Hortofruticultura y jardinería Trabajo Técnico - Experimental
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Hortofruticultura y jardinería
Trabajo Técnico - Experimental
UNIVERSIDAD DE ALMERÍA
ESCUELA SUPERIOR DE INGENIERÍA
INGENIERÍA AGRÍCOLA
ESPECIALIDAD HORTOFRUTICULTURA Y JARDINERÍA
OPTIMIZACIÓN DE LA APLICACIÓN DE MICROALGAS EN
PETUNIA X HYBRIDA. EFECTO DE LA APLICACIÓN
FOLIAR DE HIDROLIZADO DE MICROALGAS
(ARTHROSPIRA PLATENSIS Y BIORIZON SC) EN EL
CRECIMIENTO Y DESARROLLO DE PETUNIA X HYBRIDA
BAJO CONDICIONES SALINAS.
El Alumno:
Pedro José Bayona Morcillo
Almería, Septiembre de 2019
Directores:
Dª. Silvia Jiménez Becker
Agradecimientos
En primer lugar quiero expresar mi agradecimiento a la directora de este Trabajo Fin de
Grado, Doña Silvia Jiménez, por la dedicación y ayuda brindada.
Así mismo, agradezco al profesorado, las enseñanzas y virtudes aportadas durante esta etapa
académica. A mis amigos, el apoyo y animo ofrecido en este periodo universitario.
Por último, agradecer a mis padres, hermanos y abuelos por el apoyo, por los consejos y por
las vivencias compartidas, sin ellos esto no hubiese sido posible.
Gracias a todos por las aportaciones en mi vida que han hecho ser quien soy y llegar donde he
llegado.
Índice
4 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Índice
1. Memoria ............................................................................................................................ 13
1.1. Interés y objetivos ...................................................................................................... 13
1.2. Descripción Petunia ................................................................................................... 14
1.2.1. Comercialización .................................................................................................... 14
1.2.2. Taxonomía y origen ................................................................................................ 15
1.2.3. Morfología .............................................................................................................. 16
1.2.4. Especies y variedades ............................................................................................. 17
1.2.5. Manejo del cultivo .................................................................................................. 18
1.2.6. Condiciones ambientales ........................................................................................ 21
1.2.7. Enfermedades, fisiopatías y plagas del cultivo de petunia ..................................... 21
1.3. Descripción general de microalgas ................................................................................ 26
1.3.1. Introducción. ........................................................................................................... 26
1.3.2. Producción de microalgas. ...................................................................................... 27
1.3.3. Extractos de microalgas .......................................................................................... 28
1.3.4. Composición química de bioestimulantes y biofertilizantes de microalgas ........... 29
1.3.5. Aplicaciones como Bioestimulantes ....................................................................... 29
1.3.6. Aplicaciones como biofertilizante .......................................................................... 30
1.4. Competencias integradas en el proyecto técnico-experimental .................................... 31
2. Fases de la realización y cronograma ................................................................................... 33
2.1. Fases de la realización ................................................................................................... 33
2.2. Cronograma ................................................................................................................... 33
3. Especificaciones y requerimientos técnicos ......................................................................... 37
3.1. Ubicación ....................................................................................................................... 37
3.2. Instalaciones y equipos .................................................................................................. 37
3.2.1. Instalaciones usadas. ............................................................................................... 37
3.2.2. Sistema de ventilación ............................................................................................ 38
3.2.3. Materiales usados del invernadero .......................................................................... 39
3.2.4. Equipos de fertirriego empleados ........................................................................... 40
3.3. Material vegetal y manejo del cultivo ........................................................................... 41
3.3.1. Material vegetal ...................................................................................................... 41
3.3.2. Medio de cultivo ..................................................................................................... 41
5 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
3.3.3. Dosis y frecuencia de riego ..................................................................................... 42
3.3.4. Tratamientos de deficiencias foliares ...................................................................... 42
3.3.5. Tratamientos fitosanitarios ...................................................................................... 43
3.4. Tratamientos .................................................................................................................. 44
3.4.1. Fertilizantes empleados y preparación de la solución de fertirriego ....................... 44
3.4.2. Hidrolizados de microalgas ..................................................................................... 45
3.4.3. Tratamientos ........................................................................................................... 46
4. Mediciones ........................................................................................................................... 48
4.1. Parámetros de ambientales del ensayo .......................................................................... 48
4.2. Parámetros de crecimiento de la planta ......................................................................... 49
4.3. Parámetros nutricionales de la planta ........................................................................... 50
4.4. Tratamiento estadístico de diferencias significativas .................................................... 50
5. Resultados y discusión. ........................................................................................................ 53
5.1 Efecto de la aplicación de microalgas para control del estrés salino .............................. 53
5.1.1. Efecto de la aplicación de microalgas en la longitud del tallo ................................ 53
5.1.2. Efecto de la aplicación de microalgas en el número de hojas de la planta ............. 56
5.1.3. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el número de brotes producidos. ....... 57
5.1.4. Efecto de la aplicación de microalgas sobre la anchura de la hoja ......................... 59
5.1.5. Efecto de la aplicación de microalgas sobre la longitud de la hoja ........................ 60
5.1.6. Efecto de la aplicación de microalgas en la longitud del entrenudo de la planta. .. 62
5.1.7. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el color de la planta. ......................... 63
5.1.8. Efecto de la aplicación de microalgas sobre peso fresco de la planta .................... 64
5.1.9. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el peso seco de la planta ................... 65
5.1.10. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el área foliar de la planta. ............... 66
5.1.12. Efecto de la aplicación de microalgas sobre concentración de nutrientes en hoja.67
5.2. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas ......................................... 69
5.2.1 Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en la longitud del tallo.69
5.2.2. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en el número de hojas
de la planta. ....................................................................................................................... 71
5.2.3. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el número de
brotes producidos. ............................................................................................................. 71
5.2.4. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre la anchura de la
hoja .................................................................................................................................... 72
6 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.5. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre la longitud de la
hoja. ................................................................................................................................... 73
5.2.6. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en la longitud del
entrenudo de la planta. ...................................................................................................... 74
5.2.7. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el color de la
planta. ................................................................................................................................ 75
5.2.8. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el peso fresco de
la planta. ............................................................................................................................ 76
5.2.9. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas el peso seco de la
planta. ................................................................................................................................ 77
5.2.10. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el área foliar de
la planta. ............................................................................................................................ 78
6. Conclusiones. ....................................................................................................................... 80
7. Bibliografía. .......................................................................................................................... 82
8. Anexos. ................................................................................................................................. 93
8.1. Producto Algafert de la empresa Biorizon Biotech. ...................................................... 93
8.2. Producto Microtech Ferro de la empresa Biorizon Biotech. ......................................... 95
7 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Índice de gráficas
Gráfica 1: Desarrollo de la longitud del tallo a lo largo del ensayo…………….............53
Gráfica 2: Longitud del tallo al final del ensayo………………………………..............54
Gráfica 3: Número de hojas de la planta a lo largo del ensayo…………………............56
Gráfica 4: Número de hojas de la planta al final del ensayo……………………………56
Gráfica 5: Número de brotes de la planta a lo largo del ensayo………………...............57
Gráfica 6: Número de brotes de la planta al final del ensayo…………………………...58
Gráfica 7: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del
ensayo……………………………………………………………………………….…...59
Gráfica 8: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a los 63 días de
ensayo……………………………………………………………………………............59
Gráfica 9: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del
ensayo……………………………………………………………………………............60
Gráfica 10: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a los 63 días de
ensayo……………………………………………………………………………............61
Gráfica 11: Longitud del último entrenudo de la planta al final del ensayo……………62
Gráfica 12: Valores de luminosidad del color según las tablas Munsell………………..63
Gráfica 13: Valores de saturación del color según las tablas Munsell………….............63
Gráfica 14: Pesos frescos de los tallos, raíces, hojas y el peso total de las
plantas……………………………………………………………………………............64
Gráfica 15: Pesos secos de los tallos, raíces y hojas de las plantas……………………..65
Gráfica 16: Área foliar media de la planta al final del ensayo……………….................66
Gráfica 17: Concentración de N, P y K (%) en hoja……………………………............67
Gráfica 18: Contenido de calcio, magnesio, sodio y cloro en las hojas (%)……............67
Gráfica 19: Desarrollo de la longitud del tallo a lo largo del ensayo…………………...69
Gráfica 20: Número de hojas de la planta a lo largo del ensayo………………………..71
Gráfica 21: Número de brotes de la planta……………………………………………...71
Gráfica 22: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del
ensayo……………………………………………………………………………............72
Gráfica 23: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del
ensayo……………………………………………………………………………............73
Gráfica 24: Desarrollo de la longitud del entrenudo a lo largo del ensayo……………..74
Gráfica 25: Valores de luminosidad del color según las tablas Munsell………………..75
Gráfica 26: Valores de saturación del color según las tablas Munsell………….............75
8 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 27: Pesos frescos de los tallos, raíces y hojas de las plantas…………………...76
Gráfica 28: Pesos secos de los tallos, raíces y hojas de las plantas…………………......77
Gráfica 29: Área foliar media de la planta al final del ensayo………………….............78
9 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Índice de tablas
Tabla 1: Número de riegos durante el ensayo…………………………………….…….42
Tabla 2: Datos de análisis de agua y solución ideal para el cultivo…………….............44
Tabla 3: Características principales de los fertilizantes empleados…………….............44
Tabla 4: pH y CE de las soluciones nutritivas empleadas. ……………………….…….45
Tabla 5. Temperatura y humedad relativa media………………………………….……48
Tabla 6. Radiación global y del cultivo en cada mes…………………………………....48
10 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Índice de imágenes
Imagen 1: Petunia violacea (MacArthur y Park, 1865)……………………………...….15
Imagen 2: Alternaria (Fuente: Universidad Politécnica Estatal de California en San Luis
Obispo)…………………………………………………………………………………..22
Imagen 3: Presencia de Botrytis cinérea sobre flor de petunia (Fuente: Marin Máster
Gardeners)………………………………………………………………………………..22
Imagen 4: Damping-off (Fuente: Universidad Estatal de Carolina del Norte)….............22
Imagen 5: Oídio sobre plantas de petunia (Fuente: Instituto Politécnico de Virginia y
Universidad Estatal)……………………………………………………………………...23
Imagen 6: Rhizoctonia causando pudrición de plántulas de petunia (Fuente: Nursery
Production Plant Health & Biosecurity Project) ………………………………………...23
Imagen 7: Larva de lepidóptero (Fuente: Hogarmanía)………………………...............24
Imagen 8: Mosca blanca (Fuente: Farmagro)…………………………………………...24
Imagen 9: Minas y túneles en las hojas. (Fuente: Syngenta)…………………………....25
Imagen 10: Pulgón verde. (Fuente: Universidad de California)………………………...25
Imagen 11: Síntomás y presencia de trips. (Fuente: Universidad de
California)……………………………………...………………………………...………25
Imagen 12: Sistema abierto y sistemas cerrados: placa delgada,
tubular inclinado y continuo horizontal (Fuente: Bitog et al., 2009)………….………...27
Imagen 13: Cronograma diario de realización del TFG ………………………………..34
Imagen 14: Localización del invernadero (Fuente: Google Earth)……………………..37
Imagen 15: Mesa de cultivo utilizada en el invernadero………………………………..37
Imagen 16: Panel controlador climático y de fertirriego…………………...…………...38
Imagen 17: Cubierta del invernadero con sistema de nebulización…………...………..38
Imagen 18: Ventilador…………………………………………………………………..38
Imagen 19: Ventana lateral ……………………………………………………..............39
Imagen 20: Distribución del invernadero……………………………………….............39
Imagen 21: Sistema de fertirriego…………………………………………...….............40
Imagen 22: Emisores de riego ……………………………………………………….…40
Imagen 23: Plántulas de petunia……………………………………………………..….41
Imagen 24: Paso para la elaboración del sustrato…………………………...………..…42
Imagen 25: Aplicación “Microtech Ferro”………………………………….………..…43
Imagen 26: Pesado del nitrato magnésico hexahidratado……………………..…...……43
Imagen 27: Hoja afectada por trips…………………………………………...………....44
11 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 28: Producto de Arthrospira (fuente: Biorizon)………………………..............45
Imagen 29: Hidrolizados de microalgas y materiales de laboratorio para la elaboración
de los tratamientos………………………………………………...……………….…….46
Imagen 30: Hobo Shuttle …………………………………………………………….....48
Imagen 31: Estufa ubicada en el laboratorio 2.11……………………………...….……50
Imagen 32: Balanza de precisión usada para la toma de datos de pesos secos de raíz,
tallo y hojas de las muestras, localizadas en el laboratorio 0.81………….......................50
Imagen 33: Picado de las muestras de hoja con un molinillo de café…………….…….50
Imagen 34: Plantas de petunia en los distintos tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de
agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g
L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS
m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar
semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal, CE 3,0
dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-
1…………………….…………………………………………………………………….55
Imagen 35: Plantas de los distintos tratamientos: : C - aplicación foliar de agua
semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE
2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5
- aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 -
aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0
dS m-1
. …………………………………………………………………………………...70
Memoria descriptiva
13 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
1. Memoria
1.1. Interés y objetivos
La industria de las plantas de temporada tiene cada día más importancia. Las causas
fundamentales de este incremento han sido el cambio de estilo de vida, el desarrollo de
técnicas de semilleros mecanizadas con un control eficaz de las condiciones ambientales y la
obtención de nuevas variedades para planta en maceta, de gran calidad y adaptación a
distintos ambientes.
En el 2018, se produjo un aumento de exportación de flores y plantas de interés ornamental en
España con respecto a años anteriores, siendo Andalucía la comunidad que mayor cantidad de
plantas vivas exporto a destinos como Francia; Países Bajos, Alemania, Portugal e Italia,
además también se produjo un aumento del 3% en importación de plantas y flores (Fepex,
2019). La petunia es hoy día una de las plantas más importantes a nivel ornamental, debido a
que es una planta fácil de cultivar y tiene una amplia gama de colores y formas en sus flores
(Ando, 2001; Donboklang et al., 2016). Es una planta herbácea que tiene un amplio periodo
de floración en sustratos o suelos con buen drenaje y con suficiente humedad, además es una
especie bastante tolerante a la salinidad (Fornes et al., 2007). Petunia es una planta perenne,
pero es cultivada generalmente como planta anual (Donboklang et al., 2016).
El consumo excesivo de agua, ha provocado el uso de aguas residuales en riego (Skaggs et
al., 2006) y problemas de intrusión marina que afectan a los acuíferos cercarnos a la costa
(Lerner, 2001), estos hechos han generado la necesidad de desarrollar nuevos sistemas de
gestión del agua tanto a nivel agrícola como de consumo humano, innovando en prácticas de
riego más sostenibles (Skaggs et al., 2006). En las zonas mediterráneas, debido a la intrusión
del agua del mar en los acuíferos, que provoca el uso de aguas salobres para riego de los
cultivos, se está produciendo efectos graves de estrés salino, (Rana y Katerji, 2000). Es por lo
tanto fundamental estudiar la tolerancia o resistencia de las plantas a la salinidad (Villarino y
Mattson, 2011).
Un problema grave de la salinidad es que afecta limitando la productividad de los cultivos
provocando consecuencias sobre la germinación, el vigor y el rendimiento de la planta. Este
problema se acentúa debido al uso en muchas áreas de aguas salobres (Munns y Tester, 2008).
Este factor afecta a las plantas de varias formas, provocando estrés hídrico, alteraciones en los
procesos metabólicos, trastornos nutricionales de la planta, ya sea por deficiencia o toxicidad
y alterando las células, provocando desorganización, expansión celular y disminución de la
división celular (Hasegawa et al., 2000; Munns, 2002; Zhu, 2007). Otras consecuencias de la
salinidad es la alteración de los procesos de fotosíntesis, síntesis de proteínas y energía
además de afectar a los metabolismos lipídicos, también produce disminución del
crecimiento, desarrollo y supervivencia del cultivo (Parida y Das, 2005).
En la actualidad la búsqueda de estrategias sostenibles con altos rendimientos y menos daños
ambientales en los cultivos, implican disminuir o sustituir el uso de insumos químicos,
fertilizantes y pesticidas, por sustancias naturales o biológicas. Por ello, el desarrollo de
14 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
sustancias ecológicas capaces de provocar el crecimiento de las plantas, llamadas
bioestimulantes, están siendo investigadas con gran atención e importancia (El Arroussi et al.,
2016). En este sentido, las microalgas representan una alternativa potencial sostenible para la
mejora y la protección de los cultivos agrícolas (García-González y Sommerfeld, 2016) Los
componentes bioactivos presentes en los extractos de algas marinas pueden mejorar la
respuesta de las plantas al estrés (Mancuso et al., 2006). El uso de estos compuestos como
bioestimulantes y biofertilizantes ya se encuentran disponibles a nivel comercial, como
productos prometedores e innovadores con el fin de sustentar una agricultura sostenible y
ecología sin tener pérdida de rendimiento en los cultivos (Coppens et al., 2015). En este
sentido, ensayos realizados en césped (Poa pratensisL. cv. Plush) muestra que bajo
condiciones de salinidad, el uso de bioestimulantes puede mejorar el crecimiento tanto de
raíces como de la parte aérea (Nabati et al., 1994). Uno de los mecanismos que se activan es
la reducción significativa de la acumulación de iones Na+ en las plantas (Yan, 1993). Los
extractos de las microalgas, D.salina y Phaeodactylumtricornutum, afectan positivamente al
crecimiento de la raíz en pimiento durante la germinación en condiciones salinas (de hasta 50
mM de NaCl) y reducen de forma significativa la producción de radicales superóxido, así
como la peroxidación lipídica, mientras que se incrementan las enzimas antioxidantes
(Guzmán -Murillo et al., 2013). Además, se demostró que los extractos de algas contienen
fitohormonas, como pueden ser citoquininas, auxinas, etileno, ácido abscísico y auxinas que
afectan al desarrollo y el crecimiento de las plantas (Karthikeyan et al., 2007; Stirk et al.,
2013).
Hoy día, aun se requieren proyectos de carácter agronómico, bioquímico, molecular y
fisiológico para comprender y entender el efecto de los cambios producidos por los
bioestimulantes y biofertilizantes sobre los cultivos, y de esta manera permitir una detallada
descripción para mejorar las dosis, los formulados y el uso con el fin de ayudar a los
agricultores y a las industrias agroquímicas (Ronga et al., 2019). Por ello el objetivo principal
de este ensayo ha sido estudiar el efecto protector de la aplicación foliar de los extractos de
microalgas frente al empleo de aguas de mala calidad (alta salinidad), teniendo en cuenta los
diferentes aspectos en la producción, como son la biomasa y la calidad de la planta. Además,
como objetivo secundario ha sido estudiado como optimizar la dosis y la frecuencia de la
aplicación de microalgas en el cultivo (Petunia x hybrida), y valorar el efecto de la
aplicación conjunta de dos microalgas.
1.2. Descripción Petunia
1.2.1. Comercialización
En el 2018, la exportación de plantas ornamentales y flores creció un total de un 9% más que
en el año anterior, generando un total de 247,7 millones de euros hasta el mes de junio de ese
año. La Comunidad de Valencia y Andalucía fueron las dos principales exportadores del
2018, siendo la provincia de Almería la mayor productora de plantas (Fepex, 2019).
La comercialización de petunia ocurre en el periodo de primavera – verano. En el mercado en
plantas en maceta tienen que superar 10 flores abiertas y plantas colgantes de 100 flores como
15 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
mínimo. Se cultivan en macetas de 9 cm o alveolos cuando se destinan a plantación a jardines
y de 11cm para comercialización (Nuez y Llácer, 2001; Espinoza et al., 2011).
1.2.2. Taxonomía y origen
Petunia es una planta ornamental originaria de América del Sur, en concreto su localización
geográfica se centra en regiones de climás templados y subtropicales de Uruguay, Paraguay,
Argentina, Brasil y Bolivia.
Durante el siglo XIX, se incluyeron en el mismo grupo taxonómico al tabaco (Nicotiana
tabacum) y a la petunia (Petunia nyctaginiflora) y no fueron separadas hasta que estudios
filogenéticos presentaron diferencias entre ambas especies (Stehman et al., 2009).
La inmensa mayoría de los cultivos de petunia son de Petunia hybrida, que es un híbrido
obtenido por primera vez mediante hibridación en 1834 por Atkins de Northampton, en un
vivero de Gran Bretaña y se extendió rápidamente a los jardines europeos (Sink, 1984). Hoy
en día se cultiva en todo el mundo y es una de las plantas de temporada más importantes a
nivel mundial. Estudios, sobre los genes en Petunia hybrida han demostrado la presencia de
especies ancestrales P.axillaris y P.violacea, aunque aparecen variaciones genéticas debido a
la gran cantidad de cultivares de petunia que han dado lugar a cambio genético y mutaciones
(Wisjman, 1982).
Imagen 1: Petunia violacea (MacArthur y Park, 1865)
16 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Clasificación taxonómica:
Reino: Plantae
División: Magnoliophyta
Clase: Magnoliopsida
Orden: Solanales
Familia: Solanaceae
Especie: Petunia
Género: Petunia hybrida
Las petunias, en cuanto a sus características botánicas, se tratan de plantas herbáceas o
arbustivas, que pueden ser de ciclo anual o perenne, no poseen espinas, tienen hojas enteras y
simples, en general sésiles. Presentan inflorescencias monocasial y flores que pueden dar
lugar a fruto en cápsula. Las inflorescencias son racimos de pequeño tamaño formadas por un
par de brácteas, las flores tiene un cáliz tubular o acampanado formado por cinco lóbulos bien
definidos, la corola tiene forma de embudo o campana y al igual que el cáliz esta formado por
cinco lóbulos. El androceo de la flor está formado por cinco estambres, cuyos filamentos
surgen por debajo de la mitad del tubo de la corola y las anteras pueden ser de color amarillo,
violeta o azulado. El fruto, que contiene pequeñas semillas subglobosas, tiene forma cónica y
dehiscente (Sánchez de Lorenzo, 2001; Stehmann et al., 2009; Gallego et al., 2012).
1.2.3. Morfología
1.2.3.1. Raíz
El sistema radicular de la planta depende del método de propagación, en el caso de ser por
origen seminal se caracterizan por tener una raíz pivotante de las que surgen númerosas raíces
secundarias y terciarias. La petunia presenta un gran número de ramificaciones para una
buena absorción de nutrientes y un buen anclaje al suelo o sustrato, su sistema radical es
robusto y fibroso (Gutiérrez, 2008).
En cuanto a la propagación asexual, el sistema radicular es fasciculado teniendo un mayor
número de raíces secundarias y terciarias que mediante propagación sexual.
1.2.3.2. Tallo
El tallo es herbáceo, alcanzando una longitud aproximada de 25 a 40 centímetros en función
de la variedad, aunque existen especies con mayor longitud (Brickell, 1996).
1.2.3.3. Hojas
Las hojas que constituyen a la planta son alargadas, redondas, ovaladas o elepticas, raramente
lineales, son víscidas y presentan ligera vellosidad. Tienen un color verde franco y oscuro
(Vidalie, 1992; Stehmann et al., 2009).
17 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Sánchez de Lorenzo, (2001) en su estudio sobre petunia argumenta que las hojas son enteras,
simples y por lo general sésiles.
1.2.3.4. Flores
Las flores de petunia son características por su forma atrompetada, cuya composición de flor
pueden ser simple o compuesta, presentando los bordes del pétalo de forma ondulada o lisa,
existen de diversos colores e incluso en una misma flor puede haber distintos. El tamaño
promedio de la flor se encuentra entre los ocho y diez centímetros de diámetro (Gutiérrez,
2008), existiendo especies con mayor diámetro como las petunias grandifloras y de menor
tamaño como petunias multifloras.
Sánchez de Lorenzo (2001) y Gallego et al. (2012), en sus estudios observaron que las flores
poseen un cáliz tubular o acampanado (9 -18 mm) compuesto por cinco lóbulos y poseen una
corola infundibuliforme (42 – 60 mm) compuesta también por cinco lóbulos pequeños y
anchos. Las flores presentan cinco estambres desiguales y un estigma bilobado.
1.2.4. Especies y variedades
Los distintos híbridos de petunia se pueden dividir según la forma de crecimiento de la planta
y en función de su flor: multiflora, grandiflora, colgantes o rastreras y milliflora (Kessler,
1998).
Petunias multifloras se caracterizan por tener flores pequeñas, pero con un gran número de
flores, con diámetro que oscila entre 3,5 a 5 cm. Además, es una planta resistente a
condiciones climáticas adversas. Generalmente son plantas compactas que se desarrollan
rápidamente y cuya gama de colores es muy amplia, existen tanto plantas con floración
simple como compuesta. Las más comercializadas son ‘Carpet’, ‘Celebrity’, ‘Horizon’,
‘Primetime’, Madness’, ‘Merlin’, ‘Hurrah’ y ‘Summertime Blues’ (Kessler, 1998; Anderson,
2006; Espinoza et al., 2011).
Las petunias grandifloras tienen grandes flores con un diámetro entre 9 y 13 cm y muy
llamativas, existen muchos colores de flor en esta especie aunque menos que en las
multifloras, además presentan flores con bordes lisos u ondulados. Mediante diversos estudios
se han obtenido nuevas plantas que presentan pétalos con venas de diversos colores. Las más
comercializadas son ‘Aladdin’, ‘California Gir’, ‘Cloud’, ‘Daddy’, ‘Dream’, ‘Eagle’,
‘Falcon’, ‘Frost’, ‘Hulahoop’, ‘Picotee’, ‘Prisco Sunshine’, ‘Store’, ‘Supercascade’,
‘Supermagic’, ‘Titan’ , ‘Ultra’, ‘Yellow Magic’, ‘Flash’ y ‘ EZ Rider’ (Kessler, 1998;
Anderson, 2006; Espinoza et al., 2011). Esta variedad es la más demanda por el consumidor
y, por tanto, las más vendidas.
Las petunias rastreras o colgantes, tienen origen más tropical que las demás especies, son
plantas muy vigorosas, rastreras, cubriendo la superficie del suelo y presentan buenas
características como planta colgante. Son plantas resistentes al calor y al sol. Las variedades
más usadas son: ‘Wave’, ‘Avalanche’, ‘Cascadia’, ‘Easy wave’, ‘Kahuna’, ‘Rambling’,
‘Trailblazer’, ‘Supertunia’, ‘Sanguna’, ‘Potunia’, ‘Surfinia’ y ‘Tidal Wave’ (Kessler, 1998;
Anderson, 2006; Espinoza et al., 2011).
18 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Para terminar la clasificación, las petunias millifloras fueron creadas a partir de mutaciones
genéticas de Petunia hybrida, dando lugar a una especie de planta en miniatura, se
caracterizan por florecer rápido y ser plantas compactas. Son usadas igual que las anteriores
como plantas colgantes. Las variedades más cultivadas son: ‘Fantasy’ y ‘Picobella’ (Kessler,
1998; Anderson, 2006; Espinoza et al., 2011).
Espinoza et al., (2011), dividen además otra división más, que agrupa a las especies con flores
dobles, cuyas variedades más comercializadas son ‘Madness’ y ‘Ball all’.
1.2.5. Manejo del cultivo
La producción de plantas madre es fundamental para cualquier forma de reproducción, y sea
sexual o asexual. En el cultivo de plantas con el fin de reproducción vegetativa se distinguen
dos fases: la primera fase de preparación de planta madre para obtención de material vegetal y
la segunda, trasplante de esquejes para la obtención de plantas comerciales, en el caso de
petunia, la etapa de cultivo de plantas será en el periodo de septiembre-febrero (Jiménez y
Caballero, 1990). Los esquejes de petunia forman el callo típico de esta propagación entre 5 a
7 días y comienzan a enraizar a de los 9 a 14 días (Dole y Gibson, 2006).
El cultivo de petunia, según el destino en el mercado, se iniciará de noviembre a enero si es
para planta colgante, pero si su destino es producir planta de maceta se cultiva de enero a
marzo. El éxito del cultivo dependerá de la calidad del material vegetal y del cuidado en el
trascurso de la producción. Esta planta ornamental llega al consumidor final en un periodo
que transcurre desde marzo a junio (Roig, 2006). Es decir, el ciclo de cultivo de petunia se
lleva a cabo entre un tiempo aproximado de 10 a 14 semanas (Nuez y Llácer, 2001).
1.2.5.1. Sustrato
Para el desarrollo adecuado de las plántulas hay que tener en cuenta la utilización de un
sustrato con buenas características para la realización del cultivo, que se puede obtener
mediante la mezcla de dos o más materiales, mejorando así, el volumen de poros del sustrato,
la capacidad de retención de agua, la disponibilidad de nutrientes y otras características
importantes del medio en el que se desarrolla el cultivo (Jiménez y Caballero, 1990; Espinoza
et al., 2011). Uno de los sustratos más empleados en es el compuesto por 80% de turba rubia
y un 20% de perlita, mejorando la aireación y drenaje, evitando encharcamientos, que podrían
provocar pudrición de raíces. Además, esta mezcla tiene buena retención de agua y una
estructura uniforme para el cultivo. Es de gran importancia que el medio de cultivo esté
exento de la presencia de patógenos.
1.2.5.2. Trasplante
La calidad del esqueje o plántula van a ser determinantes en el cultivo, deben de ser plantados
o trasplantados lo más brevemente posible en un medio ideal para el desarrollo de raíces. En
el caso de plántulas, es recomendable tener el sustrato preparado con contenido de humedad
para intentar minimizar el estrés causado en la adaptación al medio y los contenedores usados
deben de estar debidamente desinfectados y en su defecto usar material nuevo. El cepellón de
la planta a de quedar al ras del sustrato, mejorando la ramificación radicular e iniciándose de
esta forma rápidamente el crecimiento vegetativo.
19 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Los primeros riegos deben ser abundantes y al ser posible localizarse en la zona próxima al
cepellón de la planta, para mejorar las condiciones de desarrollo. Posteriormente la forma de
riego es por goteo mejorando el aporte de nutrientes y riegos con mayor uniformidad (Roig,
2006).
1.2.5.3. Pinzamiento de la planta
El pinzamiento de la planta es una práctica cultural que consiste en quitar la dominancia
apical de forma mecánica, es aconsejable cortar la planta a unos 3 cm de altura, con esta
práctica se pretende obtener brotación secundaria, en ocasiones es necesario realizar otro
pinzamiento para obtener brotes terciarios y obtener plantas con aspecto más compacto. Esta
técnica presenta el inconveniente de que la planta sufre un estrés y además al producir heridas
en la planta se aumenta la probabilidad de entrada de virus y otros patógenos. En el caso de
ser necesaria esta práctica debe realizarse a la semana de realizar el trasplante. Espinoza et al.,
(2011) recomienda realizar el despunte de las plantas cuando tienen entre 7 y 10, para así
fomentar la ramificación.
En el caso de cultivos tardíos es necesario el uso de productos enanizantes en vez de realizar
el pinzamiento. Cuando la planta llega al inicio de la floración, no es necesaria la aplicación
de productos enanizantes ni de pinzamientos, ya que la planta se vuelve autoramificante
(Roig, 2006)
Algunos agricultores intentan disminuir el crecimiento de las plantas reduciendo el aporte de
nutrientes o de agua, maximizando la intensidad luminosa, controlando el fotoperiodo, usando
filtros de luz, provocando estrés mecánico o disminuyendo la temperatura. Además, el cultivo
de petunia responde con buenas características cuando se aplica el regulador de crecimiento
B-Nine (Ball, 1991).
Uno de los métodos más usados es “Cool Morning”, esta práctica consiste en bajar la
temperatura a 8ºC durante una hora y así reducir la necesidad de aplicar retardantes del
crecimiento. Esta técnica puede ser usada cuando los tallos alcanzan una longitud de 3
centímetros (Selecta, 2019)
Currey y López, (2013), demostraron que el uso de lámparas LED en comparación con
lámparas de sodio en la producción de esquejes, permite obtener plantas más pequeñas.
1.2.5.4. Riego y fertilización
La utilización masiva del agua y la aparición de problemas ambientales como la
contaminación de aguas por nitratos, son problemas que preocupan a la población, la
utilización de sistemas de riego cerrado pueden disminuir los problemas anteriormente
mencionados (Selecta, 2015).
En lo referente a las diversas formas de riego para el cultivo de petunia debe diferenciarse
entre dos fases distintas del cultivo, la que ocurre antes y la que ocurre después del espaciado
entre plantas. En la primera etapa, el riego pueden ser de forma aérea y en la segunda, el riego
debe ser por goteo, inmersión, etc, siempre con métodos que no dejen agua sobre la superficie
foliar o floral y así evitar manchas, que provoquen pérdida de valor comercial (Selecta, 2015).
20 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
En casos de aplicación foliar de los tratamientos es recomendable el usó de sistema de riego
por goteo, permitiendo un riego más uniforme, corto y preciso. El sustrato y el agua son
elementos importantes, que deben ser analizados y estudiados con anterioridad al cultivo,
determinando el contenido en nutrientes, para calcular el tipo y la cantidad de abono a utilizar
en la fertilización. Otro factor importante en el cultivo es la calidad y el contenido de
nutrientes de los esquejes.
Los esquejes deben tener unos tratamientos que permitan que sin tener raíces, la planta tenga
reservas de nutrientes necesarios para comenzar a enraizar (Santos et al., 2011).
La nutrición de la planta a partir de la fertilización es un parámetro que determinará la calidad
comercial y el valor ornamental de las plantas que son cultivadas en maceta. Durante el ciclo
vegetativo las plantas acumulan los nutrientes en los tallos y hojas de las plantas, pero cuando
llega el periodo de floración algunos elementos se trasladan de lugar. Las necesidades de
nutrientes en el cultivo de petunia pueden estimarse de forma indirecta por la acumulación de
materia seca, ya que se ha demostrado una relación positiva entre los nutrientes y la cantidad
de materia seca existente en la planta.
Frett et al. (1985) incluyó a petunia dentro de las especies con grandes requerimientos de
nitrógeno. Por ello, las dosis nutritivas son calculadas en función de los requerimientos de
nitrógeno del cultivo de a lo largo de su ciclo (Röber y Schacht, 2008).
Hay que tener en cuenta que petunia es una planta exigente en fertilización, no debe de estar
más de dos semanas sin fertilizar después de la siembra. Además, es importante la
fertilización de hierro ya que el cultivo de petunia exige este elemento para su buen
desarrollo. Una fertilización completa en petunia es de 18 – 10 - 18 – 2 (Selecta, 2019)
Zhang et al. (2012) recomendó una fertilización para las distintas etapas del cultivo de
petunia: 40% N – 80%P – 60%K como fertilizante fundamental, 30%N – 20%P – 40%K en la
etapa de floración y en el periodo de brotación un aporte del 30%N.
Durante el ciclo de cultivo es importante la aplicación de riegos con quelato de hierro, ya que
petunia es una planta ornamental que tiene deficiencias de este elemento (Selecta, 2015).
El uso de fertilizantes de liberación lenta puede tener problemas, ya que el aumento de
temperatura puede acelerar o llevar a una descontrolada liberación de nutrientes (Selecta,
2015). En este sentido, Everris (2014) explico la existencia en la actualidad de abonos con
formulados que permiten una menor influencia de la temperatura sobre la liberación y que dan
lugar a un buen desarrollo de la planta.
En cuento a la conductividad eléctrica, Kang y Van Lersel (2009) sugieren que fertilizar con
1,24 dSm-1
de CE permite un buen manejo y crecimiento de petunia.
21 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
1.2.6. Condiciones ambientales
1.2.6.1. Luz
Petunia es una planta que requiere exposición soleada, con requerimientos de fotoperiodo
superiores a 13 horas, pueden producirse plantas compactas y de buena calidad pero sin
floración cuando las plantas son expuestas a la luz con tan solo 9 horas (Ball, 1991). El uso de
sombreo solo se recomienda cuando se aplican tratamientos químicos o retardantes del
crecimiento (Selecta, 2019).
Aplicaciones de luz roja en el periodo nocturno promueve la floración de plantas de día largo
mientras que la luz azul no afecta al crecimiento o desarrollo de petunia (Meng y Runkle,
2015).
1.2.6.2. Temperatura
Petunia es una planta de origen americano con climatología templada-subtropical, adaptada al
clima mediterráneo, caracterizado por primaveras y otoños suaves, inviernos con pocas
heladas y veranos secos con altas temperaturas. (Roig, 2006)
Temperaturas durante el día de entre 21 a 24ºC y nocturnas entre 16-18ºC producen plantas
con buena calidad ornamental. Las temperaturas extremas soportas por esta planta tienen un
máximo de 30ºC y mínima de 1ºC, produciéndose disminución del desarrollo de la planta
(Nuez y Llácer, 2001).
Selecta, (2015) recomienda ventilar el invernadero cuando llega a los 22ºC manteniendo una
temperatura de 18ºC las tres primeras semanas de cultivo y después mantener el cultivo a
14ºC y ventilar con temperaturas entre 16 y 18ºC.
1.2.6.3. Humedad Relativa
Durante el cultivo debe evitarse una humedad relativa excesiva ya que puede provocar la
aparición de enfermedades, dificultar la absorción de los nutrientes, producir crecimientos
deformes, disminución de la transpiración del cultivo y crea un gran riego de podredumbre.
Para disminuir la humedad es recomendable una ventilación automática, por ventiladores o
manual, evitándose la aparición de condensación de agua sobre la superficie foliar o floral del
cultivo (Roig, 2006).
En el periodo de verano se recomienda asperjar agua a las hojas pero evitando regar
directamente a las flores y así tener cuidado de que no haiga presencia de enfermedades
(Nuez y Llácer, 2001).
1.2.7. Enfermedades, fisiopatías y plagas del cultivo de petunia
1.2.7.1. Enfermedades
Alternaria spp.
La sintomatología aparece en hojas y tallos, en un comienzo son pequeñas manchas de
color púrpura y van evolucionando provocando hundidas en el centro y bordes en las
manchas de color violáceo (Dreistadt, 2001).
22 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 2: Alternaria (Fuente: Universidad Politécnica Estatal de California en San
Luis Obispo)
Botrytis cinérea
Aparece en condiciones de humedad elevada, ventilación escasa y temporal cálida. La
sintomatología aparece tanto en hojas, tallo y flores con una textura de moho de color
gris y provoca atrofia en los tejidos (Dreistadt, 2001; Espinoza et al., 2011).
Imagen 3: Presencia de Botrytis cinérea sobre flor de petunia (Fuente: Marin Máster
Gardeners)
Damping-off
Es una enfermedad es caudada por diversos agentes: Alternaria, Botrytis, Pythium,
Rhizoctonia, Fusarium y en ocasiones Sclerotinia. Afecta principalmente en las etapas
iniciales de cultivo, favoreciendo su aparición en situaciones de humedad
descontrolada o cuando el material usado esta contaminado (Dreistadt, 2001).
Imagen 4: Damping-off (Fuente: Universidad Estatal de Carolina del Norte).
23 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Oidium spp.
Son un grupo fúngico que aparecen como una estructura fibrosa sobre las hojas y en
ocasiones sobre otros tejidos. Se ve favorecido su desarrollo en caso de lluvias, alta
humedad, calor o/y riego por aspersión (Dreistadt, 2001; Levente et al., 2008).
Imagen 5: Oídio sobre plantas de petunia (Fuente: Instituto Politécnico de Virginia y
Universidad Estatal)
Rhizctonia solani
Esta enfermedad causa podredumbre de la raíz, plántulas o corona y marchitez del
tallo y las hojas (Botanic, 2001).
Imagen 6: Rhizoctonia causando pudrición de plántulas de petunia (Fuente: Nursery
Production Plant Health & Biosecurity Project)
Virosis
Las plantas de petunia son muy susceptibles a diversos virus, por lo que es esencial el uso
de material desinfectado, ya se trate de sustrato, herramientas, esquejes o agua de riego
(Espinoza et al., 2011).
En 2000, un estudio realizado por Albouy y Devergne, demostraron la sensibilidad del
cultivo de petunia al virus del mosaico del tabaco (TMV) y al virus del mosaico del
pepino (CMV).
1.2.7.2. Fisiopatías
En las plantas ocurren desórdenes fisiológicos producidos por distintos parámetros como el
exceso de agua, produciendo plantas cloróticas, por eso es de gran importancia el correcto
aporte del riego (Klingaman et al., 1986).
24 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
En el cultivo de petunia es de gran importancia las aplicaciones férricas, ya que es muy usual
la deficiencia de este elemento debido a sus grandes requerimientos por la planta. La carencia
de nitrógeno se manifiesta en coloración pálida de las hojas jóvenes, que dan lugar a clorosis
e incluso en el caso más extremo a necrosis del tejido (Selecta, 2015).
1.2.7.3. Plagas
Lepidópteros
Incluye a las mariposas y palomillas que ovipositan en el envés de las hojas. Al
eclosionar, las larva provocan daños sobre las flores, frutos, brotes y hojas (Daughtrey
et al., 2001; Dreistadt, 2001).
Imagen 7: Larva de lepidóptero (Fuente: Hogarmanía)
Mosca blanca
En los inverndaros de plantas ornamentales la especie más común es Trialeurodes
vaporariorum. Estos insectos provocan tanto daños directos como indirectos sobres
las plantas, provocando el debilitamiento de la planta y transmisión de virus, además
de secretar melaza excretada por las ninfas que provoca la instalación de parásitos
fúngicos.
Imagen 8: Mosca blanca (Fuente: Farmagro)
Mosca minadora
Son moscas pequeñas cuyas oviposiciones producen daños en la hoja y en algunos
casos en los pétalos de la flor. Las larvas al eclosionar se alimentan del tejido vegetal,
creando minas o túneles en el interior (Daughtrey et al., 2001; Dreistadt, 2001).
25 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 9: Minas y túneles en las hojas. (Fuente: Syngenta)
Afidios
Son parásitos de pequeño tamaño que se alimentan de la savia de las plantas,
principalmente del tallo, hojas o raíces (Botanic, 2001).
Imagen 10: Pulgón verde. (Fuente: Universidad de California)
Trips
Frankliniella occidentalis, es un insecto que provoca daños directos, sobre hojas,
pétalos, flores, yemas y/o botones florales y de forma indirecta puede provocar la
transmisión del virus del bronceado del tomate y daños sobre el tejido (Dreistadt et
al.,2001).
Imagen 11: Síntomás y presencia de trips. (Fuente: Universidad de California)
26 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
1.3. Descripción general de microalgas
1.3.1. Introducción.
En la actualidad uno de los problemas agrícolas más importantes es satisfacer la demanda de
alimentos debido al creciente incremento de la población mundial, obteniendo mayor
producción y sostenibilidad del medio (Godfray et al., 2010;Odegard y Van der Voet, 2014).
Por ello, los agricultores e investigadores intentan aumentar la producción de alimentos
aplicando tecnología y nuevos productos innovadores capaces de incrementar el rendimiento
y la calidad de los cultivos, mientras se reduce el impacto sobre el cambio climático (Tilman
et al., 2002; Foley et al., 2011; Dias et al., 2016).
El gran número de especies existentes de microalgas, podría proporcionar una amplia campo
de usos, en concreto es posible seleccionar cepas que tienen diferentes composiciones
bioquímicas y se desarrollan en ambientes diferentes. Los biólogos clasifican a las algas en
cuatro categorías en función del tamaño y de las características morfologías: coloniales,
filamentosas, unicelulares y algas multicelulares, siguiendo la clasificación las algas se
dividen en: Macroalgas, que son organismos macroscópicas y multicelulares; y en
Microalgas, organismos microscópicos que pueden ser unicelulares o filamentosas
(Kurniawati et al., 2014; Nabti et al., 2017).
Las microalgas son organismos fotosintéticos capaces de desarrollarse en agua salada o dulce,
y también en aguas residuales, permitiendo la reducción del costo de producción
(Priyadarshani y Rath, 2012; Acien et al., 2016).
A nivel comercial y de producción, las especies de microalgas dominantes son Arthospira sp
y Chlorella sp (Schmitz et al., 2012). Las microalgas son organismos capaces de producir
biomasa que puede ser utilizada en diversos sectores como: combustible, producto
farmacéutico, alimento, pienso y cultivos (Metting et al., 1990). Respecto a su aplicación en
la producción de cultivos, es conocido que las microalgas tienen un alto contenido de
macronutrientes y micronutrientes esenciales en el crecimiento y desarrollo de las plantas, por
ello, se ha demostrado que tienen potencial como biofertilizante y bioestimulante (Shaaban,
2001; Khan et al., 2009; García-González y Sommerfeld, 2016).
Los bioestimulantes y los biofertilizantes obtenidos a partir de las microalgas se consideran
ecológicos y rentables, siendo una alternativa a productos de origen sintético, como
fitosanitarios, fertilizantes o reguladores del crecimiento (Zhang y Schmidt, 1997). Los
bioestimulantes intervienen sobre la fisiología de la planta mediante diferentes vías,
mejorando el crecimiento, los rendimientos, la absorción de nutrientes, la calidad, la vida útil
del producto y la tolerancia al estrés abiótico (Du Jardin, 2015; Rouphael y Colla, 2018).
Actualmente, el interés sobre la aplicación de bioestimulantes y biofertilizantes en la
producción de cultivos, principalmente en agricultura ecológica, esta aumentando (Toscano et
al., 2018). Han sido realizados varios estudios para determinar la influencia de la aplicación
de estos productos sobre la respiración celular la síntesis de ácidos nucleicos, la captación de
iones y la fotosíntesis (Crouch y Van Staden, 1993; Blunden et al., 1996; Craigie, 2010).
Además también se sabe que puede mejorar la disponibilidad de nutrientes en el suelo,
27 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
mejorando el crecimiento del cultivo, aumentando la retención de agua, incrementando el
contenido en antioxidantes en la planta, mejorando el metabolismo celular e incrementando la
clorofila de la hoja (Zhang y Schmidt, 1997; Khan et al., 2009).
Los productos de microalgas que pueden ser adecuados para la producción de cultivos
agrícolas se encuentran en gran medida sin conocer, aunque existen gran número de
investigaciones actuales y algunos productos comerciales centrados en la actividad biológica
de los componentes de las microalgas y estudios que apoyan su aplicación como
bioestimulantes y biofertilizantes para el manejo de la producción agrícola y los estrés
abióticos.
1.3.2. Producción de microalgas.
La producción de microalgas es un proceso emergente debido a su gran potencial y cantidad
de oportunidades a nivel mundial (Hultberg et al., 2013). Pueden ser utilizadas en aguas
residuales, recuperación de nutrientes y conservación de agua, además de secuestro de
dióxido de carbono y oxido nitroso, reduciendo así la emisión de gases efecto invernadero
(Brennan y Owende, 2010).
Existen diversos sistemas de producción de biomasa:
Sistemas abiertos, consisten en estanques de 10 a 50 cm de profundidad, que permiten
una correcta iluminación y tienen una rueda para mezclar los gases con el medio
permitiendo la circulación del aire, además al estar expuesto a la atmosfera, permite la
evaporación que regula la temperatura de cultivo (Jiménez, 2003; Radmann y
Reinehr, 2007).
Sistemas cerrados, conocidos comúnmente como fotobioreactor, pueden diseñarse en
diversas configuraciones, por ejemplo, en forma de placas o tubulares. Tienen mayor
volumetría productiva que los sistemas abiertos a causa de tener una mejor captura de
luz y un uso más eficientes de la superficie de cultivo (Pulz, 2001; Richmond, 2004)
Imagen 12: Sistema abierto (a) y sistemas cerrados: placa delgada (b),
tubular inclinado (c) y continuo horizontal (d) (Fuente: Bitog et al., 2009).
28 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
En un principio se ha mostrado que la producción de microalgas tienen un alto costo de
cultivo y para su utilización debería de superar varios problema para ser más viables desde el
punto de vista económico (Brennan y Owende, 2010; Borowitzka, 2013) y de sostenibilidad
ambiental. Para la optimización de la producción teniendo bajos costes, se ha propuesto el uso
de aguas residuales, subproductos agrícolas y fertilizantes de coste bajo y efectivos (Lee,
2001). Una característica importante de las microalgas es la capacidad de absorción de
metales pesados, mediante mecanismos de complejidad y microprecipitación (Kumar et al.,
2015).
Para suplir los gastos de producción de algas Barone et al. (2017) sugirió la coproducción de
plantas y microalgas (Scenedesmus quadricauda o Chlorella vulgaris) mediante un medio de
cultivo en recipientes trasparentes y cubiertos de malla de alambre para fijar la microalga, este
autor obtuvo un aumento de brotes de la planta conforme aumento la biomasa de
Scenedesmus quadricauda. La doble producción del cultivo de planta y microalga podría
sugerir un nuevo enfoque para obtener los productos de forma más viable desde el punto de
vista ecológico y económico.
Existen diversos factores que influyen en el crecimiento y en la composición bioquímica de
las microalgas, como son: los nutrientes, el pH, la conductividad eléctrica y la intensidad
luminosa. También ejerce gran influencia características del medio de cultivo y la fuente de
obtención del nitrógeno, que es fundamental para la composición química y el crecimiento del
microalga (Levasseur et al., 1993).
Un estudio realizado por Coppens et al. (2015), reveló que la producción de biomasa
microalgal como biofertlizante no era económicamente rentable en comparación con los
productos fertilizantes comerciales, pero este estudio no tuvo en cuenta posibles medidas para
abaratar la producción, como por ejemplo, el uso de aguas residuales, de donde las microalgas
podrían extraer nutrientes para incorporarlos a su biomasa y permitir reutilizar el agua.
El establecimiento de coproducciones de cultivos hidropónicos y microalgas, permitiendo el
reciclaje de agua reduciendo los costos (Zhang et al., 2017; Barone et al., 2019).
Por todo ello, la producción de biomasa de microalgas en cultivo de aguas residuales puede
revalorizar los residuos en biofertilizantes innovadores y sostenibles con una gran
oportunidad comercial en el manejo de los cultivos (Coppens et al., 2015).
1.3.3. Extractos de microalgas
Las microalgas producen biomasa, de la cual se pueden obtener diferentes tipos de extractos
que pueden ser usados con fin comercial (Molina-Grima et al., 2003). Uno de los métodos
más usuales para preservar la biomasa es la pasteurización, deshidratación a 70ºC durante 14
horas y molienda y almacenamiento posterior (Shaaban et al., 2010).
En las microalgas, los compuestos activos se encuentren dentro de las paredes celulares o
unidos a diversas estructuras (Craigie, 2010). La liberación de estos compuestos puede ser por
diversos métodos, incluyendo secado, procesamiento criogénico, ruptura celular con métodos
29 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
de alta presión e incluso pueden necesitar el uso de enzimas para ser liberados (Oancea et al.,
2013; Sharma et al., 2014).
Hay varias formas para extraer compuestos de las microalgas: extracciones de microondas y
asistidas por ultrasonidos, extracción presurizada-liquida y extracción liquido-liquido o solido
–liquido (Michalak y Chojnacka, 2014; Michalak et al., 2016). Uno de los métodos más
usados es la homogeneización a altas presiones que causa la ruptura de las células, inducida
por la incidencia de variaciones de presión y forzar al paso por una válvula con cuchillas para
la separación de los estratos y las paredes celulares (Oancea et al., 2013).
1.3.4. Composición química de bioestimulantes y biofertilizantes de microalgas
La composición de biofertilizantes y bioestimulantes son uno de los aspectos más
importantes del uso de las microalgas y el proceso de producción. En este sentido, las
etiquetas de los productos comerciales reflejan información sobre las composiciones,
incluyendo elementos minerales, contenidos de fitohormonas y de aminoácidos (Shaaban.,
2001). Pero en ocasiones la concentración de los compuestos es muy baja y puede estar por
debajo de los umbrales que seria estadísticamente significativos (Toscano et al., 2018).
En la biomasa de las microalgas se ha mostrado que contienen un alto contenido en macro y
microelementos, especialmente de nitrógeno, fósforo y potasio, un ejemplo es Arthrospira sp
que revelo tener 6,70% (N) – 2,47%(P) – 1,14%(K) en materia seca. Además, se ha
determinado que el contenido en calcio de las microalgas es relativamente más bajo en
relación con los demás elementos primarios (Hayashi et al., 1996).
Los extractos de microalgas contienen algunas sustancias que pueden promover el
crecimiento y desarrollo de las plantas como son las citoquininas, las auxinas, betainas,
vitaminas, aminoácidos y poliaminas (Spolaore et al., 2006; Stirk et al., 2013). Estas
sustancias tiene un papel crucial en el crecimiento y desarrollo de la planta, entre otros
pueden mitigar daños causados por estrés abiótico (Kowalczyk et al., 2008) y contienen
polisacáridos que mejoran el crecimiento vegetal (El Arroussi et al., 2016).
1.3.5. Aplicaciones como Bioestimulantes
Los componentes activos de las microalgas poseen sustancias denominadas fitohormonas,
que incluyen auxinas, citoquininas, etileno, giberelinas y acido abscísico (Karthikeyan et al.,
2007; Stirk et al., 2013). Las fitohormonas son moléculas de peuqeño tamaño que actúan
como mensajeros químicos para regular los metabolimos y la actividad de la planta (Tarraf et
al., 2015). Las auxinas están implicadas en el gravitropismo y fototropismo, desarrollo y
crecimiento de raíces. (Woodward, 2005). La citoquinianas afectan al desarrollo del tallo y las
raíces movilización de nutrientes, senescecia de hojas, fin del periodo de latencia en yemas,
germinación y división celular (Haberer y Kieber, 2002). El ácido abscísico establece un
papel esencial en la maduración de las semillas y en las respuestas de las plantas al estrés (Tan
et al., 1997). Las giberelinas afecta a la elongación del tallo, a la germinación y desarrollo de
la semilla y a la expansión foliar y floral (Bose et al., 2013).
El estrés abiótico es uno de los principales problemas en la producción de cultivos. En la
actualidad, tener rendimientos potenciales es difícil debido a la deficiencia del agua, los
30 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
cambios de temperatura, salinización de suelos, etc. (Biancardi et al., 2010; Ronga et al.,
2018).
El uso de bioestimulantes puede generar efectos positivos en el rendimiento de producción
cuando están sometidos a estrés abióticos (Van Oosten et al., 2017). La eficiencia de estos
productos depende del momento de aplicación y de la dosis de tratamiento, ya que puede
tener según la cantidad efectos positivos o negativos sobre el cultivo (Vernieri et al., 2005).
Oancea et al., (2013) determinaron que en plantas de tomate el uso de bioestimulantes mejoro
el desarrollo de la raíz, mayor cantidad y longitud de hoja y un aumento del área foliar en
comparación con el tratamiento control en condiciones de estrés abiótico.
1.3.6. Aplicaciones como biofertilizante
Los productos bioestimulantes muestran efectos intermedios entre fitosanitarios y abonos, y
por ello están regulados por las leyes nacionales (La Torre et al., 2016).
El uso de fertilizantes es una práctica agrícola muy común, el uso de microalgas como
producto de fertilización es considerado orgánico y con gran potencial de prevenir la perdida
de nutrientes debido a la lenta liberación de macroelementos primarios (Coppens et al., 2015;
Mulbry et al., 2007). También, las microalgas son capaces de regenerar el nitrógeno y el
fósforo en aguas residuales incluyendo estos elementos en su biomasa (Coppens et al., 2015;
Schreiber et al., 2018). Priyadarshani y Rath, (2012) determinaron que el uso de Arthrospira
sp podría ser un buen biofertilizante debido a su contenido en compuestos inorgánicos y
orgánicos.
En producción intensiva se puede producir agotamiento de nutrientes, provocando suelos
desfavorables para el cultivo debido a su pH, contenido de sales o carbonato cálcico y el
antagonismo entre los diversos elementos minerales (Shaaban et al., 2008).
Barone et al., (2017) realizaron un estudio sobre la aplicación de C.vulgaris y S.quadricauda
al cultivo de remolacha azucarera (Beta vulgaris L.ssp. vulagris), determinando a nivel
morfológico, raíces de mayor longitud y mayor cantidad. Y a nivel molecular, el uso de
productos con microalgas tenía influencia en los genes involucrados en los procesos
biológicos.
En cuanto a la forma de fertilizar los cultivos mediante microalgas existen dos formas
distintas:
Aplicación al suelo o sustrato, las propiedades beneficiosas de la aplicación de
biomasa de microalga ya ha sido demostrada, ya que los compuestos activos que están
poseen , promueven el crecimiento de los cultivos (Tripathi et al., 2008)
Faheed y Fattah, (2008) demostró que aplicaciones de 2 y 3 g de microalga por kg de
suelo mejoró el peso fresco y seco de las plantas. En este mismo sentido, García-
Gonzalez y Sommerfeld, (2016) estudiaron el efecto como biofertilizante de un
microalga con contenidos de 50 y 100 g por maceta de 28 cm, obteniendo un
incremento en el crecimiento del cultivo, mayor brotación y contenido de flores en
comparación con el tratamiento control.
31 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Aplicación foliar, en la actualidad es conocido que las microalgas permiten recuperar
de forma eficiente los micronutrientes del medio y acumularlo en su biomasa (Tripathi
et al., 2008) y además, también se sabe que la aplicación de micronutrientes al suelo
tiene problemas físicos y químicos, por ello la aplicación foliar es una alternativa para
resolver el inconveniente (Arif et al., 2006). Las aplicaciones de microalgas pueden
suministrar tanto macro como micronutrientes esenciales para las plantas (Shaaban,
2001).
El proyecto realizado por Battacharyya et al., (2015) revelo que los extractos de
microalgas son fácilmente asimilados por los estomas y poros de la cutícula,
mostrándose más efectivos cuando las aplicaciones son realizadas por las mañanas,
momento en el cual los estomas están completamente abiertos. Existen diversos
estudios de aplicación foliar de microalgas sobre cultivos ornamentales y hortícolas
con resultados positivos (Oancea et al., 2013; García-González y Sommerfeld, 2016;
Shalaby y El-Ramady, 2014; Plaza et al., 2018). Además, los extractos de microalgas
contienen enzimas, vitaminas y fitohormonas que ayudan a mejorar la translocación y
asimilación de nutrientes (Shaaban, 2001).
1.4. Competencias integradas en el proyecto técnico-experimental
Las competencias sintetizadas e integradas en el grado de ingeniria agrícola de plan de
estudios de 2015 de la universidad de Almería, incorpora módulos de formación básica y
común, a la vez que módulos de la rama de tecnología específica de hortofruticultura y
jardinería.
E-CB01– Capacidad para la resolución de los problemas matemáticos que puedan plantearse
en la ingeniería. Aptitud para aplicar los conocimientos sobre: álgebra lineal; geometría;
geometría diferencial; cálculo diferencial e integral; ecuaciones diferenciales y en derivadas
parciales; métodos numéricos, algorítmica numérica; estadística y optimización
E-CB06– Conocimientos básicos de geología y morfología del terreno y su aplicación en
problemas relacionados con la ingeniería. Climatología
E-CA02– Capacidad para conocer, comprender y utilizar los principios de: Las bases de la
producción vegetal, los sistemas de producción, de protección y de explotación.
CTH01 – Capacidad para conocer, comprender y utilizar los principios de Tecnología de la
Producción Hortofrutícola: Bases y tecnología de la propagación y producción hortícola,
frutícola y ornamental. Control de calidad de productos hortofrutícolas. Comercialización.
Genética y mejora vegetal.
CTH05 – Capacidad para conocer, comprender y utilizar los principios de Material vegetal:
producción, uso y mantenimiento.
Fases de la realización y cronograma
33 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
2. Fases de la realización y cronograma
2.1. Fases de la realización
El trabajo experimental fue elaborado en las instalaciones de cultivos ornamentales
pertenecientes a la Universidad de Almería, bajo la supervisión de Silvia Jiménez Becker,
profesora de la universidad y Antonio Jesús Pérez Sáez, trabajador de la empresa Biorizon
Biotech.
La empresa suministro los productos de microalgas para la elaboración del ensayo, para
determinar la incidencia del producto sobre el cultivo y los posibles efectos adversos sobre las
plantas de petunia. Además, la importancia de este ensayo se basa en el avance creciente de la
agricultura ecológica y la importancia de un medio de cultivo sostenible, entre otros factores
descritos en la memoria del proyecto.
Debido a la incidencia de los productos químicos de síntesis sobre el medio se esta buscando
la posibilidad del uso de productos orgánicos extraídos de microalgas con el fin de suprimir
los daños causados al medio sin provocar perdida de producción y calidad en los cultivos,
como por ejemplo el cultivo de petunia . La empresa Biorizon Biotech, en la actualidad, ya
comercializa productos obtenidos de microalgas que mejoran el crecimiento y desarrollo de
las plantaciones, por ejemplo el producto comercial Algafert.
2.2. Cronograma
En la siguiente figura se detallan las tareas realizadas diariamente desde la recepción del
cultivo hasta el final del ensayo, describiendo brevemente la actividad realizada y
acompañada de un texto descriptivo de la realización del ensayo.
34 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 13: Cronograma diario de realización del TFG
Antes del comienzo del ensayo experimental se comprobó las condiciones de la instalación
para el cultivo y se realizo una búsqueda de referencias bibliográficas sobre ambos objetivos
llevados a cabo, se examinó la incidencia de la salinidad sobre el cultivo de petunia y las
posibles mejoras con la aplicación de bioestimulantes, a partir de extractos de microalgas.
Además, antes de la recepción del cultivo se preparo la mesa de cultivo y el sustrato con
contenido en humedad para evitar posibles problemas de estrés en el trasplante.
La plantación se llevo a cabo, inmediatamente a la recepción de las plántulas el día 29 de
octubre de 2018.
Pasados unos días del trasplante se procedió al pinzamiento de la planta el día 2 de noviembre
de 2018, reduciendo así la dominancia apical y favoreciendo la ramificación. Esta técnica se
aplicó cortando el brote principal unos 3 o 4 centímetros por encima del sustrato, o dicho de
otra forma dejando de 6 a 8 hojas por planta.
Debido a los tratamientos de concentración salina se realizaran soluciones nutritivas en
garrafas de 20 litros y soluciones en tanques madre, aplicándose unos de forma manual y
otros de forma automática mediante riego por goteo, siendo ambas cantidades iguales.
Además el riego se aplicara en función de las necesidades hídricas del cultivo y cuando no se
aplique tratamientos para corregir las deficiencias de la planta como son la aplicación de
Microtech Ferro para la deficiencia de hierro y aplicación de Nitrato magnésico hexahidratado
para la deficiencia de magnesio.
La aplicación de tratamientos de extractos de microalgas se realizó semanalmente, a
excepción del tratamiento con menor dosis y mayor frecuencia de tratamiento. En los semanas
se que apreciaba efecto posiblemente negativo sobre el cultivo fue espaciado más tiempo el
tratamiento, incluso suprimiéndose algunas semanas.
35 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Durante la realización del ensayo las plantas fueron cambiadas de posición en la mesa de
cultivo cada semana y además fueron tomados los datos de calidad y crecimiento del cultivo
para determinar la influencia de los tratamientos.
Al final del ensayo se procedió a la retirada del cultivo y a la toma de datos finales donde se
recogieron datos de área foliar, cantidad de biomasa y humedad de las plantas. Todos los
datos obtenidos durante el trascurso del ensayo fueron tabulados en hojas de Microsoft Excel,
de donde se obtuvieron los valores promedios, desviaciones típicas y las gráficas del proyecto
y para el análisis ANOVA de los factores estudiados se llevo a cabo en el programa
informativo IBM SPSS Statistics.
Especificaciones y requerimientos
técnicos
37 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
3. Especificaciones y requerimientos técnicos
3.1. Ubicación
El ensayo se llevo a cabo en el invernadero de ornamentales, ubicado en las instalaciones
destinadas a prácticas de la Universidad de Almería localizadas en la Cañada de San Urbano
(Almería). Los análisis se realizaron en el laboratorio 0.81 del Edificio Central, instalación
perteneciente al grupo de investigación AGR-242 (Sostenibilidad de sistemas protegidos
hortícolas y ornamentales).
Imagen 14: Localización del invernadero (Fuente: Google Earth).
3.2. Instalaciones y equipos
3.2.1. Instalaciones usadas.
El invernadero usado para el proyecto es tipo monotúnel con una cabida de 170 m2 de
superficie. El punto más alto de la estructura se encuentra a 4,3 m, posee unas paredes de
chapa metálica opaca y una cubierta de policarbonato estratificado con fibra de vidrio
trasparente. Posee un sistema de sombreo de malla aluminizada de color gris de 80 galgas y
un sistema de nebulización formado por una tubería de polietileno de diámetro de 16mm,
partiendo de la toma de agua y ramificándose en tres ramales distintos y paralelos entre si.
Las tuberías, poseen boquillas distanciadas entre si 0,5m y están destinados a distribuir el
agua sobre una superficie en forma de pequeñas gotas, este sistema de nebulización esta
manejado por un controlador automático. Durante este ensayo el sistema de nebulización no
se uso para evitar el lavado de las sales aplicadas en los diversos tratamientos.
Imagen 15: Mesa de cultivo utilizada en el invernadero
38 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 16: Panel controlador climático y de fertirriego
Imagen 17: Cubierta del invernadero con sistema de nebulización
3.2.2. Sistema de ventilación
EL sistema de ventilación está formado por una ventilación forzada a partir de una ventana
lateral de área 1 m2 y un ventilador extractor de tipo helicoidal y un motor de 500 r.p.m.
Imagen 18: Ventilador
39 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 19: Ventana lateral
3.2.3. Materiales usados del invernadero
Las plantas se colocaron en las mesas de cultivo situadas en la zona norte del invernadero.
Las plantas se trasplantaron en macetas de 17cm con un volumen aproximado de 2,5L y el
sustrato empleado fue una mezcla, 80% turba rubia y 20% perlita, favoreciéndose así un buen
drenaje del cultivo. Se uso el equipo instalado de fertirriego y diversas garrafas para realizar
la solución nutritiva de tratamientos salinos. Además, en los días que se aplicó foliarmente se
utilizo una balanza de precisión, un matraz aforado de 1L, varios vasos de precipitado y un
pulverizador. Para la toma de datos ambientales se coloco en la mesa de cultivo un Data
logger HOBO SHUTTLE.
Imagen 20: Distribución del invernadero
40 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
3.2.4. Equipos de fertirriego empleados
El sistema para riego empleado, está formado por tres bidones de 180L, una tubería primaria
encargada de conducir el agua desde los tanques hasta cada sector de riego y tres tuberías
portagoteros sobre las que se insertaban los goteros con un caudal de 2 L h-1
. Mediante este
sistema se aportó la solución nutritiva ideal a los tratamientos con una CE 2dS m-1
. Los
bidones son llenados con una tubería de PVC con un diámetro de 25 mm.
Imagen 21: Sistema de fertirriego
Para que la solución nutritiva se disuelva correctamente, una vez aportado los abonos y el
sistema tiene instalada una bomba de impulsión de aire que se encuentra conectada a un tramo
de tubería que llega hasta los bidones provocando la agitación del agua. Esta bomba es
monofásica de 220 V. El riego, se acciono de forma manual durante el ensayo.
El agua fertilizada es distribuida a las mesas de cultivo mediante un conjunto de seis tuberías
conectadas a los portarramales que van a los tanques mediante una tubería principal. En cada
tubería portarrameles encontramos una llave de paso, esta permite cerrar o abrir las líneas de
riego.
Imagen 22: Emisores de riego
41 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
3.3. Material vegetal y manejo del cultivo
3.3.1. Material vegetal
Para llevar a cabo el ensayo se utilizaron plantas de Petunia x hibrida var. ‘Surfinia Purple’.
Las plántulas fueron adquiridas de la empresa de producción de esquejes “Plantas de
Andalucía, S.L.” situado su centro de producción en La Mojonera (Almería).
Imagen 23: Plántulas de petunia
3.3.2. Medio de cultivo
Para el medio de cultivo se elaboró un sustrato compuesto en una proporción 80% turba rubia
y 20% perlita y se coloco en macetas de 17cm y volumen 2,5 L de capacidad. La
composición de este sustrato proporciona un buen drenaje, una buena retención de agua,
buena aireación y estructura estable para el cultivo de petunia.
La turba rubia usada pertenece a la marca comercial Brill, cuyas características son:
Turba con baja a media descomposición con agente mojante.
pH: 5,5 – 6,5
Porosidad total del 90% (v/v)
En cuanto a la perlita, que se uso como agente para aumentar porosidad, sus características
son:
Granulometría: 3-6 mm
Porosidad total: 92 - 98 %
42 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 24: Paso para la elaboración del sustrato.
3.3.3. Dosis y frecuencia de riego
El riego se aplicó en función de las necesidades del cultivo. El tiempo de riego fue de dos
minutos con un promedio de dosis de riego de 58 ml por planta, en cuanto a la frecuencia de
riego promedio fue de cada dos días, a excepción de días muy caluros o cuando el contenido
de lixiviación del cultivo era demasiado alto. En la tabla 1 se muestra el número de riegos
durante el ensayo, teniendo en cuenta que el comienzo del ensayo fue el día 29 de octubre de
2018 y acabo el 8 de enero de 2019:
Tabla 1: Número de riegos durante el ensayo
Mes Nº de riegos
Octubre 1
Noviembre 17
Diciembre 11
Enero 3
3.3.4. Tratamientos de deficiencias foliares
Durante el trascurso del ensayo, se presentaron deficiencias de magnesio y hierro, que fueron
tratadas.
Para la deficiencia de hierro se aplicó “Microtech Ferro”, producto perteneciente a la empresa
Biorizon. Aplicando foliarmente 50 ml por planta de la disolución de 2 ml de producto en 1L
de agua. Se realizaron dos aplicaciones, una el día 5 de diciembre y otra el día 12 de
diciembre de 2018.
43 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 25: Aplicación “Microtech Ferro”
En el caso de la deficiencia de magnesio, se aplicó nitrato magnésico hexahidratado,
perteneciente a la marca comercial “Panreac”, se añadieron 0,4 gL-1
, a la solución nutritiva de
cada tratamiento. En el caso del magnesio se realizaron varias aplicaciones: el 19, 21, 24, 26 y
31 de diciembre de 2018 y el 2 y 4 de enero del 2019.
Imagen 26: Pesado del nitrato magnésico hexahidratado
3.3.5. Tratamientos fitosanitarios
Al final del ensayo se detectaron incidencias de trips sobre algunas plantas, dividiendo dichas
plantas según la gravedad en leve, moderada y severa. Tan solo tres plantas del ensayo
presentaron incidencias severas, otras tres moderadas y dos leves, estando el resto de las
plantas completamente sano. Debido a la proximidad de la fecha de fin del ensayo se decidió
no tratar las plantas.
44 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 27: Hoja afectada por trips
3.4. Tratamientos
3.4.1. Fertilizantes empleados y preparación de la solución de fertirriego
Para el correcto cálculo de la fertirrigación empleada en el ensayo se tuvieron en cuenta la
solución nutritiva ideal para el cultivo de petunia y el análisis de agua utilizada.
Tabla 2: Datos de análisis de agua y solución ideal para el cultivo
NO3- H2PO4
- SO4
= HCO3
- NH4
+ K
+ Ca
2+ Mg
2+ pH
Agua 0,00 0,00 1,00 2,00 0,00 0,00 0,50 1,00 7,7
S. Ideal 7,00 0,52 1,71 0,50 0,71 2,99 2,49 1,00 6,5
Los fertilizantes empleados para la realización de la solución nutritiva se muestran en la tabla
3.
Tabla 3: Características principales de los fertilizantes empleados.
Fertilizantes líquidos:
Ácido Nítrico (HNO3) 56% de concentración
12,6% p/p de Nítrico
Densidad: 1,35 g cm-3
Ácido Fosfórico (H3PO4) 72% de concentración
51% de Óxido de fósforo
Densidad: 1,6 g cm-3
Fertilizantes sólidos:
Nitrato Cálcico (Ca(NO3)2)
15,5% de Nitrógeno total
14,4% de Nítrico
1,1% de Amoniaco
26,5% de Óxido de calcio
Nitrato Potásico (KNO3) 13% de Nitrógeno total
13% de Nítrico
46% de Óxido de potasio
Nitrato Amónico (NH4NO3) 34,5% de Nitrógeno total
17,4% de Nítrico
17,1% de Amoniaco
45 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Sulfato Potásico (K2SO4) 53% de Óxido de potasio
46% de Trióxido de azufre
Microelementos (Nutrex soil B) 0,3% de Molibdeno
0,5% de Magnesio
7% de Hierro (EDDHA 0,75%, EDTA
6,25%)
0,2% de Cobre
0,2% de Zinc
0,2% de Boro
Para asegurarnos de los correctos aportes de fertilizantes, se midió la CE y pH de los tanques
y garrafas que contenían la solución nutritiva ya realizada (tabla 4):
Tabla 4: pH y CE de las soluciones nutritivas empleadas.
Tanque 1 Tanque 2 Tanque 3 Garrafa 1 Garrafa 2 Garrafa 3
pH 6,55 6,56 6,7 6,51 6,48 6,3
C.E.
(dS m-1
)
1,97
1,94
1,98
2,61
2,63
3,02
3.4.2. Hidrolizados de microalgas
Durante el ensayo se aplicaron hidrolizados de Biorizon Sc. y Arthrospira sp.
En el caso de la Arthrospira sp se usó el producto comercial “Algafert” perteneciente a la
empresa Biorizon biotech.
Algafert, es un producto fertilizante natural producido por hidrolisis enzimática de
microalgas, Arthrospira es un alga que contiene una elevada concentración de proteínas,
oligoelementos, polisacáridos y antioxidantes. Este producto además es enriquecido con
aminoácidos. Su contenido de NPK es de 1-7-3.
Imagen 28: Producto de Arthrospira (fuente: Biorizon)
46 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
La microalga (Biorizon Sc.) fue suministrada por la misma empresa. Al ser un producto en
investigación de la empresa Biorizon Biotech, esta pendiente la identificación del microalga
que lo compone.
3.4.3. Tratamientos
Los tratamientos llevados a cabo con el fin del estudio de la influencia de las microalgas en la
salinidad y su influencia en distintas frecuencias y por separado o mezcladas, fueron:
Tratamientos: Co2,0 ó C- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
(Control),
Co2,6 - aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
(Control), Co3,0- aplicación foliar
de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
(Control), Ar2,0 ó Ar5- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0 ó Sc5- aplicación foliar semanal de Biorizon
Sc.(5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE
2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc. (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Ar3,0 -
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 3,0 dS m-1
, Sc3,0 - aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc. (5 gL-1
), CE 3,0 dS m-1
, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de
Biorizon Sc. (2,5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de
Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon Sc.), CE 2,0 dS m-1
.
Imagen 29: Hidrolizados de microalgas y materiales de laboratorio para la elaboración de
los tratamientos
Mediciones
48 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
4. Mediciones
4.1. Parámetros de ambientales del ensayo
Para la toma de datos de los parámetros ambientales se instalo en la mesa de cultivo un Data
loggger HOBO SHUTTLE, modelo H8 RH/Temp/Light/External H08-004-02, que registraba
cada 15 minutos la humedad relativa ambiental y temperatura del ambiente y sustrato.
Imagen 30: Hobo Shuttle
El HOBO se ubicó en la zona central de la mesa de cultivo donde estaba ubicado el ensayo.
Recogiendo temperaturas ambientales con un valor mínimo de 9,8 ºC y un máximo de 25,9º
C. En cuanto a la humedad relativa del invernadero se registraron máximos de 69,0% y
mínimos de 49,2%.
En cuanto a los datos de radiación PAR, fueron recogidos a partir de la estación
meteorológica de Almería y con el coeficiente de transmisión de cubierta calculamos la
radiación PAR que recibe el cultivo. Para la determinación del coeficiente de cubierta se usa
un luxómetro modelo Bremi BRi 5029.
Tabla 5. Temperatura y humedad relativa media
Tabla 6. Radiación global y del cultivo en cada mes.
Radiación global sobre el cultivo
(MJ/m2)
Máxima Mínima Media
Octubre
(desde el
29)
12,61
3,92
9,38
Noviembre 12,09 2,37 8,35
Diciembre 9,14 2,28 7,60
Enero
(hasta el
10)
9,04
8,32
8,81
49 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
4.2. Parámetros de crecimiento de la planta
Los parámetros de calidad y crecimiento de la planta se midieron semanalmente durante el
trascurso del ensayo.
Los parámetros que fueron medidos son: altura de la planta, número de hojas y brotes,
anchura y longitud de la ultima hoja, color de hoja (usándose tablas Munsell) y longitud del
ultimo entrenudo desarrollado de la planta.
Para el cálculo del área foliar se tuvo en cuanta la fórmula LA = a + bLW, donde b es el
coeficiente ajustado (0,992), a es valores constantes de los modelos utilizados para estimar el
área foliar de las plantas, L es la longitud de la hoja y W es el ancho da la hoja (Giufrida et
al., 2011).
Para la recogida de datos se utiliza aparatos de medida de longitud tanto regla como metro y
en el caso de las medidas más pequeñas y para la obtención de mayor precisión un pie de rey.
La producción de materia fresca y seca y contenido de humedad se determino al final del
cultivo. Se llevaron las muestras formados por raíces, tallos y hojas en sobres de papel de
filtro al laboratorio, se pesaron y se introdujeron en la estufa durante tres días a una
temperatura de 65ºC, retirándose así el contenido de humedad del material vegetal. Se pesaron
raíces tallos y hojas secas en una balanza marca COBOS serie CB-MAX, modelo M5-1000.
Imagen 31: Estufa ubicada en el laboratorio 2.11
50 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Imagen 32: Balanza de precisión usada para la toma de datos de pesos secos de raíz, tallo y
hojas de las muestras, localizadas en el laboratorio 0.81.
4.3. Parámetros nutricionales de la planta
Tras el secado de las muestras y el pesado se llevo a cabo el picado de las muestras de hoja
para llevar a analizar el contenido de los macroelementos, las muestra fueron trasladadas al
edificio de Servicios Centrales de Instrumentación de la Universidad de Almería.
Imagen 33: Picado de las muestras de hoja con un molinillo de café.
4.4. Tratamiento estadístico de diferencias significativas
Los datos recogidos durante la realización del proyecto se analizaron mediante un análisis de
comparación de medias, ANOVA, a través del programa informático IBM SPSS Statistics. Se
realizo el análisis de datos mediante la comparación de un factor entre los tratamientos con un
nivel mínimo de diferencia significativa de 0,05. En el análisis de datos se uso las varianzas
iguales al método Tukey-b. Mediante dicho método se evalúan las hipótesis, separando en
columnas, las que presentan desviaciones estándares iguales y separando las que tienen
diferencias estadísticamente significativas entre las desviaciones menores entre si del 0,05,
existiendo un nivel de confianza del 95%.
51 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Los datos fueron manejados mediante el programa Microsoft Excel, para el cálculo de las
desviaciones típicas y las medias de los tratamientos, además para la realización de las
gráficas.
Resultados y discusión
53 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5. Resultados y discusión.
5.1 Efecto de la aplicación de microalgas para control del estrés salino
La salinidad es uno de los principales factores abióticos que causan estrés y limita el
desarrollo y productividad de los cultivos, este problema ya esta generalizado en muchas
zonas y se prevé que cause mayor incidencia en un futuro. Aproximadamente el 50% de las
tierras cultivables se verán afectadas en el año 2050 (Vinocur y Altman 2005). La tolerancia a
la salinidad se evalúa generalmente con la producción de biomasa a lo largo del tiempo y en
términos de supervivencia de la planta (Munns, 2002). Se ha estimado que los estreses
abióticos disminuyen la productividad hasta alrededor del 50%.
Las microalgas contienen muchos compuestos bioactivos (Scodelaro et al. 2016; Assunção et
al. 2016; Wells et al. 2017) que pueden mejorar la respuesta de las plantas al estrés (Mancuso
et al., 2006).
En este apartado se estudiará el efecto de microalgas sobre la tolerancia de Petunia al riego
con aguas de mala calidad (NaCl).
5.1.1. Efecto de la aplicación de microalgas en la longitud del tallo
Gráfica 1: Desarrollo de la longitud del tallo a lo largo del ensayo, siendo los tratamientos:
Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal
de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
7 14 21 28 35 42 49 56 63 70
Lon
gitu
d d
el t
allo
(cm
)
Días después del trasplante
Longitud del tallo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
54 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 2: Longitud del tallo al final del ensayo, siendo los tratamientos: Co2,0- aplicación
foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp
(5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS
m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar
semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-
1, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L
-1), CE 3,0 dS m
-1 y Sc3,0-
aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas expresan
diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 1 se presenta la longitud del tallo a lo largo del ensayo, se observa que este
parámetro aumenta a lo largo del tiempo. Una alta CE (3,0 dS m-1
) no afecta a la longitud del
tallo. En cuanto a la diferencia estadísticamente significativas entre tratamientos, tan solo a
los 35 y 70 días se dan cambios significativos en la longitud siendo en la quinta semana, el
tratamiento Co3,0 el de menor con 11 cm y el Sc2,6 el mayor con 16,3 cm. Al final del
ensayo, representado en la gráfica 2, se observa que el menor resultado se obtiene del
tratamiento Sc3,0, con un valor de 31,5 cm, y la mayor altura se aprecia en el tratamiento
Sc2,6, teniendo una altura de 41,2 cm, ambos tratamientos pertenecientes a la aplicación de
Biorizon Sc la aplicación de microalgas no afecta a la longitud del tallo.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
Lon
gitu
d d
el t
allo
(cm
) Longitud del tallo al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
ab ab ab
a
ab
ab ab
ab b
55 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0
Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6
Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Imagen 34: Plantas de petunia en los distintos tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua
semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0
dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación
foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
56 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.1.2. Efecto de la aplicación de microalgas en el número de hojas de la planta
Gráfica 3: Número de hojas de la planta a lo largo del ensayo, siendo los tratamientos: Co2,0-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
Gráfica 4: Número de hojas de la planta al final del ensayo, siendo los tratamientos: Co2,0-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de
0
10
20
30
40
50
60
7 14 21 28 35 42 49 56 63 70
Nú
me
ro d
e h
oja
s
Días después del trasplante
Número de hojas por planta
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
0
10
20
30
40
50
60
Nú
me
ro d
e h
oja
s
Número de hojas al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
a
ab ab ab ab
ab
ab
b
ab
57 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas
expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En las gráficas 3 y 4 se representa el número de hojas por tratamiento a lo largo del ensayo y
al final del cultivo. Un aumento de la salinidad afecta el número de hojas por planta, se
observa una reducción de este parámetro con la CE. Mohammad et al., 1998 determinaron
que el número de hojas, la longitud de la raíz y el área de superficie foliar se ven afectadas por
la salinidad. Un aumento del nivel de cloruro sódico produce una disminución del crecimiento
de las raíces, hojas y brotes (Meloni et al., 2001).
La aplicación de las microalgas especialmente Biorizon Sc y en tratamientos salinos,
incrementa significativamente este parámetro con respecto al control. Siendo el mayor valor
para el tratamiento Sc3,0 con 55 hojas de media por planta y un valor mínimo de 44,25
perteneciente al tratamiento Co3,0 de aplicación de riego con mayor salinidad.
5.1.3. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el número de brotes producidos.
Gráfica 5: Número de brotes de la planta a lo largo del ensayo, siendo los tratamientos:
Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal
de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
0
2
4
6
8
10
12
14 21 28 35 42 49 56 63 70
Nú
me
ro d
e b
rote
s
Días después del trasplante
Número de brotes en el trascurso del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
58 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 6: Número de brotes de la planta al final del ensayo, siendo los tratamientos: Co2,0-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas
expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 5 se presenta el número de brotes durante el ensayo. La primera semana no se
tuvo en cuenta, ya que en esa semana se realizo el pinzamiento, para favorecer el desarrollo
de brotes laterales.
Durante el trascurso del ensayo el número de brotes se incremento ligeramente. En la última
semana se observó un mayor aumento debido a la brotación producida en los brotes
secundarios de la planta. La salinidad debida al NaCl no afecto significativamente a este
parámetro. Sin embargo, si hubo influencia de la aplicación foliar de microalgas,
especialmente en el caso de Artrhospira sp que produjo el mayor número de brotes, una
media de 10 tallos. Estos mismos resultados están en concordancia con los obtenidos por
(Cortés-Jiménez et al. 2014). Estos autores aplicando extractos de algas obtuvieron un
incremento de la brotación de plantas de tomate bajo estrés salino.
0
2
4
6
8
10
12N
úm
ero
de
bro
tes
Número de brotes al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
a
b b b ab ab ab
ab
ab
59 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.1.4. Efecto de la aplicación de microalgas sobre la anchura de la hoja
Gráfica 7: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del ensayo, siendo los
tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-
1, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL
-1), CE 2,6 dS m
-1, Sc2,6-
aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de
agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
),
CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
Gráfica 8: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a los 63 días de ensayo, siendo
los tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal,
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
3,5
4,0
4,5
21 28 35 42 49 56 63 70
An
chu
ra d
e h
oja
(cm
)
Días después del trasplante
Anchura de la última hoja desarollada
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
3,5
4,0
4,5
An
chu
ra h
oja
(cm
)
Anchura de la última hoja desarrollada al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
a ab abc
ab
bc ab ab
c
abc
60 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
,
Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación
foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5
g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS
m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 7 se observa un aumento de la anchura de la hoja a lo largo del periodo del
ensayo. Un amento de la CE del agua de riego no afecta a este parámetro. Sin embargo, la
aplicación de microalgas especialmente Biorizon Sc favorece el crecimiento de la anchura de
la hoja con respecto al tratamiento control. Los valores máximos los encontramos en los
tratamientos Sc3,0 y Sc2,0 con un valor de 3,8 cm y un mínimo de 2,9 cm para el tratamiento
Co3,0.
5.1.5. Efecto de la aplicación de microalgas sobre la longitud de la hoja
Gráfica 9: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del ensayo, siendo
los tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal,
CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
,
Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación
foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5
g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS
m-1
.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
21 28 35 42 49 56 63 70
Lon
gitu
d d
e h
oja
(cm
)
Días después del trasplante
Longitud de la última hoja desarollada
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
61 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 10: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a los 63 días de ensayo,
siendo los tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal,
CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
,
Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación
foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5
g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS
m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
Al inicio del ensayo no se observaron diferencias estadísticamente significativas (gráfica 9),
pero a partir de la séptima semana hasta el final del ensayo se observaron diferencias. Un
aumento de la salinidad reduce este parámetro, aunque no se observan diferencias
estadísticamente significativas. La aplicación de microalgas incrementa la longitud de la hoja,
siendo el tratamiento Sc2,0 de aplicación foliar de Biorizon Sc el valor máximo de 5,4 cm y
en el tratamiento con menor desarrollo el Co3,0, con un valor final de 4,5 cm.
Las altas concentraciones de cloruro sódico ejercen un efecto negativo sobre la fotosíntesis,
por lo que se causa una reducción del crecimiento tanto de la planta como de sus hojas
(Netondo et al., 2004). Los extractos celulares y el medio de crecimiento de varias especies
de microalgas contienen fitohormonas, como ácido abscísico (ABA) (Tarakhovskaya et al.,
2007). La biosíntesis de ABA se incrementa con el estrés hídrico para inducir respuestas
adaptativas (Agehara y Leskovar, 2017)
0
1
2
3
4
5
6
7Lo
ngi
tud
de
ho
ja (
cm)
Longitud de la última hoja desarrollada
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
a ab abcd
abcd abcd abcd
bcd d bcd
62 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.1.6. Efecto de la aplicación de microalgas en la longitud del entrenudo de la planta.
Gráfica 11: Longitud del último entrenudo de la planta al final del ensayo, siendo los
tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-
1, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL
-1), CE 2,6 dS m
-1, Sc2,6-
aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de
agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
),
CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
La longitud del entrenudo es un parámetro estudio interesante a nivel ornamental, en la
gráfica se presentan los valores promedios de la longitud del entrenudo al final del ensayo.
No se observa diferencia estadísticamente entre los tratamientos. Es de destacar que en los
tratamientos con alta salinidad, Artrhospira sp tenia valores mayores y Biorizon Sc presenta
valores iguales o menores al testigo.
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
Lon
gitu
d d
e e
ntr
en
ud
o (
cm)
Longitud del entrenudo al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
63 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.1.7. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el color de la planta.
Gráfica 12: Valores de luminosidad del color según las tablas Munsell al final del ensayo,
siendo los tratamientos Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal,
CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
,
Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación
foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5
g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS
m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
0
1
2
3
4
5
6
Luminosidad de la planta al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Saturación de la planta al final del ensayo
Co 2,0
Ar 2,0
Sc 2,0
Co 2,6
Ar 2,6
Sc 2,6
Co 3,0
Ar 3,0
Sc 3,0
64 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 13: Valores de saturación del color según las tablas Munsell, siendo los tratamientos:
Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal
de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas
expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En cultivos ornamentales, el color de la hoja es uno de los carácteres más importantes para
determinar la calidad de la planta y sus condiciones sanitarias. Para determinar este parámetro
se han usado las tablas Munsell, que es un sistema de ordenación de los colores en función de
tres parámetros distintos: tono, luminosidad y saturación.
En este proyecto, las hojas de las plantas de Petunia hybrida tenían un tono verde-amarillo
(5GY), oscilando tan solo los parámetros de saturación y luminosidad a lo largo del ensayo.
En el caso de la luminosidad los valores cambiaron o se mantuvieron entre los valores de 5 y
6. En la saturación los valores durante el ensayo estuvieron comprendidos entre 10 y 6. No se
observa efecto de la salinidad ni con aplicación de microalgas en este parámetro.
5.1.8. Efecto de la aplicación de microalgas sobre peso fresco de la planta
Gráfica 14: Pesos frescos de los tallos, raíces, hojas y el peso total de las plantas, siendo los
tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-
1, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL
-1), CE 2,6 dS m
-1, Sc2,6-
aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de
agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
),
CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 14 se representa los pesos frescos tanto de la parte área, hojas y tallos como
parte radical, observándose diferencias significativas en el peso fresco del tallo, siendo el
0
5
10
15
20
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0 Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6 Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Pe
so f
resc
o (
g)
Peso fresco (g)
Tallo
Raiz
Hojas
Peso FrescoTotal
ab ab b ab a ab ab ab b
65 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
tratamiento Ar2,6 el de mayor valor (4,98 g) y el Sc3,0 el de menor (3,12 g). Un aumento de
la concentración salina en agua de riego, reduce el peso fresco radical, aunque no se observa
diferencias estadísticamente significativas. En el caso de las hojas tenemos un valor máximo
de 11,2 g para el tratamiento Ar2,6 y un mínimo de 8,88g para el tratamiento Sc3,0, en el caso
de las raíces tenemos un valor máximo de 1,8 g para el tratamiento Ar3,0 y un mínimo
de1,15g para el tratamiento Co3,0. Sin embargo, (Zaki y Yokoi, 2016, El Arroussi et al.,
2016) observaron que el peso fresco de los cultivares de S. lycopersicum se redujeron con el
estrés salino. En este ensayo no se observa diferencias, debido posiblemente a los
mecanismos que tiene Petunia hybrida para adaptarse a la salinidad y su gran capacidad de
tolerar el estrés salino (Fornes et al., 2007).
5.1.9. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el peso seco de la planta
Gráfica 15: Pesos secos de los tallos, raíces y hojas de las plantas, siendo los tratamientos:
Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal
de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas
expresan diferencias significativas (p≤0.05).
Las altas concentraciones de cloruro sódico ejercen un efecto negativo sobre el peso seco tallo
y hoja (gráfica 15). El crecimiento de las plantas se ve afectado con un retraso del
crecimiento, debido al estrés provocado por la salinidad (Hernández et al., 1995; Cherian et
al., 1999; Takemura et al., 2000). En este sentido, Hernández et al., (1995); AliDinar et al.,
(1999); Chartzoulakis y Klapaki, (2000) encontraron que el estrés salino provoca una
disminución considerable de los pesos secos de hojas, tallos y raíces. La aplicación de
Arthrospira sp mejora la repuesta de petunia a la salinidad. En el caso del tallo el tratamiento
Ar2,6, tiene el valor máximo (0,37g) y el tratamiento Co3,0, el mínimo (0,24 g). En el caso
de las raíces el valor máximo es de 0,19 g para el tratamiento Ar3,0 y el valor mínimo para el
tratamiento Co3,0 de 0,12 g. Los tratamientos con mayor peso seco total, es el tratamiento
con una CE de 2,6 dSm-1
y aplicación de microalgas. Los componentes bioactivos presentes
0,0
0,5
1,0
1,5
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0 Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6 Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Pe
so s
eco
(g)
Peso seco (g)
Tallo
Raiz
Hojas
Peso SecoTotal
ab ab ab ab a a
b ab b
ab ab ab ab ab a c ab bc
ab ab ab ab ab ab a b ab
66 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
en los extractos de algas marinas pueden mejorar la respuesta de las plantas al estrés
(Mancuso et al., 2006). En este sentido, incrementan la supervivencia del césped Poa
pratensis L. cv. Plush bajo condiciones de salinidad, al favorecer el crecimiento tanto de
raíces como de la parte aérea (Nabati et al., 1994). Los exopolisacáridos de los extractos de
Dunaliella salina mejoran el porcentaje de germinación de las semillas de trigo expuestas a
estrés salino y aumentan la longitud del sistema radicular aumenta y la longitud de los
coleóptilos, por lo que estos extractos podrían ayudar a las plantas a tolerar este tipo de estrés
(El Arroussi et al., 2016).
5.1.10. Efecto de la aplicación de microalgas sobre el área foliar de la planta.
Gráfica 16: Área foliar media de la planta al final del ensayo, siendo los tratamientos: Co2,0-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar
semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal,
CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y
Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas
expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 16 se representa el área foliar para los diversos tratamientos del ensayo, donde se
observa que el mayor valor es para el tratamiento Ar2,6 de aplicación foliar de Artrhospira sp
con el valor numérico de 811,72 cm2
y el menor valor concuerda con el Co3,0 siendo
aplicación foliar de agua con la mayor concentración salina, con el valor de 605,32 cm2. Con
el aumento de la concentración de cloruro sódico, las plantas experimentan un decrecimiento
del área foliar (Abdul, 2010), los resultados obtenidos en los controles son similares a los
obtenidos por Taffou et al. (2009), que investigaron el efecto del estrés salino en plantas de
frijol (Vigna unguiculata L.).También los investigadores Zhao et al. (2007) y Yilmaz y Kina
(2008) encontraron que las plantas expuestas a cloruro sódico reducían el follaje y, por tanto,
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0 Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6 Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Áre
a Fo
liar
Me
dia
(cm
2 )
Área Foliar Media (cm2)
67 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
el área foliar de la planta. El uso de microalgas aumenta la superficie foliar, aunque esta no es
estadísticamente significativa.
5.1.12. Efecto de la aplicación de microalgas sobre concentración de nutrientes en hoja.
Gráfica 17: Concentración de N, P y K (%) en hoja. Donde Co2,0- aplicación foliar de agua
semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0
dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6-
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5
gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0-
aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación
foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias
significativas (p≤0.05).
0
1
2
3
4
5
6
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0 Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6 Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Co
nce
ntr
ació
n N
, P, K
e
n h
oja
(%
)
Concentración N, P, K en hoja (%)
N
P
K
0,0
0,2
0,4
0,6
0,8
1,0
1,2
1,4
1,6
1,8
2,0
Co 2,0 Ar 2,0 Sc 2,0 Co 2,6 Ar 2,6 Sc 2,6 Co 3,0 Ar 3,0 Sc 3,0
Co
nce
ntr
ació
n C
a, M
g, N
a y
Cl
en
ho
ja (
%)
Concentración de Ca, Mg, Na y Cl en hoja
Ca
Mg
Na
Cl
abcd a abc bcd d a abc ab
cd
c c bc a c ab ab c c
c bc bc bc
a a a b
c
a a a
bc bc bc c
b b
ab a a c bc c c c bc
a
d d d
c bc
c
a ab
a a ab
cde bc bcd
cde de e
68 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 18: Contenido de calcio, magnesio, sodio y cloro en las hojas (%), siendo los
tratamientos: Co2,0- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar2,0- aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,0- aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Co2,6- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,6 dS
m-1
, Ar2,6- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Sc2,6-
aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,6 dS m-1
, Co 3,0 - aplicación foliar de
agua semanal, CE 3,0 dS m-1
, Ar3,0- aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
),
CE 3,0 dS m-1
y Sc3,0- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 g L-1
), CE 3,0 dS m-1
.
Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica nº 17 se presenta el contenido de N, P y K en hoja al final del ensayo, donde se
puede observar que existen diferencias estadísticamente significativas entre tratamientos.
No se observa un efecto de la salinidad por cloruro sódico sobre el contenido de N y P en
hoja. La aplicación de Arthrospira sp incremente el contenido de P en hoja. El menor
contenido de fósforo en hoja se encuentra en el tratamiento Co2,0 y el mayor en el
tratamiento Ar2,6, que es tratamiento con la aplicación de Arthrospira sp con una
conductividad eléctrica de 2,6 dS m-1
, registrando un valor de 0,30%. Las microalgas ayudan
a tener una mejor nutrición de las plantas, por lo que se mejora todas las reacciones
fisiológicas y de desarrollo de la planta mejorando el crecimiento de la planta (Faheed y
Fattah 2008). Priyadarshani y Rath (2012) observaron que aplicaciones de S. platensis
aumentaba el crecimiento, debido a la capacidad de fijación de nitrógeno de dicha microalga.
También se sabe que en condiciones con presencia de cloruro sódico, se genera prolina, que
es un aminoácido, y compuestos fenólicos que son almacenados por la planta como forma de
respuesta al estrés producido. La prolina protege de la desnaturalización de las proteínas,
estabiliza las membranas celulares y sirve como fuente de energía y nitrógeno (Per et al.
2017). La aplicación de extractos de algas disminuye la producción de prolina en condiciones
de estrés salino (Manaf, 2016), dejando así los elementos nutricionales disponibles para el
desarrollo y crecimiento de la planta, sin tener que consumirlos para crear una respuesta
contra el estrés producido. Tarraf et al. (2015) determinaron que la aplicación foliar de
microalgas a las plantas aumenta el contenido fijado en las hojas de nitrógeno, fósforo y
potasio. También estudios realizados por Shaaban (2001) en trigo mostraron que la aplicación
foliar de extractos obtenidos de células de algas provocaba aumento de la absorción de
nutrientes, pero Dias et al. (2016) observo que la aplicación foliar de Arthrospira sp en
concentraciones pequeñas no afectaba al el contenido foliar de nitrógeno, fósforo, potasio y
sodio de las plantas.
Altas concentraciones de NaCl reduce la concentración de K en hoja (gráfica 18), sin embargo
no se observa variación de contenido de este nutriente con la aplicación de microalgas. Estos
resultados concuerdan con los obtenidos por El Arroussi et al. (2018), donde la aplicación
foliar de Dunaliella salina en condiciones de estrés salino, las plantas de tomate presentaban
una relación de K+ / Na
+ menor con el aumento de la salinidad, aumentando por tanto el sodio
y reduciendo el potasio. La presencia en el medio de una cantidad significativa de cloruro de
sodio produce una disminución de la absorción de potasio debido al antagonismo entre estos
dos elementos por los transportadores (Niu et al., 1995)
69 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
El contenido de Mg y Ca en hojas se ve reducido al aumentar la concentración de ClNa en
agua (gráfica 18). En el caso de magnesio, el tratamiento con un mayor valor es Ar 2,0, 0,26
% y el de menor cantidad el de Sc3,0 con 0,18 %. En el caso del calcio el tratamiento control
Co2,0 presenta la mayor cantidad de 0,93 %, el menor resultado fue para el tratamiento Ar2,0
con un valor de 0,68 %. Los resultados obtenidos por Bockheim y Leide (1991), determinaron
que el aumento de la salinidad disminuya la captación del magnesio, elemento relacionado
directamente con la actividad fotosintética de la planta, estos resultados concuerdan con los
obtenidos en este estudio. No se ve un efecto claro de la aplicación de microalgas en estos
elementos.
El sodio presenta valores más altos en las concentraciones salinas, el tratamiento con un
mayor valor es control Co3,0, 1,66% y el menor Co2,0 con 0,9%. En el caso del cloro
también presenta el máximo y el mínimo para los mismos tratamientos siendo, 1,89 y 1,30 %
para Co3,0 y Co2,0 respectivamente. No se observa un efecto claro en el contenido de Cl y
Na con la aplicación de microalgas.
5.2. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas
En los extractos de las algas marinas encontramos nutrientes que son fácilmente asimilables
por las hojas a traces de los poros hidrófilos de la cutícula de las hojas y de los estomas
(Battacharyya et al. 2015). Ensayos llevados a cabo en plantas de Brassica Napus L. con
extractos de Ascophyllum nodosum han comprobado la actividad bioestimulante de las
microalgas en la absorción y translocación de nutrientes así como en el efecto en el desarrollo
de las plantas (Janin etal., 2012). Sin embargo, pocos estudios se han centrado en la
valoración del posible efecto de la modificación de la dosis y frecuencia de aplicación de las
microalgas.
5.2.1 Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en la longitud del tallo.
Gráfica 19: Desarrollo de la longitud del tallo a lo largo del ensayo, siendo los tratamientos: C
- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
49 56 63 70
Logi
tud
de
la p
lan
ta (
cm)
Días después del trasplante
Longitud de la planta (cm)
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
70 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 19 se presenta la longitud del tallo a lo largo del ensayo. El análisis estadístico
nos muestra que no hubo diferencias significativas entre tratamientos. Al final del ensayo el
tratamiento con un mayor valor es el control, 39,33 cm y el menor, 34,7 cm para el
tratamiento Sc2,5.
C Ar 5 Sc 5
Sc 2,5 ArSc 5
Imagen 35: Plantas de los distintos tratamientos: : C - aplicación foliar de agua semanal,
CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5
- aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5 - aplicación foliar
cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla
microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
.
71 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.2. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en el número de hojas
de la planta.
Gráfica 20: Número de hojas de la planta a lo largo del ensayo, siendo los tratamientos: : C –
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 – aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 – aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 – aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
m-1
y ArSc5 – aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
Los valores representados determinan el número de hojas presentes en las plantas en el
trascurso del ensayo, se observan valores oscilatorios desde el comienzo al fin, pero en el
final el máximo se encuentra en el tratamiento C con el valor de 48 hojas y el mínimo en el
tratamiento ArSc 5 con 45 hojas de media.
5.2.3. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el número de
brotes producidos.
0
10
20
30
40
50
60
49 56 63 70
Nú
me
ro d
e h
oja
s
Días después del trasplante
Número de hojas por planta
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
49 56 63 70
Can
tid
ad d
e b
rote
s
Días después del trasplante
Cantidad de brotes
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
a b
ab ab
ab
72 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Gráfica 21: Número de brotes de la planta, siendo los tratamientos: : C – aplicación foliar de
agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 – aplicación foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
),
CE 2,0 dS m-1
, Sc5 – aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5
– aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 – aplicación
de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
, Letras
distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
La representación gráfica de los datos sobre el número de brotes en los distintos tratamientos,
observamos que da mejores valores para el tratamiento Sc5 seguido del Ar5, por lo que
podemos decir que el efecto de las algas por separado es mayor que su efecto en el conjunto,
tratamiento ArSc5. Además podemos decir que una mayor dosis (Sc5) en una aplicación
obtuvo mayor brotación por planta que una dosis menor con mayor frecuencia de aplicación
(Sc2,5).
En el análisis estadístico de diferencias significativa p≤0.05, no presento diferencia entre los
diversos tratamientos tenidos en cuenta.
5.2.4. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre la anchura de la
hoja
Gráfica 22: Anchura de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del ensayo, siendo
los tratamientos: C – aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 – aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 – aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5 – aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5
g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 – aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y
5 gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas
(p≤0.05).
En la gráfica 22 observamos que las mayores anchuras de hoja se alcanzaron con el
tratamiento Sc2,5 seguido del tratamiento Sc , ambos de la aplicación foliar de Biorizon Sc
con distintas frecuencias de aplicación alcanzando valores de 3,8 cm de anchura. Los
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
3,5
4,0
4,5
49 56 63 70
An
chu
ra d
e h
oja
(cm
)
Días después del trasplante
Anchura de última hoja desarrollada
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
a ab
b b b b b
a a a a a a
b b
73 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
resultados menores se obtuvieron en el C y ArSc5, concluyendo que la aplicación de dos
microalgas a 5 gL-1
cada una no genera efectos positivos, no apreciándose diferencias
significativas con el control. Siendo el valor mínimo el de ArSc5 con un valor de 3,1 cm
5.2.5. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre la longitud de la
hoja.
Gráfica 23: Longitud de la última hoja desarrollada de la planta a lo largo del ensayo, siendo
los tratamientos: C - aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación
foliar semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5
g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5
gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas
(p≤0.05).
En la gráfica 23 se representa la longitud de la ultima hoja desarrollada a lo largo del ensayo,
observándose diferencias significativas entre tratamiento. Se obtuvo el máximo al igual que
en la anchura en los tratamientos Sc5 y Sc2,5, siendo el mayor en Sc5 con un valor de 5,38
cm de longitud y el menor en el control (C) con un valor de 4,85 cm. Chojnacka, 2012
observaron que las sustancias obtenidas de las algas marinas que estimulan el crecimiento de
las plantas.
0
1
2
3
4
5
6
7
49 56 63 70
Lon
gitu
d d
e h
oja
(cm
)
Días después del trasplante
Longitud de última hoja desarrollada
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
c bc abc
ab a a a
b b b a ab abc
bc c c b ab ab a
74 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.6. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas en la longitud del
entrenudo de la planta.
Gráfica 24: Desarrollo de la longitud del entrenudo a lo largo del ensayo, siendo los
tratamientos: C - aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar
semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5
g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5
gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas
(p≤0.05).
En la gráfica 24 podemos determinar que los valores de la longitud del entre nudo de las
plantas fue muy oscilatorio según los tratamientos y la semana, destacando los tratamientos
con microalgas que eran ligeramente superiores, aunque en el análisis estadístico no se
obtuvieron diferencias significativas para ninguno de los tratamientos a partir de los 56 días
del trasplante.
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
2,5
3,0
3,5
49 56 63 70
Lon
gitu
d d
el e
ntr
en
ud
o (
cm)
Días después del trasplante
Longitud del entrenudo
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
a ab ab
b b
75 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.7. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el color de la
planta.
Gráfica 25: Valores de luminosidad del color según las tablas Munsell, siendo los
tratamientos: C - aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar
semanal de Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de
Biorizon Sc (5 gL-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5
g L-1
), CE 2,0 dS m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5
gL-1
Biorizon Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas
(p≤0.05).
Gráfica 26: Valores de saturación del color según las tablas Munsell, siendo los tratamientos:
C - aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
1
2
3
4
5
6
49 56 63 70
Días después del trasplante
Luminosidad de la planta
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
0
2
4
6
8
10
12
49 56 63 70
Días después del trasplante
Saturación de la planta
C
Ar 5
Sc 5
Sc 2,5
ArSc 5
a
b ab ab ab
76 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
El color para todos los tratamientos obtuvo un valor de verde-amarillo (5GY). Con respecto a
los otros dos parámetros; luminosidad y saturación, aunque oscilo a lo largo del ensayo, no se
encuentran diferencias estadísticamente significativas entre los tratamientos.
5.2.8. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el peso fresco de
la planta.
Gráfica 27: Pesos frescos de los tallos, raíces y hojas de las plantas, siendo los tratamientos: C
- aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En el ensayo, como muestra la gráfica 27, no se observaron diferencias significativas en los
tratamientos, ni en hojas, ni tallo ni tampoco en las raíces. Podemos observar en la gráfica
que los valores más altos se encuentran en tallo en C, en raíz en Sc2,5 y en hoja en Sc5 y los
más bajos en tallo en Sc2,5, en raíz en C y en hoja en ArSc5. Estos resultados concuerdan con
los obtenidos por algunos investigadores que no observaron efecto alguno en el rendimiento
del pepino y una disminución de los brotes en pepino cuando se aplicó algas a las plantas
(Schwarz y Krienitz, 2005)
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
C Ar 5 Sc 5 Sc 2,5 ArSc 5
Pe
sp f
resc
o (
g)
Peso fresco (g)
Tallo
Raiz
Hojas
Peso fresco totala ab ab b ab
77 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.9. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas el peso seco de la
planta.
Gráfica 28: Pesos secos de los tallos, raíces y hojas de las plantas, siendo los tratamientos: C -
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
En la gráfica 28 se presenta el peso seco del tallo, raíz y hoja para los distintos tratamiento.
Aunque se observa un aumento del peso seco del tallo y raíz con la aplicación de las
microalgas, no hubo diferencias significativas entre tratamiento.
Investigaciones sobre la aplicación foliar de Scenedesmus y Arthrospira a 10 g L-1
semanal
demuestran que las microalgas aumenta el número de flores y los pesos frescos y secos de las
plantas (Plaza et al., 2018). En este caso se aplicó 5 g L-1
semanal, 2.5 g L-1
cada 3 días y
aplicación conjunta de Arthrospira y Biorizon Sc En ninguno de los dos casos mejora el
crecimiento de la planta. Por otro lado, una alta concentración puede provocar inhibición del
crecimiento. La aplicación foliar de extractos de microalgas mejoran el crecimiento, mejoran
el desarrollo de flores y aumentan el número de brotes, pero altas dosis de los extractos
provoca un menor desarrollo floral, menor brotación y una disminución del tamaño (García y
Sommerfeld, 2015). Kumar y Sahoo (2011) demostraron que concentraciones altas de algas
marinas provocaron la reducción de las longitudes de la raíz, del número de raíces y de la
longitud del brote, también Hernández-Herrera et al. (2013), obtuvieron que la aplicación de
microalgas en dosis superiores de 0,18 g mL-1
se observaban plantas más pequeñas mientras
que otro estudio realizado por Kumari et al. (2011) determinaron lo contrario, es decir, mayor
dosis de algas, aumentaba el desarrollo de la planta.
0
0,2
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
C Ar 5 Sc 5 Sc 2,5 ArSc 5
Pe
so s
eco
(g)
Peso seco (g)
Tallo
Raiz
Hojas
Peso Seco Total
78 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
5.2.10. Efecto de la dosis y frecuencia de aplicación de microalgas sobre el área foliar de
la planta.
Gráfica 29: Área foliar media de la planta al final del ensayo, siendo los tratamientos: C -
aplicación foliar de agua semanal, CE 2,0 dS m-1
, Ar5 - aplicación foliar semanal de
Arthrospira sp (5 g L-1
), CE 2,0 dS m-1
, Sc5 - aplicación foliar semanal de Biorizon Sc (5 gL-
1), CE 2,0 dS m
-1, Sc2,5 - aplicación foliar cada 3 días de Biorizon Sc (2,5 g L
-1), CE 2,0 dS
m-1
y ArSc5 - aplicación de mezcla microalgas (5 gL-1
de Arthrospira sp y 5 gL-1
Biorizon
Sc), CE 2,0 dS m-1
. Letras distintas expresan diferencias significativas (p≤0.05).
El Arroussi et al.(2016) demostraron que plantas de pimiento y tomate tratadas con
microalgas aumentaron el tamaño de la hoja y por ello el área foliar. En la gráfica 29
observamos como los dos tratamientos de microalgas con dosis de 5 gL-1
tienen mayor área
foliar mientras que los tratamientos con dos algas y el tratamiento de aplicación foliar con
mayor frecuencia y menor dosis tienen valores muy cercanos al tratamiento control, aunque
no son estadísticamente significativas. Representa la mayor área foliar Sc5, 784,31 cm2 y el
menor valor C, 700,9 cm2.
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
C Ar 5 Sc 5 Sc 2,5 ArSc 5
Áre
a fo
liar
(cm
2)
Área Foliar (cm2)
Conclusiones
80 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
6. Conclusiones.
Después de llevar a cabo los análisis de los datos tomados en este proyecto experimental, se
puede concluir que:
Un aumento de la salinidad por NaCl produjo una disminución del número de hojas por
planta, del peso seco de la hoja y tallo, del área foliar y la concentración de potasio, calcio y
magnesio en hoja.
La aplicación foliar de Arthrospira sp favoreció la brotación, el incremento del peso seco del
tallo y raíz de la planta y el contenido de fósforo en hoja. Mientras que la aplicación de
Biorizon Sc influyó sobre el número de hojas por planta, la anchura y longitud de hoja, siendo
superiores estos parámetros en los tratamientos con microalgas.
Los extractos de microalgas mejoraron la respuesta de Petunia x hybrida al estrés salino. La
aplicación de microalgas mejoró algunas características del crecimiento y desarrollo de las
plantas en condiciones de estrés salino, generando plantas con mejores características. En
concreto, la aplicación de Arthrospira sp en los tratamientos salinos, aumentó el peso seco
tallo y raíz y anchura de hoja y la aplicación de Biorizon Sc incrementó el número de hojas
por planta.
Por otro lado, de los resultados derivados del estudio de la optimización de la dosis y
frecuencia de la aplicación de microalgas, no se observaron diferencias estadísticamente
significativas para ninguno de los parámetros estudiados, con excepción de la anchura y la
longitud de la hoja, que mostraron mejores resultados en el tratamiento de Biorizon Sc con
aplicación de 2,5 g L-1
cada 3 días.
Bibliografía
82 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
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Anexos
93 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
8. Anexos.
8.1. Producto Algafert de la empresa Biorizon Biotech.
94 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
95 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
8.2. Producto Microtech Ferro de la empresa Biorizon Biotech.
96 Optimización de la aplicación de microalgas en Petunia x hybrida. Efecto de la aplicación foliar de hidrolizado de microalgas
(Arthrospira platensis y Biorizon Sc) en el crecimiento y desarrollo de Petunia x hybrida bajo condiciones salinas.
Resumen/Abstract
GRADO EN INGENIERÍA AGRÍCOLA, 2018/2019
En el trabajo fin de grado, se pretende estudiar el efecto protector de los extractos de microalgas frente al empleo de aguas de mala calidad (alta
salinidad), teniendo en cuenta los diferentes aspectos en la producción, como son la biomasa y la calidad de la planta. Además de investigar la
dosis y la frecuencia de la aplicación de microalgas en el cultivo de Petunia x hybrida, y valorar el efecto de la aplicación conjunta de dos
microalgas.
In the final degree project, we intend to study the protective effect of microalgae extracts against the use of poor quality waters (high salinity),
taking into account the different aspects in production, such as biomass and the quality of the plant. In addition to investigating the dose and frequency of the application of microalgae in the culture of Petunia x
hybrida, and assess the effect of the joint application of two microalgae.