TOMA DE MUESTRAS EN AVES

DESTINO DE LA MUESTRA

INVESTIGACIÓN

SEXADO

BACTERIOLOGÍA

VIROLOGÍA

PARASITOLOGÍA

CITOLOGÍA

TOXICOLOGÍA

HISTOPATOLOGÍA

TIPOS DE MUESTRAS

SANGRE

ISOPADOS

SEMEN

MATERIA FECAL

ECTOPARÁSITOS

ENDOPARÁSITOS

RASPAJES

PUNCIONES

PLUMAS

BIOPSIAS

SANGRE

• Factores que pueden influir en el resultado

– Formas y lugar de donde se obtiene la muestra desangre.

– Manipulación de la misma.

– Técnicas utilizadas para el procesamiento.

– Variaciones en el ambiente.

– Estado fisiológico del animal, edad, sexo, estado nutricional y el uso de anestésicos.

MATERIALES NECESARIOS

GUANTES DESCARTABLES : LATEX O VINILO

BARBIJO

AGUJA HIPODÉRMICA O UNA AGUJA CON ALETAS: 22G, 23G, 25G ó 27G

JERINGAS: 12 mL, 10 mL, 6 mL, 3 mL ó 1mL

GASAS

ALGODON

ALCOHOL (etanol 70%/isopropilico)/ AGUA OXIGENADA

TUBOS DE EXTRACCIÓN

CAPILARES

CATERERES ENDOVENOSOS Y/O BUTTERFLY

PINSAS : de diferentes tipos según necesidad

RECIPIENTES ESTERILES Y DE BOCA ANCHA

BISTURIES

ELEMENTOS DE CONTENCIÓN : cajas de contención, caperuzas, pihuelas, guantes resistentes, etc

AGUJAS HIPODERMICAS/BUTTERFLY

JERINGAS

TUBOS DE EXTRACCIÓN

EXTRACCIÓN DE SANGRE

Vena Braquial/Ulnar del ala

Vena Yugular DERECHA

Vena Metatarsal media de la pata

Hidratación subcutanea: Pliegue de

piel inguinal

ES SEGURO EXTRAER ENTRE 0,3 CC Y 0,6 CC DE SANGRE POR CADA 100 grs DE MASA CORPORAL

Para HEMATOLOGÍA se recomienda el uso de agujas de 22G a 25G y NO 27G o menor

TÉCNICA

TÉCNICA

¿QUÉ ESTÁ BIEN Y QUÉ ESTÁ MAL?

¿Qué está bien y qué está mal?

VENA METATARSIANA

PASO SIGUIENTE…

Se pasará inmediatamente la sangre de la jeringa a un tubo de gel separador de suero (tapón rojo) o a un tubo de gel separador de plasma (tapón verde). Algunos laboratorios prefieren el plasma y otros el suero dependiendo de las pruebas que se deban realizar.

Los tubos de plasma se deben refrigerar o sumergir inmediatamente en un baño de agua fría hasta su centrifugado en una centrifugadora portátil.

Las muestras de suero deben dejarse coagular a temperatura ambiente (37°C) y después mantenerse refrigeradas o sumergidas en un baño de agua fría hasta su centrifugación.

Una vez centrifugados, tanto el suero como el plasma se deben transferirá un criovialutilizando una pipeta de transferencia estéril o, si no se dispone de ésta, se deben verter cuidadosamente en el criovial, que se congelará.

HISOPADOS

MATERIAL NECESARIO

• Guantes de látex o de vinilo +/- máscara N95 o FFP2, protección para los ojos, etc.

• Crioviales de 2-2,5 ml con tapa de rosca (que se puedan colocar en nitrógeno líquido) que contengan un medio de transporte

• Hisopos: Para muestras virales: punta de rayón o dacrón

Para muestras bacteriana: punta de algodón

• Tijeras

• Refrigerador o bloque de hielo o contenedor con nitrogeno liquido para almacenar el medio de transporte y las muestras

• Formularios

TOMA DE MUESTRA

PROCEDIMIENTO1. Para el manejo de aves y la apertura de viales de muestra, se llevará un equipo

personal de protección adecuado

2. Retirar el hisopo desde el mango (elíjase un tamaño de hisopo adecuado para el ave) y póngase cuidado en no tocar la punta del hisopo.

4. Desprender los fragmentos fecales de gran tamaño (>0,5 cm)

5. Abrir el criovial y colocar la punta del hisopo en el medio de transporte aproximadamente a una altura de ¾ partes hacia el fondo del criovial.

6. Etiquetar el tubo con la información apropiada (identificación de la muestra y clase

de la misma (cloacal o traqueal) asegurándose de que la identificación del tubo

pueda remitir a la hoja de datos donde exista más información sobre la muestra

9. Registrar el número del tubo de muestra en la hoja de datos junto con el número

de identificación, la fecha, la especie, la clase de muestra (cloacal o traqueal), la

edad, el sexo, la ubicación (preferiblemente mediante coordenadas GPS), número

de banda, observaciones u otros datos

TÉCNICA

HISOPADO CLOACAL

TOMA DE MUESTRA

HISOPADOS TRAQUEALES

SEMEN

Extracción por fricción o presión.

Siempre es necesario una estimulación previa o estar en período reproductivo

Objetivos:

Inseminación artificial

Programas de conservación

Estudio de enfermedades

Variabilidad genética

Estudio de malformaciones

PARÁSITOS

ECTOPARÁSITOS: Se los toma del cuerpo del ave con pinzas o utilizando eldedo pulgar he índice y se los introduce en un frasco estéril con alcohol al 70%y se lo envía a temperatura ambiente, debidamente rotulado e identificado.

En caso de ácaros se hacen raspajes con bisturí hasta el sangrado y serecolecta la muestra en un portaobjetos y se la observa al microscopio óptico

ENDOPARÁSITOS: Se puede tomar muestra de materia fecal fresca reciéndefecada o extraer directamente de la cloaca del ave. Se introduce la muestraen una bolsa de plástico teniendo el cuidado de retirar el aire. Se lo envía arefrigerada al laboratorio para diagnóstico por coprocultivo u observación dehuevos por métodos de flotación o sedimentación.

ROTULACIÓN DE LAS MUESTRAS Y DE SER POSIBLE ADJUNTAR ANAMNESISDEL O LOS ANIMALES MUESTREADOS.

ENVÍO Y REMISIÓN DE LAS MUESTRAS

MICROBIOLOGÍA: Aerobios/ Anaerobios

Muestra representativa.

Envío refrigerada a 4°C.

Medio de cultivo o transporte.

Rotular.

VIROLOGÍA: Medio de transporte «stuart».

Muestra representativa.

Envío refrigerada a 4°C.

Rotular.

«Las muestras deben llegar al laboratorio dentro de las 24hs de recolectadas.»