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Farmacognosia 2017 – FCNyCS – UNPSJB – Dra. María Luján Flores - Hidratos de Carbono - 1
www.fcn.unp.edu.ar/sitio/farmacognosia/
UNIDAD 5
COMPLEMENTO TEORICO DEL TEMA HIDRATOS DE CARBONO - 2017
Definición: son productos naturales formados por carbono, hidrógeno y oxígeno,
aunque a veces pueden encontrarse otros átomos como nitrógeno, azufre y fósforo.
Químicamente son compuestos polihidroxilados que en general contienen también
grupos aldehído o cetona. Pueden encontrarse como tal o constituyendo derivados
generados por: oxidación ácidos urónicos, aldónicos, aldáricos
reducción polioles
pérdida de grupos OH desoxiazúcares
aminación aminoazúcares
sustitución derivados metilados, sulfatados
polimerización oligo y polisacáridos
Clasificación según el comportamiento en medio ácido y calor
A) No hidrolizables o monosacáridos. Son aquellos hidratos de carbono constituidos por
una sola unidad.
A.1) Aldosas: contienen una función aldehído.
A.2) Cetosas: contienen una función cetona.
B) Hidrolizables. Son aquellos que por hidrólisis ácida dan como producto, 2 o más
unidades de monosacáridos.
B.1) Oligosacáridos: son aquellos formados por 2 a 10 monosácaridos. De acuerdo al
número de unidades constituyentes se clasifican en disacáridos, trisacáridos,
tetrasacáridos, pentasacáridos, así hasta llegar a 10 unidades.
B.2) Polisacáridos: son compuestos de alto peso molecular, que a su vez pueden
clasificarse en:
B.2.1) Homopolisacáridos: formados por un único tipo de monosacárido, por ejemplo el
almidón, formado por unidades de D-glucosa.
B.2.2) Heteropolisacáridos: están formados por distintos monosacáridos, por ejemplo la
goma arábiga, que incluye en su estructura L-ramnosa, D-galactosa, L-arabinosa y ácido
aldobiónico (α-D-glucuronosil-(1→6)-D-galactosa).
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ALGUNOS HIDRATOS DE CARBONO DE INTERES FARMACEUTICO
1- MONOSACARIDOS
Glucosa: es la D-glucosa anhidra que desecada a 105 °C hasta peso constante, contiene
no menos de 99,5 % de C6H12O6 o la D-glucosa con una molécula de agua que desecada
en iguales condiciones contiene no menos de 90,5 % de C6H12O6.
(VER definición, características e identificación en FA VII Ed.).
Sinonimias: azúcar de uva, dextrosa, azúcar de almidón.
Obtención: por hidrólisis del almidón o de la sacarosa. Industrialmente, se prepara una
suspensión acuosa de almidón de maíz al 10 % (leche de almidón) y se hidroliza con
ácido clorhídrico al 10 % en autoclave a 3,2 atm, durante 35 min, a 120 °C. Luego se
precipitan los cloruros con óxido de calcio y el líquido amarillento sobrenadante se pasa
a través de una columna con carbón activado para su decoloración. Se concentra a
presión reducida hasta que aparezcan cristales de glucosa los que se separan por
centrifugación. La glc se usa como tal, o bien se reduce para obtener sorbitol, o se oxida
para obtener gluconatos, o se epimeriza para obtener fructosa y manitol.
Usos: alimento que puede administrarse por vía oral, rectal o parenteral. En inyectables
como solución isotónica (5 %) o hipertónica (15, 20, 30 %). Sola o con cloruro de sodio
se usa para reponer líquido y sustancias nutricias al organismo. También se usa como
edulcorante, como sustituto de la sacarosa en jarabes y como excipiente (correctivo del
sabor).
La glc líquida se obtiene por hidrólisis incompleta del almidón y está formada por glc +
maltosa + dextrinas + agua. Se presenta como un líquido siruposo incoloro y se usa para
jarabes.
Fructosa: es una cetohexosa de amplia distribución en los frutos y en la miel. Se puede
obtener industrialmente por hidrólisis de la inulina (polisacárido de fructosa presente en
achicoria por ejemplo); también por separación a partir del azúcar invertido (mezcla de
sacarosa, fructosa y glucosa).
(VER definición, características e identificación en FA VII Ed.).
Se la denomina también levulosa, azúcar de fruta.
Usos: se puede utilizar para alimentación parenteral. También útil en regímenes de
determinados diabéticos dado que se reabsorbe a nivel intestinal lentamente y no
desencadena la secreción de insulina; su metabolismo es hepático. Se usa además como
edulcorante con un poder 1,7 veces respecto de la sacarosa.
DERIVADOS DE MONOSACARIDOS
Gluconatos: se obtienen por oxidación a partir de la glucosa.
- El gluconato de calcio es la sal cálcica del ácido glucónico que se obtiene por
oxidación de la glc con agua de bromo en presencia de carbonato de calcio o por
microorganismos (Aspergillus niger). Se usa para reponer calcio y aumentar la calcemia
en problemas de crecimiento y déficit de calcio. Por vía IM es menos irritante que el
cloruro de calcio y muy soluble en agua.
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- El gluconato de hierro se prepara por oxidación con agua de bromo en presencia de
una sal de hierro. Se usa para reponer hierro en anemia ferropénica por vía oral. Causa
menos inconvenientes digestivos que otras sales.
Polioles: VER en bibliografía D-sorbitol, D-manitol, D-xilitol, ciclitoles.
2- OLIGOSACARIDOS
VER en bibliografía caña de azúcar, remolacha azucarera, maltosa y ciclodextrinas.
3- POLISACARIDOS
Algunas propiedades características: son macromoléculas naturales (biopolímeros), de
alto peso molecular, que resultan de la condensación de distintos números de unidades
(>10) de azúcares. Cumplen funciones muy importantes tales como otorgan rigidez a las
paredes celulares de los vegetales superiores (ej. celulosa), dan flexibilidad a los talos
de las algas (ej. carragenanos), protegen los tejidos contra la desecación por su poder
hidrófilo (ej. mucílagos), constituyen reservas energéticas (ej. almidón), son sustancias
de defensa (ej. gomas).
A continuación se describen algunos polisacáridos que complementan lo entregado en el
material general de hidratos de carbono:
INULINA: polisacárido de reserva constituido de alrededor de 30 unidades de D-fruf--
(21), y a su vez, cada molécula de inulina puede terminar en un resto de glcp. Muy sensible a la hidrólisis por la constitución de cetosas. Se hidroliza enzimáticamente por
acción de la inulasa, la que no está presente en los animales superiores por ello no
pueden digerir ni asimilar el polisacárido, entonces carece de valor nutritivo. Está
presente en las Asteraceae (ej. en los tubérculos de la dalia, en la achicoria, en
alcachofa, en la raíz de diente de león). En agua caliente a 70 ºC se disuelve pero no
gelatiniza al enfriarse.
Usos: se excreta como tal por vía renal, se filtra a nivel glomerular, inhibe la
reabsorción activa de sodio en el túbulo proximal, entonces aumenta la excresión de
sodio y agua, por ello efecto diurético. Como no se absorbe y se excreta como tal se
utiliza como ensayo de la función renal.
(VER en bibliografía la monografía del diente de león).
GOMAS: son productos originados en el vegetal, a nivel del cambium, en respuesta a
un traumatismo (tienden a taponar la herida originada), lo hacen con ruptura de la pared
celular. Pueden almacenarse hacia la zona medular y por debajo (gomosis centrípeta) o
hacia los tejidos externos (gomosis centrífuga).
GOMA GUAR: polisacárido obtenido del endosperma pulverizado de las semillas de
Cyamopsis tetragonolobus (Fabaceae). Es una planta herbácea anual de India, Pakistán,
Egipto, Estados Unidos, América Central.
Incorrectamente llamada "goma" ya que no se trata de un producto patológico, ni
responde a algunas de las características de las gomas. Se encuentra definida en la Real
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Farmacopea Española como "el producto obtenido a partir de las semillas de Cyamopsis
tetragonolobus (L.) Taub. mediante molienda de los endospermos, seguida de hidrólisis
parcial. En el suplemento de la misma Farmacopea se incluye también el polvo de Guar
como "el obtenido por molienda de los endospermos de las semillas de Cyamopsis
tetragonolobus (L.) Taub. Consiste principalmente en galactomanano de guar".
C.Q.: la goma está constituida de un galactomanano formado por un polímero lineal de
unidades de D-manopiranosa con uniones -(14) con restos de D-galactopiranosa
unidos a unidades alternas de manosa por uniones -(16), constituyendo en su conjunto un heteropolisacárido ramificado con proporciones moleculares de D-gal y
D-man entre 1:1,4 y 1:2.
Se hincha en agua fría, la viscosidad es más importante entre 20 y 40 ºC. La viscosidad
es 2 a 3 veces mayor que las demás gomas en concentraciones de 1 %.
Usos: laxante, espesante, aglutinante en comprimidos. Se usa también en alimentos por
sus propiedades espesantes y en la industria del papel y textil.
Últimas investigaciones han enfocado el interés hacia un posible efecto hipoglucemiante
e hipocolesterolemiante oral, ya que aparentemente disminuiría el colesterol por uniones
a las sales biliares del intestino. Como ocurre con otras fibras solubles, sus efectos son
principalmente metabólicos e influyen poco sobre el volumen y tiempo de tránsito de
las heces. El efecto se debe a la viscosidad del mucílago que disminuye la velocidad de
absorción de los hidratos de carbono. Diversos ensayos clínicos demuestran que si se
añade goma guar en la dieta, disminuye la hiperglucemia y la insulinemia postprandial.
Del mismo modo disminuyen la colesterolemia y principalmente las LDL. En el
Catálogo de Especialidades Farmacéuticas del Consejo General de Colegios de España,
la goma Guar figura entre los antidiabéticos orales que actúan como inhibidores de la
absorción oral de glúcidos. En España está autorizado en el tratamiento coadyuvante de
la diabetes mellitus (asociado a tratamientos dietéticos y/o farmacológicos).
Precauciones: la administración de goma guar puede originar flatulencia y nauseas.
Nunca debe ingerirse en seco ya que puede producir en ese caso obstrucción esofágica.
GOMA KONJAC: es un glucomanano extraído de la raíz y tubérculo de
Amorphophallus konjac K. Koch. (Araceae), originaria de Asia y cultivada en Japón.
C.Q.: está constituida por D-glucosa y D-manosa en proporción 1:1,6, formando cadenas
con enlaces (14). A estas cadenas se unen unidades de D-manosa o de D-glucosa
principalmente sobre los hidroxilos C-3.
Usos: comercialmente se conoce como glucomanano de konjac o harina de konjac, que
forma en contacto con el agua un gel viscoso, no asimilable, que puede aumentar hasta
100 veces su volumen. Se recomienda su empleo como coadyuvante en regímenes
hipocalóricos, ya que une al efecto saciante, el efecto laxante. Al igual que el guar
reduce significativamente la colesterolemia, disminuyendo la absorción de lípidos e
hidratos de carbono. Un ensayo clínico muy reciente demuestra que la adición de
glucomanano de konjac al tratamiento convencional a pacientes con diabetes tipo 2,
hiperlipidémicos e hipertensos, puede mejorar el control glucémico, el perfil lipídico
sanguíneo y la presión sanguínea sistólica.
Precaución: ingerir siempre con abundante cantidad de agua.
GOMA KARAYA: goma obtenida por incisiones sobre el tronco de Sterculia urens
(Sterculiaceae), nombres vulgares: tragacanto indio, tragacanto de Basora. Son árboles
tropicales de India, Pakistán, Africa, que se caracterizan por tener una corteza muy
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blanda y blanca. La goma exuda en 24 h y cada árbol da entre 1 y 4 kg, pudiendo
sacarse hasta 5 veces en la vida del árbol.
C.Q.: la goma se constituye de un polisacárido ácido fuertemente acetilado, que por
hidrólisis origina L-ram, D-galA, D-gal, ácidos aldobiurónicos y en determinadas
condiciones controladas origina trisacáridos ácidos.
Es el menos soluble de los exudados vegetales, posee alta adhesividad. Con agua fría se
hincha rápidamente dando un gel muy viscoso. Al calentarse, disminuye la viscosidad
originando una dispersión coloidal translúcida.
Usos: no presenta toxicidad, por lo que es muy usada en terapéutica. Absorbe gran
volumen de agua, es regulador del tránsito intestinal y laxante mecánico. Se usa también
para fijar prótesis dentales por su alta adhesividad, también como fijador en
cosmetología. Se usa poco en alimentación.
GOMA ARABIGA y GOMA TRAGACANTO: VER carpeta de TP y bibliografía.
MUCÍLAGOS: presentes naturalmente en las células mucilaginosas.
Los mucílagos de plantas superiores se clasifican clásicamente en dos grandes grupos:
mucílagos neutros y mucílagos ácidos.
- Los mucílagos neutros reciben esta denominación debido a que su estructura química
corresponde a polímeros heterogéneos de la manosa que incorporan en su estructura un
porcentaje variable de otras osas. Los más frecuentes son: a) glucomananos, polímeros
de D-manosa con uniones -(14) con un 20 a 50 % de unidades de D-glucosa,
presentes en órganos subterráneos de algunas Monocotiledóneas (la goma konjac en
realidad se trataría de un mucílago que por las características del gel se lo conoce como
“goma”); b) galactomananos, polímeros de D-manosa que incluyen, en un porcentaje
que varía entre el 30 y el 100 % dependiendo de las especies vegetales, unidades de
galactosa; se localizan en las semillas (endospermo) de distintas plantas pertenecientes a
diversas familias botánicas (Fabaceae, Caesalpinaceae, Palmae, Annonaceae,
Convolvulaceae); y c) galactoglucomananas: cadenas de glucosa y manosa en las
cuales algunas manosas están sustituidas por D-galactosa, que forman parte de
hemicelulosas acumuladas como material de reserva en algunas semillas como Cercis
siliquastrum L. (Caesalpinaceae).
- Los mucílagos ácidos reciben esta denominación porque en su estructura, aunque en
muchas ocasiones no se conoce totalmente, figuran derivados ácidos de hidratos de
carbono. Se consideran dentro de ellos varios grupos de mucílagos dependiendo de la
familia botánica a la que pertenecen las plantas que los producen: a) mucílagos de
plantas pertenecientes a la familia Plantaginaceae: Plantago afra = P. psyllium,
Plantago indica = P. arenaria, P. ovata, P. major y P. lanceolata; b) mucílagos de
plantas pertenecientes la familia Malvaceae: Malva sylvestris y Althaea officinalis; y c)
mucílagos de plantas pertenecientes a la familia Linaceae: Linum usitatissimum.
Muchas de estas plantas se utilizan como laxantes mecánicos ya que los mucílagos que
contienen al absorber una gran cantidad de agua a nivel del colon aumentan el volumen,
el grado de humedad y la acidez del bolo fecal, incrementando de esta manera el
peristaltismo intestinal y facilitando la evacuación del mismo.
PLANTAGOS: se conocen unas 250 especies del género Plantago.
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- Plantago ovata Forsk., conocida con el nombre vulgar de ispágula, es la especie de
este género cuyas semillas poseen mayor contenido en mucílagos. Según la 3ª edición
de la Farmacopea Europea, se emplean la semilla y el tegumento de la semilla.
La planta es espontánea en el sureste de Asia, norte de África y sureste español. Se
cultiva en la India y Pakistán. Presenta un escapo floral terminado en espigas con flores
blancas; sus semillas de aproximadamente 2-3 mm tienen forma de abarquillada, color
grisáceo claro y en la cara convexa llevan un surco pardo.
C.Q.: las semillas presentan hasta un 30 % de mucílago constituido principalmente por
D-xilosa y también L-arabinosa y -D-galacturonil-(12)-L-ramnosa. Contienen
además proteínas, lípidos, ácidos grasos, esteroles (campesterol, -sitosterol,
estigmasterol), triterpenos (- y -amirina), iridoides (aucubina), taninos y trazas de
alcaloides.
Usos: en contacto con el agua, el mucílago forma un gel viscoso, muy voluminoso por
lo que incrementa el volumen de las heces (además éstas permanecen blandas),
promueve el peristaltismo y le confiere el efecto laxante mecánico; estos laxantes están
indicados en caso de estreñimiento crónico así como cuando se debe evitar un esfuerzo
excesivo en la defecación. Su efecto se manifiesta después de las 24 horas de su
administración. En la bibliografía se pueden encontrar numerosos ensayos clínicos que
demuestran la eficacia de la ispágula en el tratamiento del estreñimiento crónico con o
sin colon irritable. Es uno de los laxantes más utilizados en la actualidad.
Los iridoides (entre ellos aucubina) poseen también un efecto laxante suave
comprobado mediante su administración a animales de experimentación (ratón).
Como ocurre con la mayoría de los mucílagos, la ispágula presenta también actividad
hipoglucemiante comprobada en diversos ensayos clínicos así como efectos
hipolipidemiantes e hipocolesterolemiantes, interfiriendo en el transporte y absorción
intestinal del colesterol y otros parámetros. Posee también propiedades
antiinflamatorias, por vía tópica se ha utilizado en forma de cataplasmas en
forunculosis. Se emplea en úlceras gástricas y en algunos casos de colitis.
En España están autorizadas las siguientes indicaciones: estreñimiento (ancianos,
embarazo, postparto, hemorroides) y en profilaxis del estreñimiento, para evitar
esfuerzos durante la defecación en colon irritable, infarto de miocardio reciente, etc.
Precauciones: la administración de ispágula puede originar flatulencia. Así mismo
puede causar obstrucción intestinal u obstrucción esofágica, si se ingiere en seco, por lo
que siempre debe tomarse con gran cantidad de líquido. Debido a que reduce el tiempo
de tránsito gastrointestinal puede afectar a la absorción de otras drogas.
En la bibliografía se relacionan diversos casos de reacciones de hipersensibilidad
asociados a la ingestión o inhalación de ispágula (o de zaragatona, ver a continuación),
incluyendo rinitis, broncoespasmo agudo y urticaria con anafilaxis, tanto en
consumidores como en manipuladores.
- Plantago afra L. (= Plantago psyllium L.) se conoce vulgarmente como zaragatona.
Esta especie figura en la Real Farmacopea Española que define la semilla de zaragatona
como "las semillas maduras, enteras y desecadas de Plantago afra L. (= Plantago
psyllium L.) o de Plantago indica L. (= Plantago arenaria Waldstein y Kitaibel)".
Ambas especies son espontáneas en la región mediterránea (España, Francia, Italia,
Marruecos). P. afra, es una planta herbácea con espigas ovoideas de flores blancas y
cuyas semillas, que constituyen la droga, miden unos 2-3 mm de largo por 0,8-1,0 mm
de ancho, poseen forma elíptica (barquita), su color va de pardo claro a pardo muy
oscuro y su superficie es brillante. En la cara convexa presentan un surco de color más
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claro. Las semillas de P. indica son de la misma longitud, pero algo más anchas y de
color un poco más oscuro y menos brillante.
C.Q.: las semillas contienen un mucílago que por hidrólisis se desdobla en D-xilosa, L-
arabinosa y ácido -D-galacturónico unido a su vez a L-xilosa y D-galactosa. Presentan
además aceite, proteínas, esteroles, iridoides y traza de alcaloides.
Usos: sus efectos son similares a los de la ispágula y se deben fundamentalmente a la
presencia de mucílagos. La zaragatona se utiliza como laxante mecánico (laxantes con
efecto fibra) debido a su contenido en mucílago, si bien el aceite, que también contiene,
favorece dicho efecto. Posee igualmente propiedades emolientes. Tiene propiedades
antiinflamatorias y se emplea en casos de colitis ya que protege la mucosa intestinal.
La administración de 5 g/3 veces/día de zaragatona, ha demostrado ser de utilidad como
coadyuvante en la terapéutica en pacientes con diabetes tipo II, ya que reduce los
niveles plasmáticos de lípidos y glucosa.
- Otras especies del género Plantago como P. major L. o P. lanceolata L., conocidas
como llantenes, se utilizan también, tanto sus hojas como sus semillas. Las hojas
contienen principalmente iridoides, flavonoides y ácidos fenólicos; y las semillas son
ricas en mucílagos y lípidos. Estas especies, carentes de toxicidad, se emplean
popularmente como antiinflamatorias y emolientes, sobre todo por vía tópica, y también
en problemas de vías respiratorias.
MALVA: Malva sylvestris (Malvaceae) es una planta herbácea bianual o perenne de las
regiones húmedas de Europa. Crece fácilmente al costado de los caminos en distintos
países del mundo. Posee raíz fusiforme y tallo erguido muy velloso del que parten hojas
palmatilobuladas largamente pecioladas alternas, flores con grandes pétalos escotados
rosa-violáceos veteados de rojo.
P.U.: flor.
C.Q.: 15-20 % de mucílago. Entre sus componentes químicos se han identificado
distintos polisacáridos ácidos de alto peso molecular constituidos por D-ramnosa, D-
galactosa, D-manosa y los ácidos D-glucurónico y D-galacturónico, flavonoides y
antocianinas (malvidina).
Usos: propiedades emolientes y béquica. Se usa popularmente la infusión la que posee
acción suavizante.
Existen pocos estudios acerca de las propiedades farmacológicas de la flor de Malva,
tradicionalmente se ha utilizado por vía oral como suavizante de mucosas en afecciones
de vías respiratorias superiores, en el tratamiento de irritaciones del tracto
gastrointestinal, como laxante suave y por vía tópica en caso de irritación ocular de
etiología diversa y en irritaciones de la piel.
MALVAVISCO: Althaea officinalis L. (Malvaceae) es una planta herbácea de gran
tamaño de las regiones húmedas de Europa. Posee hojas ovales, dentadas, lobuladas,
verde-grisáceas; flores con una corola de 5 pétalos blanco rosáceos. Posee un rizoma
leñoso del que parten numerosas raíces de hasta 30 cm de longitud. Esta raíces que
figuran en la Real Farmacopea Española, se comercializan desecadas y generalmente
descortezadas en forma de fragmentos de unos 10 a 15 cm de longitud y color
blanco/amarillento.
P.U.: flor, hojas y raíces decorticadas.
C.Q.: azúcares neutros, oligosacáridos, almidón y mucílago constituido principalmente
de ácido galacturónico. Los mucílagos de la raíz que pueden alcanzar una concentración
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elevada (20-30 %) dependiendo del período de colección, poseen una estructura muy
ramificada constituida por D-galactosa, L-ramnosa y ácidos D-glucurónico y D-
galacturónico. La raíz posee además un alto contenido en fécula, pectina y otros
azúcares. Igualmente, todos los órganos de la planta poseen flavonoides, ácidos
fenólicos (cafeico, ferúlico y siríngico) y la cumarina escopoletol.
Usos: propiedades emolientes y béquica. Se usa popularmente la infusión al 10 % de
flores y hojas, posee acción suavizante. La raíz se utiliza como decocción en
gargarismos, lociones y forma parte de tisanas.
Como en el caso de la malva, existen pocos estudios acerca de la actividad
farmacológica de esta droga. En distintos animales de experimentación se ha
comprobado su efecto antitusivo, antiinflamatorio, antimicrobiano y ligeramente
hipoglucemiante. Tradicionalmente también se ha empleado por sus propiedades
emolientes para el tratamiento de afecciones respiratorias, úlcera gástrica e
inflamaciones o ulceraciones de la cavidad bucal y de la piel.
En algunos países también se emplea otra especie la Althaea rosea (L.) Cav. (= Alcea
rosea L.)
LINO: corresponde a Linum usitatissimum L. (Linaceae). Es una planta herbácea anual
con hojas lanceoladas, flores solitarias con pétalos azules y frutos en forma de cápsula.
Se cultiva en distintos países con dos finalidades distintas: para la obtención de fibras y
para la obtención de las semillas que son empleadas en terapéutica. Según la Real
Farmacopea Española deben emplearse "las semillas maduras y secas" que son
alargadas, ovoideas, aplastadas con el tegumento liso y brillante, de color marrón rojizo.
C.Q.: contienen un elevado porcentaje de aceite (45 %) y proteínas (20-25 %). Los
mucílagos corresponden a un 10 % de la semilla y están constituidos por dos fracciones,
una ácida y una neutra, esta última corresponde a un arabinoxilano ramificado
constituido por D-xilosa, L-arabinosa, D-glucosa y D-galactosa. Presentan además
glicósidos cianogenéticos (linamarósido), glicósidos fenilpropánicos y un pequeño
porcentaje de lignanos con ligera actividad estrogénica.
Usos: se emplea como laxante mecánico por su contenido en mucílagos.
OTRAS PLANTAS CON MUCILAGOS
Además de las plantas descriptas más arriba, también se emplean en el tratamiento de
alteraciones de la piel por su contenido en mucílagos el gel obtenido a partir de los
aloes, Aloe sp. (Asphodelaceae), las semillas de alholva, Trigonella foenum graecum L.
(Fabaceae) y las inflorescencias de tilo, Tilia sp. (Tiliaceae), drogas que poseen además
otros principios activos de interés en terapéutica por lo que se describirán en teóricos
posteriores.
POLISACARIDOS DE ALGAS MARINAS
1- ALGAS ROJAS (Rhodophyta)
- AGAR Y AGAROIDES: el ágar de Gelidium amansii considerado ágar genuino (otros
nombres comunes son agar-agar, gelosa, gelatina vegetal, cola de pez), consiste de dos
fracciones: un polímero virtualmente neutro (agarosa) y una fracción cargada
(agaropectina). Por metilación e hidrólisis enzimática, se dedujo que la estructura de la
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agarosa consistía en secuencias repetitivas de 3,6-anhidro--L-galactosa unida por C–4
y -D-galactosa unida en C–3.
O
O
O
OH
O
O
HO
CH2OH
OHn
El ágar comercial es un complejo sistema de polisacáridos que varían en términos de
"extremos de estructura", desde una estructura prácticamente neutra hasta un galactano
altamente cargado. Dichos extremos son los siguientes:
a. Agarosa neutra: una molécula formada por residuos de 3,6-anhidro--L-galactosa
unida por C–4 y -D- galactosa unida en C–3 y que, por lo tanto, no contiene grupos
cargados.
b. Agarosa sustituida con ácido pirúvico y baja sulfatación: a partir del primer extremo,
agarosa neutra, se incrementa gradualmente el enmascaramiento de esa estructura básica
con grupos cargados. Los residuos de D-galactosa están sustituidos por 4,6-O-(1-
carboxietilidén)-D-galactosa hasta una relación de aproximadamente 1 en 20. En este
punto, la proporción de sulfato es de 2 % e indica el reemplazo de parte de la 3,6-
anhidro--L-galactosa por galactosa 6-sulfato.
c. Galactano sulfatado con ausencia (o muy baja proporción) de 3,6-anhidro--L-
galactosa o 4,6-O-(1-carboxietilidén)-D-galactosa: a partir del segundo extremo, la
sustitución de D-galactosa por el cetal del ácido pirúvico disminuye gradualmente y la
concentración de galactosas sulfatadas aumenta hasta el tercer extremo, un galactano
sulfatado no gelificante.
Las proporciones de polisacárido con estructuras correspondientes a cada extremo son
diferentes para ágares de distintas especies y posiblemente con la época del año y el estado de crecimiento de la planta.
La agarosa neutra es el componente responsable de las propiedades gelificantes del
ágar, mientras los productos cargados proveen el componente viscoso. La viscosidad
varía dependiendo de la especie del alga, el método de extracción y el contenido de
sulfato. Un aumento en el contenido de sulfato disminuye la capacidad gelificante. La
fuerza de gel de un ágar aumenta entonces con una mayor proporción de agarosa neutra,
es decir, con una disminución en el contenido de sulfato y un incremento en los residuos
de 3,6-anhidro-L-galactosa.
El ágar de Gracilaria verrucosa no contiene ácido pirúvico, pero sí una proporción
bastante alta de 6-O-metilgalactosa. Dicho ágar constituye una familia de polisacáridos
que varían entre dos extremos de estructura: un galactano no sulfatado y altamente
metilado, posiblemente formado por unidades repetitivas de agarobiosa metilada, y un
galactano no metilado y altamente sulfatado con menor proporción de 3,6-anhidro-L-
galactosa.
Extracción: la agarosa se extrae con agua hirviendo un poco acidulada y luego se filtra
en caliente, cuando se forma el gel se extrae el agua por medio de congelaciones y
descongelaciones sucesivas.
Usos: la agarosa es usada como laxante mecánico suave (no es tóxico ni irritante, no se
metaboliza ni tiene valor nutritivo), protector gástrico e intestinal asociado con
antiácidos, emulsionante y gelificante, en microbiología como medio de cultivo sólido,
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espesante y aglutinante, disgregante en comprimidos. En el oeste de Estados Unidos se
lo utiliza como antirreumático para tratamientos prolongados.
- CARRAGENANOS: constituyen un grupo de polisacáridos que contienen galactosas
y 3,6-Anh-D-gal, con distintas proporciones de sulfatos. Se obtiene de algas rojas de
especies de Gigartina, Iridaea, Mazzaella, Chondrus, todas Gigartinales.
OCH2OH
OHO
O3SO
O O
O
OHn
-carragenano
O
HO
H2C
O3SO
OSO3
O
OCH2OH
O
HO
OR
n -carragenano. R = 70 % SO3, 30 % H
Extracción: agua a temperatura ambiente y a 70-80 °C. Se purifican por precipitación
de los extractos acuosos con 3-5 volúmenes de isopropanol.
Propiedades: la familia de -carragenanos y iota forman geles en presencia de potasio
o de calcio; la de - no gelifican.
La viscosidad depende de la concentración de manera que aumenta con al
concentración, disminuye con la T° y con la presencia de otros compuestos. También
depende de la familia o tipo de carragenanos y del peso molecular (aumenta con el
aumento del PM).
Usos: como geles, suspensotes o espesantes. Estabilizantes de emulsiones, emulgente
para el aceite de hígado de bacalao por ejemplo.
2- ALGAS PARDAS (PHAEOPHYTA)
- FUCANOS: polisacáridos sulfatados constituidos fundamentalmente por L-fuc con
restos de D-gal. Algunos poseen además D-xil, D-glcA. Proceden de especies de algas
pardas de los Géneros Adenocystis, Scytosiphon, Lessonia, Fucus, entre otras.
Se obtienen con soluciones diluidas de ácido clorhídrico y con agua (a T° ambiente y a
80 °C).
Usos: anticoagulantes, antivirales (frente al virus del Herpes Simplex tipos I y II, virus
del SIDA), antitumorales.
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- LAMINARANOS: polisacáridos de glucosa y restos de ácido glucurónico obtenidos
de las Laminariaceae, Laminaria digitata, L. hyperborea.
Son macroalgas marinas con frondas laminares alargadas. Se colectan principalmente en
Europa.
Usos: obtención de laminarias quirúrgicas estériles a partir de las estipes cilíndricas o
cónicas limpias, raspadas y en trozos con diámetros de 2-9 mm.
- ALGINATOS: constituyen las sales sódicas o cálcicas del ácido algínico. El ácido
algínico es un polisacárido lineal constituido de unidades de ácido -D-manA-(14)--
L-gulA, que se encuentran formando bloques o segmentos del primero (bloques M), del
segundo ácido (bloques G) y segmentos en donde se intercalan ambos ácidos (bloques
M/G).
Se obtienen de Macrocystis pyrifera, Durvillea, Fucus, Lessonia, Laminaria,
Ascophyllum, entre otras algas pardas. Se utilizan las frondas.
Características: el ácido algínico y sus sales de calcio y magnesio son insolubles en
agua. Se solubilizan como sales de sodio o potasio.
Usos: el alginato de calcio se usa como hemostático de acción rápida, por ejemplo en
hemorragias dentales, llagas superficiales, comisuras de los labios lastimadas. También
forma parte de tejidos hemostáticos absorbibles en gasas y compresas, para lo cual una
solución de alginato de sodio se pasa por una malla metálica que tiene perforaciones y
está inmersa en una solución de cloruro de calcio; el alginato de calcio va formando
fibras las que se hilan para dar hebras y se tejen (cardado) para obtener los tejidos.
La sal sódica se usa en tratamientos de obesidad por su capacidad de hinchamiento y
por no absorberse en el intestino, creando una sensación de repleción gástrica y en
consecuencia disminuyendo el apetito.
Como sal sódica posee fuerte adherencia y poder de revestimiento, por lo que se usan
las soluciones coloidales monovalentes como soporte de medicamentos antiulcerosos y
protectores de la mucosa gástrica.
También en formulaciones de comprimidos como desintegrante, en cremas y pomadas
como estabilizantes de emulsiones.
En cosmética como emulsionantes y para retener agua, en alimentación (helados, sopas,
pastelería, salsas); en la industria textil (en pastas para contener colorantes).
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PRODUCCION COMERCIAL DE ALGINATO DE CALCIO Y DE SODIO
1) Colección de las especies de algas pardas productoras de alginatos.
2) Selección, Clasificación taxonómica, Secado, Molienda y pesada.
ALGAS MOLIDAS (contienen el alginato como sales insolubles de calcio y magnesio)
+ HCl 0,1 M, 30 min, 50 ºC
ALGAS (conteniendo ahora el ácido algínico liberado, pero también insoluble)
+ Extracción alcalina con Na2CO3
al 1,5 %, 1-2 h, 50-60 ºC
ALGINATO SOLUBLE COMO ALGINATO DE SODIO + MARCO
Filtración con vacío
SOLUCIÓN DE ALGINATO DE SODIO MARCO
+ CaCl2 al 10 %
ALGINATO DE CALCIO
(precipita como fibras) ALGINATO DE CALCIO
Filtración por tamices moleculares
Lavados con agua abundante
Blanqueado con hipoclorito
de Na al 12 %
+ HCl 0,5 M, 30 min, en tanques + HCl al 5 %, 60 min,
pH=1,5-2, en tanques
ACIDO ALGINICO INSOLUBLE ACIDO ALGINICO INSOLUBLE
Lavado con agua, prensado
+ Na2CO3 o NaOH
Tamizado, forma de pasta
ALGINATO DE SODIO
(luego se seca y se tamiza hasta darle forma de pellets, polvo, fibras)
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ESTUDIO DE HIDRATOS DE CARBONO
1- Extracción: agua, soluciones alcalinas o ácidas, otros solventes polares, solventes
anfipróticos
2- Fraccionamiento: cromatografía, diálisis, precipitación, electroforesis
3- Identificación (reacciones cualitativas): Molisch, Fehling, Seliwanoff, Barfoed,
Bial, Keller-Killiani
4- Cuantificación: fenol-H2SO4
5- Perfiles cromatográficos: planar, HPLC-RI, CGL, HPAEC-PAD
6- Elucidación: metilación, MS, 1H-RMN, 13C-RMN, FT-IR
1- Extracción: el solvente y la metodología dependerá de las muestras, por lo que se
debe analizar en función de características generales del grupo químico y luego para
cada hidrato de carbono en particular.
Con agua se extraen la mayor parte de mono y oligosacáridos; también algunos
polisacáridos. Con soluciones alcalinas o ácidas se extraen polisacáridos ácidos por ej.
También se utilizan otros solventes como por ej. una combinación de cloruro de litio
con dimetilsulfóxido o dimetilformamida para la extracción de polisacáridos fibrilares
como la celulosa o los mananos.
2- Fraccionamiento: se utilizan fundamentalmente la cromatografía, diálisis,
precipitación (por ej. de polisacáridos con etanol o isopropanol), electroforesis.
Mediante diálisis se pueden fraccionar sustancias de distinta masa molecular. Para ello
la muestra a fraccionar, por ej. un extracto acuoso, se dispone en el interior de una bolsa
o membrana de tamaño de poro conocido, elegido previamente según el objetivo de la
diálisis. El sistema se dispone en un recipiente conteniendo agua destilada (sistema
cerrado) o en un recipiente por donde transcurre agua corriente (sistema abierto) y se lo
deja allí 48 h, posteriormente si se dializó en sistema abierto, se lo deja en sistema
cerrado otras 24 h. Al cabo de ese tiempo, se retira la bolsa, su contenido se concentra a
presión reducida y se lo lleva a seco mediante liofilización. Así por ej. si se utiliza una
bolsa (o membrana) de tamaño de poro de 6,000 a 8,000, aquellos compuestos de menor
masa molecular atravezarán la bolsa, mientras que los más grandes quedarán en el
interior fraccionándose entonces por masa molecular. Se utiliza para separar
polisacáridos de oligo y mono que pudieran haber sido extraídos por ej. por digestión
con agua.
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3- Reacciones cualitativas para la identificación de hidratos de carbono
Las pruebas colorimétricas para la determinación de hidratos de carbono se basan en la
reacción específica de estos compuestos con determinados reactivos para dar derivados
coloreados. La formación de color se toma como resultado positivo e indica la presencia
de sustancias de esta naturaleza química, mientras que la no formación de color es
indicativo de su ausencia.
Para cada prueba se recomienda utilizar un control negativo, también denominado
blanco de la reacción, en el que el reactivo se añade a agua destilada (o solvente
adecuado).
Aunque son métodos muy generales, algunas pruebas permiten discriminar entre
diferentes tipos de hidratos de carbono. Se destacan métodos de determinación de
azúcares reductores, de pentosas y hexosas, aldosas y cetosas, mono, oligo y
polisacáridos. En todos ellos el fundamento es similar, y se basa en la reacción del
carbohidrato con otro reactivo, con la formación productos coloreados que se pueden
determinar inclusive en forma cuantitativa por espectroscopía visible.
A. Reacciones de determinación de furfural e hidroximetilfurfural
Las pentosas y hexosas (tanto aldosas como cetosas) en presencia de ácidos minerales
(por ej. ácido sulfúrico) y a temperaturas elevadas sufren procesos de deshidratación
originando furfural (derivados de pentosas) o hidroximetilfurfural (derivados de
hexosas), tal y como se indica a continuación:
Fundamento. Los monosacáridos en caliente y medio muy ácido, sufren una
deshidratación que conduce a la formación de un anillo pentagonal de furfural o
hidroximetilfurfural, según se parta de pentosas o hexosas.
Los furfurales (furfural o hidroximetilfurfural) formados se combinan fácilmente con
diversos fenoles, aminas cíclicas o heterociclcos, dando reacciones / productos
coloreados.
Aunque son pruebas específicas de monosacáridos, los oligo y polisacáridos también
dan positivo, ya que en el medio ácido se hidroliza el enlace glicosídico.
Se disponen de diferentes técnicas, dependiendo del reactivo utilizado (ensayo de
Molish, con α-naftol; ensayo de la antrona; ensayo de Bial, con orcinol; ensayo de
Seliwanoff, con resorcinol).
A.1. Ensayo de Molish: reacción de furfural e hidroximetil-furfural con α-naftol, dando
lugar a derivados de color púrpura - violácea. Es una prueba general de azúcares.
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A.2. Ensayo de Bial: reacción del furfural e hidroximetil-furfural con orcinol en medio
con HCl, dando lugar a derivados de color azul. Es una prueba específica de pentosas.
A.3. Ensayo de Seliwanoff: reacción del furfural e hidroximetil-furfural con resorcinol,
dando lugar a derivados de color rosa-rojo. Es una prueba específica de hexosas, no obstante las cetosas en medio ácido se deshidratan más rápidamente que las aldosas, por
lo que si bien ambos grupos pueden diferenciarse en función del tiempo que tarda en
aparecer el producto coloreado, se utiliza como prueba para cetosas.
B. Identificación de azúcares reductores por el ensayo de Fehling
Los hidratos de carbono que presentan grupos aldehídicos libres o en forma
hemiacetálica (grupos aldehídicos potenciales) no bloqueados (por ejemplo formando
parte de un enlace glicosídico), pueden ser oxidados por diferentes reactivos (ej. ión
cúprico), por lo que se les denomina azúcares reductores.
Farmacognosia 2017 – FCNyCS – UNPSJB – Dra. María Luján Flores - Hidratos de Carbono - 16
sin color azul rojo azul
Dan resultado positivo: aldehídos alifáticos y α-hidroxialdehídos.
Dan resultado negativo: aldehídos aromáticos y cetonas.
Son ejemplos de hidratos de carbono reductores la glucosa y la maltosa, y de no
reductores, el disacárido sacarosa, O-β-D-fructofuranosil-(2→1)-α-D-glucopiranósido.
Las cetosas, sufren reacciones de oxidación típicas de los aldehídos; para ello necesitan
un medio básico, ya que a valores altos de pH se produce una isomerización a la
correspondiente aldosa.
Hay diferentes métodos de determinación de azúcares reductores: Fehling, Benedict,
Barfoed, Nelson-Somogyi, entre otros. En todos ellos, el azúcar reductor es oxidado por
el catión cúprico Cu+2 en medio alcalino, con formación de óxido cuproso insoluble, lo
que da la típica coloración rojizo-amarillenta. Los iones Cu+2 se pueden mantener en
solución, formando complejos coloreados con tartratos y citratos, lo que permite la
determinación cuantitativa de los azúcares reductores.
4- Cuantificacion. Determinación del porcentaje de hidratos de carbono totales:
método del fenol – ácido sulfúrico
Fundamento teórico
El método se relaciona con la llamada Reacción de Molisch. La diferencia está dada
porque en Molisch se utiliza como reactivos - naftol en etanol al 10 % P/V y ácido
sulfúrico concentrado, mientras que en este método de cuantificación se utiliza fenol al
5 % en agua y ácido sulfúrico concentrado. Ello obedece a que una cuantificación no
podría efectuarse en la interfase generada en la reacción de Molisch, sino que requiere
que exista una única fase. El fenol en agua lo permite, el - naftol no.
La técnica requiere trabajar con una solución / dilución acuosa de la muestra que se sabe
contiene hidratos de carbono.
Para ello se debe pesar exactamente una cantidad de muestra y preparar una solución
madre (y diluciones posteriores si fuera necesario) utilizando material volumétrico
adecuado.
A partir de la solución o dilución correspondiente se toman alícuotas, al menos 3, de
0,05 ml hasta un volumen máximo de 0,5 ml, llevando a volumen final de 0,5 ml
cuando fuera necesario, con el agregado de agua destilada.
A cada alícuota se le agregan 0,5 ml de la solución acuosa al % de fenol, se agitan y se
deja caer de una sola vez sobre la zona central en la superficie, 2,5 ml de ácido sulfúrico
concentrado.
El ácido sulfúrico concentrado hidroliza (si existieran oligo o polisacáridos o glicósidos)
todas las uniones glicosídicas liberando monosacáridos, que inmediatamente por la
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deshidratación intramolecular que también causa este ácido, se transforman en furfural
(en el caso de las pentosas) o hidroximetilfurfural (hexosas). Estos productos se
combinan con el fenol sulfonato originando un complejo cuyo color varía del amarillo
(pentosas y desoxiazúcares) al naranja o pardo naranja (hexosas), cuya absorbancia se
determina colorimétricamente en un espectrofotómetro a 480/482 – 490 nm.
Dado que la formación del complejo se produce in situ y debe ser rápida, el fenol debe
estar agregado y mezclado con la alícuota de la muestra, previo al agregado del ácido
sulfúrico, de tal forma que así la reacción ocurre en tiempo y forma.
Técnica. Pesar exactamente una porción del Infuso liofilizado (o de la muestra en la
cual se cuantificarán los hidratos de carbono). Retomar con agua llevando a volumen
final en un matraz de 5 ml.
Preparar una solución acuosa patrón de glucosa de 100 g/ml. También se
pueden utilizar otras sustancias estándares (gal, man por ej.).
Tomar distintas alícuotas (volúmenes de 0,05 ml a 0,45 ml) de la solución patrón
y de la solución del extracto liofilizado de la planta, y llevar cada una a volumen final
de 0,5 ml con agua destilada. Agregar a cada tubo 0,5 ml de una solución acuosa de
fenol al 5 %, agitar en el vórtex y verter sobre la superficie de cada tubo 2,5 ml de ácido
sulfúrico concentrado, UTILIZANDO GUANTES, ANTEOJOS PROTECTORES Y
CAMPANA. Luego de transcurridos 10 minutos, agitar en el vórtex y dejar enfriar 5
min más. Efectuar un blanco de reactivo con 0,5 ml de agua destilada.
Leer la absorbancia de cada tubo a 490 nm. Graficar Absorbancia versus Masa
expresada en g de azúcares totales de la sustancia patrón. Extrapolar las alícuotas de la muestra, y determinar el porcentaje de azúcares totales en el liofilizado y en la muestra
vegetal sometida a extracción.
5- Cromatografía de hidratos de carbono
Se puede realizar mediante cromatografía planar sobre papel (Whatman N° 1 o bien N°
3 MN para preparativa) o bien sobre celulosa microcristalina.
No obstante la cromatografía instrumental, fundamentalmente la Cromatografía
Gaseosa (Gas Líquido, CGL), es la que mayores ventajas ofrece para los estudios. Sin
embargo esta cromatografía utiliza como fase móvil un gas inerte (preferentemente He
aunque en análisis de rutina se utiliza N2 por ser más económico dejando el He solo para
estudios estructurales, NO USAR hidrógeno por ser peligroso y además poco
reproducible). Por ello es una cromatografía aplicable a sustancias volátiles (ej. aceites
volátiles o esenciales) y también a aquellas que pueden ser transformadas en volátiles
mediante derivatizaciones. Esto último es lo que se realiza con los hidratos de carbono
para su análisis mediante CGL.
También podría utilizarse HPLC, en este caso mediante el uso de un detector de índice
de refracción para evitar la derivatización de los hidratos de carbono o bien previa
derivatización con sustancias aromáticas para poder utilizar el detector UV y el de
arreglo de diodos (DAD).
Otra alternativa es utilizar HPLC de intercambio aniónico provista de un detector
amperométrico; en general se usa para hidratos de carbono sulfatados o conteniendo
grupos aminos. Se denomina HPAEC-PAD; se usan columnas conteniendo resinas de
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intercambio y como fases móviles, soluciones alcalinas de hidróxido de sodio. En este
caso las muestras no se derivatizan. Es una metodología más costosa.
La CGL es comparativamente más apropiada porque aporta mayor resolución, mayor
sensibilidad, reproducibilidad y precisión. Como detector se usa en general el de
ionización de llama (DIL o FID); en estudios más avanzados, se puede acoplar a un
espectrómetro de masas (CGL-MS).
En todos los casos, si la muestra podría contener todo tipo de hidratos de carbono
(monosacáridos, oligo, poli) o aquellos de mayor masa molecular (oligo o
polisacáridos), se deberá hacer una hidrólisis previa del material. En el caso de que se
vaya a utilizar CGL, a continuación se deberán derivatizar las muestras. En el caso de
que solo se trate de monosacáridos se trabajará sin hidrólisis previa. En el caso de
efectuar cromatografías planares, se podrán trabajar sin hidrólisis previa tanto
monosacáridos como oligos de cadenas cortas (di, tri, tetrasacáridos).
A continuación se describen los procedimientos de rutina para analizar los hidratos de
carbono mediante cromatografía en general (puntos 1 y 2) y aquellos que permitirán los
estudios utilizando CGL.
1. Hidrólisis ácida general.
Alrededor de 3 mg de muestra se colocan en viales provistos de tapas de teflón y se
le adicionan 0,5 ml de TFA 2 M. Tras calentamiento en estufa a 121 °C durante 90 min,
los hidrolizados se evaporan a seco a presión reducida con agregados sucesivos de agua
destilada hasta la eliminación total del olor al ácido. Los residuos se dejan en un
desecador al vacío durante una noche.
NOTA. Esta metodología también se aplica a la hidrólisis de glicósidos (se verán en la
Unidad 6 de la asignatura).
2. Hidrólisis ácida para material insoluble y/o fibrilar (ej. celulosas, mananos, ácido
algínico).
Hasta 3 mg de muestra son colocados en viales provistos de tapas de teflón junto con
0,2 ml de TFA puro y llevados a estufa a 37 °C por 1 h. Luego se agregan 25 l de agua
destilada y se continúa la hidrólisis durante 1 h más a 100 °C. Finalmente se agregan
1,054 ml de agua destilada logrando así la concentración 2 M del TFA. La hidrólisis
concluirá luego de mantener los viales a 121 °C por 90 min más. Posteriormente los
hidrolizados se llevan a seco a presión reducida eliminando el ácido mediante sucesivos
lavados con agua destilada y evaporación. Los residuos así obtenidos se mantendrán en
un desecador al vacío durante una noche.
Para transformar los hidratos de carbono en derivados volátiles se trabaja en 2 etapas.
Primero se protege el carbono anomérico ya sea transformándolo en el nitrilo
correspondiente (primera parte del punto 3 que se detalla a continuación) o bien
reduciéndolo a grupo alcohol (primera parte del punto 4 que se detalla más abajo). A
continuación se peracetila el producto; en el caso de los aldononitrilos, se acetilarán las
demás posiciones que tuvieran grupos OH; en el caso de los alditoles, también se
acetilará la posición anomérica que ha sido reducicida a OH.
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3. Preparación de los aldononitrilos peracetilados.
A los hidrolizados secos (1 ó 2) se les agregan 10 mg de clorhidrato de hidroxilamina
y 0,5 ml de piridina anhidra en viales cerrados, y el conjunto se lleva a estufa a 85 °C
durante 30 min. Luego de enfriados los viales, se les adicionan 0,5 ml de anhídrido
acético y se los lleva nuevamente a estufa a igual temperatura por otros 30 min. Una vez
enfriadas las soluciones, los derivados serán extraídos con 1 ml de cloroformo-agua
(1:1). Los extractos clorofórmicos se lavarán 3 veces con un 1 ml de una solución
saturada de bicarbonato de sodio, otras 2 veces con agua destilada y finalmente se
secarán con agregados de unos mg de sulfato de sodio anhidro. Separado el sulfato de
sodio, el extracto clorofórmico será evaporado a sequedad, y el residuo resultante se
disolverá en 20 l de cloroformo inmediatamente antes de inyectar en el cromatógrafo
gaseoso.
4. Preparación de los alditoles peracetilados.
Las muestras hidrolizadas y secas (2-3 mg) son disueltas en 0,5 ml de hidróxido de
amonio 1 M y se les agregan alrededor de 5 mg de borohidruro de sodio. Las mezclas se
mantienen a temperatura ambiente por al menos 2 h (preferiblemente durante toda la
noche). Posteriormente se agregan unas gotas de ácido acético diluido para destruir el
exceso de borohidruro hasta que cesó la efervescencia, y se descationizan mediante el
agregado de resina Amberlite IR-120 (H+) o Dowex 50 (H+). Una vez filtradas, las
muestras se llevan a seco en un evaporador rotatorio a presión reducida y se efectúan 5
agregados de metanol (0,5 ml cada vez) evaporando a sequedad en todos los casos para
eliminar el ácido bórico generado en forma de borato de metilo. Luego las muestras
secas se mantienen en un desecador en vacío durante una noche. Las mezclas de
alditoles serán peracetiladas en viales cerrados con 1 ml de una mezcla constituida por
anhídrido acético-piridina (1:1) en estufa a 100 °C durante 45 min. Una vez enfriados
los viales son abiertos y los derivados se extraen con 1,5 ml de cloroformo-agua (1:1).
Los extractos clorofórmicos son lavados sucesivamente con 1 ml de una solución
saturada de bicarbonato de sodio (3 veces) y con 1 ml de agua destilada (2 veces), y
finalmente, secados con sulfato de sodio anhidro y llevados a sequedad total por
eliminación del cloroformo. Los residuos secos así obtenidos se redisuelven en 20 l de cloroformo en el momento de ser inyectados en el cromatógrafo gaseoso.
5. Estudios de metilación.
En el caso de requerir estudios estructurales más específicos, esto es conocer no solo los
monosacáridos o derivados que contiene el producto sino además establecer las
posiciones en que ellos se unen (en el caso de oligo o polisacáridos), se deberá recurrir a
los estudios de metilación. Para ello primero se debe trabajar con el producto como tal,
es decir NO HIDROLIZAR; este producto será metilado, ello ocurrirá en aquellas
posiciones que no involucran uniones entre monosacáridos constituyentes ni tampoco
las que forman los hemiacetales. Una vez metilados, se hidrolizarán, se derivatizarán a
aldononitrilos o alditoles (en el caso de los productos metilados se prefiere alditoles
porque se obtiene mejor rendimiento) y se peracetilarán. Como resultado, las posiciones
libres en todo el producto antes de la hidrólisis fueron metiladas; las posiciones
involucradas en uniones no pudieron metilarse, pero luego al hidrolizar el producto
quedaron disponibles y por lo tanto se derivatizaron y se acetilaron.
Ej. el trisacárido constituido por α-D-glcp-(1→4)-α-D-glcp-(1→4)-α-D-glcp-(1→4), si
fuera sólo hidrolizado y sometido a derivatización según lo indicado en el punto 3, daría
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como resultado tres unidades de gluconitrilo peracetilado en 2,3,4,5 y 6 (o en el caso de
haber preparado alditol, también se acetilaría la posición 1).
En cambio si primero fuera metilado, luego hidrolizado y derivatizado a alditol (por ser
lo que más se utiliza), daría como resultado: 1 unidad de 2,3,4,6-tetra-O-metil, 1,5-di-O-
acetil-glucosa; 1 unidad de 2,3,6-tri-O-metil, 1,4,5-tri-O-acetil-glucosa y 1 unidad de
1,2,3,6-tetra-O-metil, 4,5-di-O-acetil-glucosa. Esto es indicativo de que la primera
unidad solo tenía unión a la siguiente en posición 1, la segunda unidad estaba unida a la
primera por su posición 4 y la tercera unidad de glucosa estaba solo unida a la segunda
por su posición 4 con el carbono 1 (anomérico) libre.
NOTA. Dibujar el trisacárido en el plano con sus fórmulas cíclicas para ver con mayor
claridad el ejemplo y practicar así estructuras y posiciones de unión.
Procedimiento de metilación. Las muestras SIN HIDROLISIS PREVIA, se deben
agitar durante una noche en una solución acuosa de clorhidrato de trietilamina al 5 %. A
continuación serán dializadas (utilizando bolsas de diálisis para PM de 3000 y de 1000)
y liofilizadas. Los dializados obtenidos se llevan a seco y se retoman en
dimetilsulfóxido (conteniendo 8,4 % de cloruro de litio, p/v, en el caso de material
fibrilar), se sonican y se agitan durante 2 h. Al cabo de ese tiempo se sonican
nuevamente y se continúa la agitación por 1 h más. Posteriormente se agregan 100 mg
de hidróxido de sodio pulverizado (el pulverizado se realiza en un mortero a partir de
lentejas del álcali), se sonica la mezcla y se agita durante 1 h. El sistema se coloca en un
baño de hielo y a través de un tapón de goma y mediante una jeringa se adicionan 1-2
ml de ioduro de metilo, agitándose por 1 h nuevamente. La metilación se detendrá por el
agregado de una mezcla de cloroformo-metanol (1:1), continuando la agitación por
media hora. Esta última operación se repite en general dos veces más para mejorar el
rendimiento de la metilación, separándose mediante centrifugación los extractos
obtenidos. Los extractos clorofórmicos se reúnen, se concentran a presión reducida, se
dializan (bolsas de poro 1000 ó 3000) y se liofilizan. Posteriormente los productos
metilados liofilizados, se hidrolizan y finalmente se derivatizan a los correspondientes
acetatos de alditoles metilados.
6. Desarrollo de las cromatografías gas-líquido: se llevan a cabo en un cromatógrafo
equipado con un detector de ionización de llama (FID), con una relación de split de 45:1
hasta 90:1, utilizando nitrógeno como gas portador o bien helio en el caso de los
productos metilados.
Columnas y condiciones empleadas en general para CGL de hidratos de carbono.
Los análisis de los azúcares componentes, y las determinaciones de los azúcares
parcialmente metilados se efectúan con una columna capilar SP-2330 (Supelco) o
semejante. El flujo del gas portador más usado es de 1 ml /min; y la presión en cabeza
de columna, de 104 kPa (= 1,02 atm o 15 Psi), y de 125 kPa (= 1,23 atm o 18 Psi) para
los productos metilados.
Las condiciones de corrida empleadas pueden ser:
Programa 1: los monosacáridos derivatizados como aldononitrilos o como alditoles,
peracetilados en ambos casos, son separados en una corrida isotérmica a 220 °C, siendo
las temperaturas del inyector y del detector, 235 °C.
Programa 2: para la separación de los azúcares metilados se utiliza en general un
programa de temperaturas: 160 °C 210 °C, a 4 °C/min; y luego 210 °C 240 °C, a
5 °C/min. La temperatura del inyector y del detector es de 245 °C.
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6- Elucidación estructural
- Metilación: tipo de ciclo, tipo de unión, modelos de sustitución. CGL – MS.
- RMN: configuración, tipo de unión, sustituyentes, secuencia total. Se utiliza 1H-RMN, 13C-RMN, 2D-RMN.
- FT-IR: brinda información sobre grupos funcionales, si bien no permite la elucidación
de estructuras.