

•Necrosis coagulativo

, mucoide,

sanguinolenta,

enteritis.

•Abultamiento,

manchas blancas

(esquizonte),petequ

ias, exudado con

sangre mucoides

•Inicio;

hemorragia, luego

engrosamiento,

mucosa

blanquesina,

grumos, sangre

cuagulada.

Elevada patogenicidad disenterica, elevada mortalidad , elevada

morbilidad

Patogenicidad media,lesiones, baja

mortalidad, elevada morbilidad Baja patogenicidad, sin lesiones

•Infección ligera,

transversa, bandas

blanquesinos de

ooquistes.

•Infección grave: placas

que coalescen,

engrosamiento de la

pared.

•Paredes engrosadas,

exudado teñido con

sangre mucoide,

petequias.

•Sin lesiones,

exudado mucoide

•Sin lesiones,

exudado mucoide

•Caracteristicas •E. brunetti •E. necratix •E. tenella •E. acervulina •E. maxima •E. mitis •E. Praecox

Localización vertical de las coccidias

Coccidiosis

• Forma aguda.

• Sintomatologia clinica o subclinica “coccidiasis”

• Factores predisponentes

– Masificacion en granjas industriales

– Alteracion del sistema inmunocompetente (padercer o padecido

proceso infeccioso, consumo de alimento contaminado).

– Errores de manejo, mal diseño de instalaciones

Efectos de daño relacionada con la especie

Determinada por:

• Especie de coccidia

• La porción del intestino lesionada.

• Dosis de ooquistes ingeridos.

• La penetración del parasito en la pared intestinal.

• La capacidad reproductiva de la Eimeria sp.

• Condicción nutricional del ave.

• Interacción con otros agentes patógenos.

Signos clinicos

CICLO DE VIDA

Coccidiosis cecal, "coccidiosis sangrienta“.

• Leve merma del consumo de alimento.

• Heces tienden a volverse acuosas.

• Las aves se acurrucan y encogen la cabeza y las plumas se les erizan.

• Las hemorragias comienzan, normalmente, al quinto día de contraída la

infección.

• , PPP=115h

La coccidiosis cecal ataca principalmente a pollos jóvenes pero no suele hacerlo antes de los 10 ú 11 días de edad.

Eimeria tenella

Lesiones

• Los ciegos aparecen hinchados y llenos de una masa sanguinolenta

proveniente de la hemorragia de los vasos sanguíneos de la pared

interior de los mismos.

• Las aves sobrevivientes presentan núcleos blancos o rosados en los

ciegos, formados por células rojas, ooquistes, pus y materia fecal.

estado tóxico. (Los núcleos cecales, suelen romperse, alrededor del

octavo día de contraída la infección luego de lo cual el ave se

recupera.)

Músculos pectorales de un ave

infestada por E. tenella. Los

pectorales presentan aspecto

palido Como consecuencia de

las hemorragias que se dan en

los ciegos.

Ciego de un pollo infestado por Eimeria tenella.

Se presenta dilatado y con hemorragias.

Ciegos abiertos de un pollo

infestado por E. tenella.

Hemorragias internas, con

Formacion de coagulos,

que no estan adheridos a

la mucosa.

Eimeria necatrix

• Puede producir formas agudas o crónicas de enfermedad.

• Agudas, las aves mueren a veces a los 5 a 7 días de contraída la infección.

– sangre en las heces.

• Crónicas, proceso prolongado y las aves pierden mucho peso.

• PPP=138h

• Lesión típica, se observa en las necropsia de aves.

• Gran inflamación del intestino delgado.

• Hay zonas hemorrágicas en el lado externo del

intestino.

• El órgano contiene profusión de mucosidad

sanguinolenta y es común que los ciegos estén

llenos de sangre proveniente del intestino.

Distencion intestinal. Se muestra

exudado mucoso sanguinolento

Eimeria acervulina

• Causa gran morbilidad en los lotes de broilers y pollas de reposicion.

• Alta mortalidad cuando el manejo es deficiente.

• Experimentalmente:

– Reshidratacion 40% de su peso.

– Mortalidad 50 a 100%

• PPP= 97h

sintomas

• Las aves infectadas presentan síntomas crónicos:

– Pérdida de peso

– Palidez

– Decaimiento general.

– La mortalidad generalmente es baja, pero las aves

afectadas se deben descartar. En algunos casos, la E.

acervulina provoca una severa morbilidad y mortalidad.

Lesiones

Infecciones leves y moderadas.

• Se ven numerosas placas blanquecinas en la mitad superior del intestino delgado. (exterior e interior de dicho órgano).

• Las infecciones fuertes muestran gran inflamación o enteritis sin zonas blancas.

• Aunque la presencia de placas blancas en el intestino denuncia a la E. acervulina.

• La morbilidad o mortalidad se producen solamente cuando hay inflamación severa o enteritis.

Enteritis positiva a

E. acervulina, en

duodeno de pollo de

engorda de 4 semanas

Superficie de la mucosa

del intestino se presenta

rugosa y congestiva

FARMACOS UTILIZADOS PARA EL CONTROL DE COCCIDIAS.

Coccidiostáticos Principio

Activo

Pollos de

carne

Pollitas de

reposicion

Pavos Dosis

Robenidina + + 30 – 36 mg/kg

Lasalocid de

sodio

+ + + 75 – 125 mg/ kg

Halofunginona

Hidrobrom

+ + + 2 – 3 mg/kg

Salinomicina

de sodio

+ 50 – 70 mg/kg

Maduramicina

de amonio

+ + 5 mg/ kg

Diclozuril + + + 1mg/kg

Narasina-

Nicarbazina

+ 80 – 100 mg/kg

Monensina de

sodio

+ + 100 – 125 mg/kg

Decoquinato + 20 – 40 mg/kg

Narasina + 60 – 70 mg/kg

Coccidiostáticos químicos

• Amprolium, Nicarbazina y Diclozuril.

• *Actuan en las primeras fases del ciclo evolutivo el parasito con efectos

coccidicidas, muy pocas lesiones intestinales, pequena o nula liberacion de

ooquistes.

• Problemas en ponedoras o Reproductoras ¹y pollos ². Contaminación de

alimento:

– Robenidina: ¹ huevos con sabor anormal.

– Nicarbazina (Maxiban): ² efectos secuandarios, en periodos de fuerte calor.

¹ altera calidad del huevo, decolora la cáscara y altera la yema, mortalidad

embrionaria y reduce incubabilidad.

Coccidiostáticos Ionóforos

• Son antibióticos de fermentación. Poder anticoccidiósico y antibiótica sobre

Clostridium.

• Pueden ser monovalentes y divalentes.

• Monensima, Salinomicina, Narasina y Maduramicina son Monovalentes son capaces de

combinarse con cationes Na+ y K+ .

• Lasalocid es divalente se combina con Ca ++, Mg+, Na+ y K+ .

• Forman complejos envolviendo los cationes sobre el tropismo, los introducen en el

interior de los coccidios en la fase evolutiva del parasito. En el interior del a célula

provocan un desiquilibrio al presión osmótica. Los cationes arrastran el agua y causan

la destruccion del parásito.

• Toxicidad. Detiene el crecimiento de pollos. Ademas : Lasalocid efecto – para

repoductoras y caballos. Monensina tóxico caballos, ovino, perro, conejo y patos.

Narasina y Salinomicina1: pavos, etc.

Control de coccidiosis en pollos de carne

• Programas unicos.

– Utilizan coccidiostáticos quimicos o ionóforos en un programa

continuo. Cepas resitentes . 21 días.

• Programa “Shuttle”.

– Comprende dos coccidiostáticos una en la primera fase de crianza y

otra al final. Se combinan dos veces al año.

– En primera edad: quimicos de 0-14 días ó 0-21 días y los ionóforos

22 días hasta el periodo de retiro.

• Nicarbazina*

• Tambien ionóforos – químicos, dos químicos o dos ionóforos.

Control de coccidiosis por inmunidad

• Respuesta inmune para los esporzoitos y merozoitos. Las sexuadas,

macrogametocitos y microgametocitos.

• Una vacuna :

– Edad de las aves.

– Cantidad de antigeno.

– Forma de aplicacion.

– Los antigenos son proteinas de la menbrana de esporozoitos y

merozoitos

• Vacunas.- cepas atenuadas EE.UU.Otros no atenuadas.

– Agua, alimento.

– Incubadora el primer dia de vida, entre los 7 dias.

– Vacunas atenuadas o virulentos: Broiler 3 a 5 y reproductoras 8.

CLASE ESTRATEGIA COMENTARIOS

Pollos de engorde Quimioprofilaxis De un día de edad a 3 – 5 días

antes del sacrificio.

Pollos ponedoras/ reemplazos

de cría.

Inmunización por:

1.- Infección natural con

control parcial de

medicamentos.

2.- Infección con ooquistes

atenuados ( cepas precoces)

Retirar medicamentos antes de

la postura.

Pavos de engorda Quimioprofilaxia De 6 a 8 semanas de edad

Crías de pavo para reemplazo

Inmunización por infección

natal con control parcial con

medicamentos.

Otros Quimioterapia

Tratamiento con

medicamentos y cuando se

requiera.

Pocos medicamentos

aprobados,

Principales métodos de control de coccidiosis en diferentes clases de aves

Anticoccidiales en pollos y pavos

Droga Alimento (PPM)

Droga Alimento (PPM)

Amprolium 125 - 250 Nitrofurazone 55

Clopidol 125 – 250 Nitromide 250

Lasalocid 75 -125 Sulfadimethoxine 125

Monensin 60 – 100 Sulfaquinoxyline 150 – 250

Nicarbasina 100 – 200 Salinomycin 50 -75

Zoalene 125

Nematodos Ascaridia galli

• Nematodos grandes de color blanco .

• MACHO: 5-8 cm x 0.5-1.2 mm

• HEMBRA: 6-12 cm x 0.9-1.8 mm.

• Localización: ID.

Nematodos Heterakis gallinarum

• Nematodos blancos pequeños.

• MACHO: 7-13mm

• HEMBRA: 10-15 mm

• Localización: ciego, ~~ID, IG.

• Vector: Histomonas meleagridis

Ascaridia galli Heterakis gallinarum

Dimensiones: 75-80 x 45-60µm. Huevos son ovoides y de

superficie Lisa

65-80 x 35-46 um

Nematodos Ascaridia galli

Heterakis gallinarum

• Ciclo de vida: directo.

• PPP: 4 y 6 sem. En aves jovenes.@ adulto de 8 sem.

• Estadio infectante: L3.

• HP: lombriz de tierra.

• Longevidad: 1 año.

• Viabilidad: 1 año.

Nematodos Ascaridia galli

Heterakis gallinarum

• Signos clínicos

Anorexia, mala condición física, diarrea, anemia, caída de la pluma, baja producción de huevos, síntomas nerviosos.

• Diagnostico

SC ,nematodos en heces, detención de huevos,necropsia.

Tratamiento

Piperazina 250 mg/kg.

Mebendazol 40- 50 mg/kg

Flubendazol 5mg/kg

Levamisol 20-30 mg/kg

Febendazol 8 mg/kg

Localización

Histomoniasis

Histomona meleagridis

• Histomonosis, cabeza negra o enterohepatitis.

• Hospederos: enfermedad en pavis pollos, pavos jovenes.

• Localizacion: mucosa cecal y parenquima hepatico.

• Hospederos de transporte: Los adultos y huevos del vermes

Hetererakis gallinarum.

Ocho a más días los pollos estan tristes, plumas erizadas y las heces color

amarillo azufrado.

1 a dos semanas los pollos mueren si no son tratadas.

En los pollos de edad se manifiesta como un síndrome crónico, seguido de

la recuperación y posterior inmunidad.

Lesiones

Diagnóstico

• Se basa en la historia, signos clínicos y hallazgos de necropsia.

• Se puede realizar el examen histológico del hígado o ciego.

Tratamiento

• Dimetridazol, nitrithiazol y deben consumirlo durante 12 días.

Control

• Los pavos deberían ser críados en lugares donde no hayan estado pollos

domésticos, durante al menos dos años, o críados en camas nuevas o

rejillas elevadas del suelo.

Mallophagos de aves

• Menopon gallinae • Menacanthus stramineus • Lipeurus caponis • Columbicola columbae • Goniodes gigas • Chelopistes meleagrides

Piojo mordedores de las aves

• Generos mas importante

– Lipeurus Piojo de las alas

– Cuclotogaster Piojo de la cabeza

– Menacanthus Piojo del cuerpo

• Generos de menor importancia – Goniocotes Piojo velludo

– Menopon Piojo en vara

– Columbicola Piojo de pichones y palomas

– Holomenopon Patos Piojo en astil

Animales

Domésticos

Animales

Domésticos

Ciclo de vida

• Las hembras adultas depositan 200 a 300 huevos operculados.

• Los huevos son blanquecinos ,estan pegados al pelo y pueden observarse a simple vista.

• Metamorfosis incompleta u hemimetabolica

• El desarrollo completo de huevo al adulto necesita de 2 a 3 meses.

HUEVO o LIENDRE NINFA ADULTO

Patogenia y epidemiologia

• Capacidad para digerir queratina. Mordiendo las plumas, digieren con

ayuda de secreciones y bacterias. Pueden digerir la vaina de la pluma,

como la pluma que esta debajo de la piel.

• Los efectos de la pediculosis aviar solo varia en la intensidad de las

lesiones.

• Las aves son incapaces de descansar, no se alimentan y se lesionan ellas

mismas.

• Aves jovenes: perdida de peso, debilidad y muerte.

• Adultos: perdida de peso y baja en la produccion.

Lipeurus

Lipeurus caponis

•Se localizan en la cara inferior de plumas largas. En la base de las alas y el cañon de las plumas.

Menacanthus stramineus

“Piojo del cuerpo” o “Piojo amarillo del

cuerpo”

Localizacion: pecho, los muslos y alrededor del ano.

Puede producir anemia.

Longitud: 2.8 – 3.3 mm

Menopon gallinae

“Piojo dardo”

•De color amarillo, desplazamiento rápido.

•En jovenes es limitante, hasta el desarrollo completo de las plumas.

•Se alimentan exclusivamente de plumas.

Longitud: 1.7 – 2.0 mm

C. columbae

Cuerpo y cabeza alargados. La cabeza presenta antenas visibles.

Localización.- región anterior del cuerpo produciendo prurito

Columbicola columbae

Goniodes gigas

“Piojo grueso”

•Poseen cabeza

ancha con un proceso

posterior y antenas

visibles.

Longitud: 3.2 – 5 mm

Argas persicus

Tiene cuerpo ovoide, aplanado

dorsoventralmente y de color amarillo a

marrón rojizo.

Argas persicus

“Garrapata de las gallinas”

• La superficie es mamelonada con aspecto

de cuero.

• Ciclo de vida 1 larvaria

2 ninfales y adulto.

• Viven en las grietas

se aproximan por las

noches y se alimentan

una vez al mes.

• Hospederos: las aves domésticas y silvestres.

• Ácaro voluminoso, de 1,5 mmde longitud.

• Color blanco grisaceo y muestra un caracteristico color rojizo después

de la ingestión de sangre.

• Se alimentan de noche, solo los adultos y las ninfas.

• Se esconden y depositan los huevos en los agujeros y grietas.

• Pueden vivir varios meses sin alimentarse

Dermannyssus gallinae “Acaro rojo de la gallina”

Dermannyssus gallinae

Placa anal: Forma “D”. El ano se halla en 2da mitad placa.

Escudo dorsal: No alcanza el extremo posterior.

Dermanyssus gallinae

Dermanyssus gallinae

Pseudolynchia canariensis

Long.: 6 mm

COLOR MARRON OSCURO

VENACION REDUCIDA

GARRA FUERTE Y ESPOLONADA

Pulgas de las aves “Echidnophaga”

Echignophaga gallinacea ( se introduce en la piel)

• Luego de la fertilización la hembra se introduce en la piel.

• Localización: Crestas y barbilla.

• Forman nódulos donde depositan los huevos, la eclosión se lleva a

cabó en el nódulo y luego cae al suelo. La piel del nódulo puede

ulcerarse.

Echidnophaga gallinacea

Echidnophaga gallinacea

Tratamiento y control

• Se recomienda el uso de cipermetrinas y carbamatos.

• Se recomienda el uso alternado de los productos con un intervalo de

14 días.

• Se trata con órganos fosforados, carbamatos y piretroides.

• Se debe rociar la jaula con insecticidas y hacer incinerar los detritus.

• Se debe limpiar el medio ambiente con piretroides, etc.

Psoroptes cuniculi

Psoroptes cuniculi

Psoroptes cuniculi

Trixacarus caviae

Gliricolla porcelli, Gyropus ovalis, Trimenopon hispidum

Paraspidodera uncinata(cuy).

Passalurus ambiguus

Cheyletiella parasitivorax

Listrophorus gibbus

Myobia, Radfordia

Myocoptes musculinus

Notoedres cati variete cuniculi, Notoedres muris