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PROCEDIMIENTO DE COORDINACIÓN DE

ENSEÑANZAS DE LA FACULTAD DE CIENCIAS DE LA UEx (PCOE)

Asunto: Plan Docente Asignatura Ingeniería

Genética

Código: PCOE_D002_BIO

Fecha: 24/05/2014

PROGRAMA DE LA ASIGNATURA

Curso académico: 2014-2015

Identificación y características de la asignatura

Código 110733 Créditos ECTS 6

Denominación Ingeniería Genética (Genetic Engineering)

Titulaciones Grado Biología Centro Facultad de Ciencias Semestre 5º Carácter Obligatorio Módulo Biología Fundamental Materia Genética

Profesor/es Nombre Despacho Correo-e Página web

José Emilio Rebollo Feria

DG3

[email protected]

Campus virtual de la UEX

Área de conocimiento Genética Departamento Bioquímica y Biología Molecular y Genética Profesor coordinador (si hay más de uno)

José Emilio Rebollo Feria

Competencias

Competencias básicas CB1: Que los estudiantes hayan demostrado poseer y comprender conocimientos en un área de estudio que parte de la base de la educación secundaria general, y se suele encontrar a un nivel que, si bien se apoya en libros de texto avanzados, incluye también algunos aspectos que implican conocimientos procedentes de la vanguardia de su campo de estudio. CB2: Que los estudiantes sepan aplicar sus conocimientos a su trabajo o vocación de una forma profesional y posean las competencias que suelen demostrarse por medio de la elaboración y defensa de argumentos y la resolución de problemas dentro de su área de estudio. CB3: Que los estudiantes tengan la capacidad de reunir e interpretar datos relevantes (normalmente dentro de su área de estudio) para emitir juicios que incluyan una reflexión sobre temas relevantes de índole social, científica o ética. CB4: Que los estudiantes puedan transmitir información, ideas, problemas y soluciones a un público tanto especializado como no especializado.




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CB5: Que los estudiantes hayan desarrollado aquellas habilidades de aprendizaje necesarias para emprender estudios posteriores con un alto grado de autonomía. Competencias generales CG1: Formar biólogos con competencias genéricas y específicas, aptos para ejercer tareas en cualquiera de los terrenos de la Biología, desarrollando sus actividades en las empresas e instituciones públicas y privadas o creando empresas propias. CG2: Conferirles aptitud para seguir con aprovechamiento los cursos de postgrado que le faculten de manera específica en terrenos docentes, investigadores o profesionales. CG3: Dotar a los graduados de capacidad para generar, adquirir y procesar, de manera autónoma, información relacionada con la Biología. CG4: Capacitarles para planificar, ejecutar y criticar procesos de conocimiento en el ámbito de su actividad. CG5: El objetivo final es formar graduados capacitados para incorporarse a las actividades previstas oficialmente para la profesión de biólogo, tal como se define en la resolución de 5 de abril de 2006 de la Consejería de Presidencia de la Junta de Extremadura (DOE de 20 de Abril de 2006). Competencias transversales CT1: Aplicar los conocimientos adquiridos en el título a su desempeño laboral de una forma profesional y rigurosa, así como desenvolverse con seguridad en un laboratorio. CT2: Utilizar y aplicar tecnología de información y comunicación (TIC) en el ámbito formativo y profesional. CT3: Poseer y comprender la información de libros de texto avanzados y acceder a conocimientos procedentes de la vanguardia del campo de estudio del título. CT4: Desarrollar habilidades de aprendizaje, organización y planificación, necesarias tanto para emprender estudios posteriores con un alto grado de autonomía, como para el desempeño profesional CT5: Interpretar, analizar y sintetizar datos e información relevante que permitan al alumno desarrollar ideas, resolver problemas y emitir un razonamiento crítico sobre temas importantes de índole social, científica o ética. CT6: Transmitir de forma eficaz resultados y conclusiones a un público tanto especializado como no especializado. CT7: Expresarse correctamente de forma escrita y oral en la lengua nativa, así como dominar suficientemente un idioma extranjero, preferentemente el inglés. CT8: Liderar o trabajar en equipo adaptándose positivamente a diferentes contextos y situaciones. CT9: Respetar los derechos fundamentales y de igualdad entre hombres y mujeres, así como adquirir un compromiso ético de respeto a la vida y al medio ambiente. Competencias especificas CE1: Manejar conocimientos básicos de Química, Física, Matemáticas y Geología, suficientes para afrontar la comprensión de los procesos biológicos. CE2: Conocer y comprender las bases moleculares del flujo de información y de los procesos metabólicos en los seres vivos. CE3: Conocer y comprender la estructura, morfología, organización y desarrollo de los seres vivos. CE4: Conocer las funciones de los seres vivos, su regulación e integración y analizar e interpretar las adaptaciones funcionales al medio




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CE5: Diferenciar los niveles de organización de los seres vivos, desde el molecular hasta el de comunidades de organismos, así como la interacción entre ellos y con el medio. CE6: Conocer y comprender la organización genómica de los seres vivos y la transmisión de los genes a la descendencia, así como los mecanismos de herencia de los caracteres y sus variaciones. CE7: Comprender el origen y evolución de la vida, identificando los procesos y mecanismos evolutivos e incluyendo la sistemática, filogenia y biogeografía de los seres vivos actuales y del pasado. CE8: Ser capaz de realizar, analizar y valorar estudios sobre biodiversidad, así como gestionarla, conservarla y restaurarla. CE9: Obtener, identificar, analizar, caracterizar y manipular muestras biológicas, tener la capacidad de realizar bioensayos y pruebas funcionales analizando parámetros biológicos y realizar asesoramiento científico y técnico sobre temas biológicos. CE10: Analizar e interpretar la estructura y dinámica de poblaciones y comunidades, los flujos de energía y ciclos biogeoquímicos en los ecosistemas, así como las influencias que en éstos ejercen las actividades de los seres vivos, incluyendo humanos. CE11: Analizar, y controlar procesos biotecnológicos, así como la producción, transformación, manipulación, conservación, identificación y control de calidad de materiales de origen biológico. CE12: Muestrear, caracterizar, conservar y gestionar poblaciones y ecosistemas y analizar el comportamiento de los seres vivos, siendo capaz de evaluar el impacto ambiental. CE14: Impartir enseñanza de la Biología en los términos que establezca la ley.1. Conocer y comprender las consecuencias de los cambios en la estructura y organización del material hereditario, (Competencias 1 del Módulo y 12 y 15 del Grado)

Temas y contenidos

Breve descripción del contenido Esta asignatura muestra el núcleo de conocimientos en las nuevas tecnologías relacionadas con la manipulación del material genético. Se comienza por definir los conceptos fundamentales. Continúa el aprendizaje de las herramientas básicas en estos procesos, tanto en material de origen biológico (enzimas) como en técnicas y métodos aplicables. Seguidamente, se expone el diseño básico por el que se conjugan los instrumentos referidos en una estrategia general del proceso de clonación molecular. Es preciso particularizar el diseño anterior en organismos de toda la escala biológica. Finalmente, se tratan aplicaciones de las nociones expuestas a los terrenos más diversos, con relevancia social: desde la obtención de transgénicos a las pruebas de paternidad.

Temario de la asignatura Denominación del tema 1: ANTECEDENTES. Contenidos del tema 1: ¿Qué es la Ingeniería Genética? Fines que persigue. Selección de animales y plantas. Manipulación genética por cruzamientos seleccionados. Los cruzamientos

entre especies, una vieja quimera. La ingeniería genética fabrica quimeras. In vitro e in vivo.




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Denominación del tema 2: MANIPULACIÓN BÁSICA DEL ADN Contenidos del tema 2: Protocolo básico de aislamiento del ADN. Enzimas de restricción como sistema de seguridad en la célula. Descubrimiento. Modificasas. Tipos de enzimas. Nomenclatura. Secuencias diana. Número esperable. Extremos cohesivos. Las endonucleasas R. como “tijeras moleculares”. Denominación del tema 3: BASES DE LA ELECTROFORESIS Y USOS PRIMARIOS Contenidos del tema 3: Protocolo básico de aislamiento del ADN. Enzimas de restricción como sistema de seguridad en la célula. Descubrimiento. Modificasas. Tipos de enzimas. Nomenclatura. Secuencias diana. Número esperable. Extremos cohesivos. Las endonucleasas R. como “tijeras moleculares”. Denominación del tema 4: USO DE LA ELECTROFORESIS DE ADN EN GELES DE ACRILAMIDA Contenidos del tema 4: Antecedentes: método minus - plus. Secuenciación de ácidos nucleicos. Método de Maxam y Gilbert. Método de los didesoxinucleótidos. Tecnología manual, semiautomática y automática. Microesferas y pirosecuenciación. Proyectos “genoma”. Genómica. Denominación del tema 5: HIBRIDACIÓN DE ÁCIDOS NUCLEICOS Contenidos del tema 5: Hibridación en placa. Detección de una secuencia específica; marcadores moleculares de ADN. Hibridación in situ. Análisis de Southern. Polimorfismo en la longitud de los fragmentos de restricción (RFLP). Hibridación en microcuadrículas. “Chips” de ADN. Contenidos en internet: Denominación del tema 6: ESTRATEGIA GENERAL DE LA CLONACIÓN DE ADN. Contenidos del tema 6: Concepto de clon. Clonación de moléculas de ADN. Elementos: Vector y fragmentos. ADN recombinante, quimeras. Ligamiento. Introducción en células. Huésped. Integración sin vectores. Usos del ADN clonado. Denominación del tema 7: SISTEMAS PARA LA OBTENCIÓN DE FRAGMENTOS. Contenidos del tema 7: Mezcla de fragmentos no purificados: Restricción; fragmentación mecánica; ADNc. Obtención de fragmentos idénticos: Recorte de bandas de ADN. Síntesis de ADN in vitro. Denominación del tema 8: REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR). Contenidos del tema 8: Mecanismo básico. Los cabadores: secuencia y tamaño. Las polimerasas. Termocicladores. Sensibilidad. PCR cuantitativa. Un cebador (RAPD) y varios cebadores. PCR a




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partir de ARN. PCR en tiempo real. Análisis forense. Detección de polimorfismos de un solo nucleótido (SNP): hibridación o restrictasas. Otras PCR. Denominación del tema 9: LOS VECTORES. Contenidos del tema 9: Características generales de los vectores. Tipos: plásmidos y virus. Otras posibilidades: transposones. Elementos deseables en un buen vector. Resistencias a antibióticos. Usos de los marcadores de resistencia a Ab. Vectores naturales y vectores artificiales. Denominación del tema 10: PLÁSMIDOS. Contenidos del tema 10: Qué son. Los plásmidos como replicones. Rango de huéspedes. Partición. Grupos de incompatibilidad en bacterias. Forma y tamaños. Capacidad conjugativa y plásmidos coadyuvantes. Modos de replicación y número de copias. Integración de los plásmidos en el cromosoma. Escisión: formación de F’. Denominación del tema 11: PLÁSMIDOS COMO VECTORES DE CLONACIÓN EN E. coli. Contenidos del tema 11: Aislamiento en ClCs. Otros métodos de purificación. Plásmidos naturales. ColE1. Inconvenientes. Vectores artificiales. pBR322. PSC101. Multisitios de restricción. Amplificación del número de copias. Plásmidos “corredores”. Sitios de expresión. Plásmidos pUC. Denominación del tema 12: BACTERIÓFAGOS Y DERIVADOS PARA LA CLONACIÓN EN E. coli. Contenidos del tema 12: El fago Lambda. La escisión aberrante: clonación in vivo. Usos de Lambda como vector in vitro. Derivados mejorados. El halo de lisis y el tamaño del ADN como caracteres útiles en clonación. Híbridos con plásmidos: cósmidos y fásmidos. Fagos filamentosos. Uso. Plásmidos filamentosos. Denominación del tema 13: REACCIÓN DE LIGAMIENTO. Contenidos del tema 13: Vectores circulares y lineales. Extremos cohesivos y no cohesivos. Colas de homopolímeros. Ligadores y adaptadores. Ligasas. Optimización de la reacción. Concentraciones de vector y fragmentos. Temperatura. Recircularización. Tratamiento del vector con fosfatasa alcalina. Prueba rápida de la eficacia del ligamiento. Denominación del tema 14: INTRODUCCIÓN EN EL HUÉSPED. Contenidos del tema 14: Vectores plasmídicos: transformación. Electroporación. Vectores virales: transfección. Virus y cósmidos: empaquetamiento in vitro. Selección de clones. Detección de la presencia del vector. Detección de clones con ADN recombinante. Prueba rápida del tamaño del ADN clonado (minipreps). Obtención de genotecas.




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Denominación del tema 15: BÚSQUEDA DE CLONES RECOMBINANTES. Contenidos del tema 15: Fenotipos seleccionables y detectables. Presencia del ADN quimérico. Selección por métodos genéticos. Detección inmunoquímica. Detección por hibridación de ácidos nucleicos. Sondas de recombinación. Búsqueda en genotecas. Correlación ADN clonado-proteínas específicas. HRT y HART. Denominación del tema 16: EL ADN RECOMBINANTE USADO IN VITRO. Contenidos del tema 16: Subclonación. Uso del ADN como sonda. Mutagénesis dirigida: por deleciones, por replicación en presencia de mutágenos y por replicación con cebadores mutados. Uso de la mutagénesis dirigida para delimitar la actividad de secuencias de ADN. Diseño de proteínas mediante mutagénesis in vitro. Denominación del tema 17: EL ADN RECOMBINANTE USADO IN VIVO. I. Contenidos del tema 17: Expresión del ADN clonado. Requisitos básicos. Expresión en E. coli de genes propios. Expresión de genes de otros organismos. Vectores de expresión; optimización y modulación del nivel de expresión. Efectos de letalidad: influencia del número de copias. Detección de la expresión: maxicélulas y minicélulas. Denominación del tema 18: EL ADN RECOMBINANTE USADO IN VIVO. II. Contenidos del tema 18: Ingeniería Genética in vivo. Selección de inserciones de ADN recombinante en cromosomas celulares. Homologías portátiles. Sistemas bacterianos. Sistemas eucarióticos. Genética inversa. Inactivación de genes (knock-out). Inactivación por ARN de interferencia (ARNi). Denominación del tema 19: CLONACIÓN EN MICROORGANISMOS DISTINTOS DE E. coli. Contenidos del tema 19: Clonación en otras bacterias. RSF1010 de Pseudomonas. B. subtilis. Ventajas, transformación. Replicones híbridos para E. coli y B. subtilis. Vectores. Clonación en levaduras. Transformación. Marcadores. Tipos de vectores. Expresión de ADN en levaduras. Otros microorganismos eucarióticos. Denominación del tema 20: CLONACIÓN EN PLANTAS. Contenidos del tema 20: Vectores de plantas: geminivirus y caulimovirus. Clonación en plantas mediante un plásmido bacteriano. Tumores o agallas en dicotiledóneas. Agrobacterium tumefaciens. Plásmido Ti. Mecanismo de incorporación al ADN de la planta. Anatomía de Ti. Uso de Ti como vector. Regeneración de plántulas. Presente y perspectivas. Denominación del tema 21: CLONACIÓN EN CULTIVOS DE CÉLULAS DE MAMÍFERO. Contenidos del tema 21: Integración sin vectores. Marcadores seleccionables. Método de




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cotransformación con fosfato cálcico. Vectores virales. Virus SV40 y uso de sus derivados. Células COS. Virus del papiloma. Otros vectores virales. Denominación del tema 22. MICROINYECCIÓN EN ETAPAS TEMPRANAS DEL DESARROLLO ANIMAL. Contenidos del tema 22: Técnicas de microinyección. Destino del ADN microinyectado. Caso de Xenopus. Avances en mamíferos: el ratón. La ovejita Dolly y otras. Transposones en Drosophila. Potencialidades. Denominación del tema 23: APLICACIONES DE LA TECNOLOGÍA DEL ADN RECOMBINANTE. I. Contenidos del tema 23: Diseño de proteínas. Transgénicos. Microorganismos transgénicos. Biorremediación Producciones industriales. Diseño y producción de fármacos. Vegetales transgénicos. Comercialización. Animales transgénicos y clónicos transgénicos. El debate sobre los transgénicos. Denominación del tema 24: APLICACIONES DE LA TECNOLOGÍA DEL ADN RECOMBINANTE. II. Contenidos del tema 24: Aplicación en biomedicina: mecanismo básico y avances en terapia genética. Diagnosis precoz de enfermedades congénitas. Técnicas de caracterización molecular. Aplicaciones torcidas: medicina privada y conocimiento genético. Aspectos legales y éticos. El futuro: ¿GATTACA?




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Actividades formativas

Horas de trabajo del alumno por tema

Total Presencial Actividad de seguimiento No presencial

Tema GG SL TP EP 1 4 1 3 2 4 1 3 3 4 1 3 4 4 1 3 5 4 1 3 6 4 1 3

Problemas serie 1 5 3 4 7 4 1 3 8 4 1 3

Práctica 1 8 6 2 9 4 1 3

10 4 1 3 11 4 1 3 12 4 1 3

Problemas serie 2 5 3 4 13 4 1 3 14 4 1 3 15 4 1 3 16 4 1 3

Práctica 2 8 5 2 17 4 1 3 18 4 1 3

Problemas serie 3 5 3 4 19 4 1 2 20 4 1 2 21 4 1 2 22 4 1 2 23 4 1 2 24 4 1 2

Problemas serie 4 5 2 4 Práctica 3 8 5 2

Seminarios y otras actividades

8 4 6

Examen final 2 2 Total 150 40 16 94




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GG: Grupo Grande (100 estudiantes). SL: Seminario/Laboratorio (prácticas clínicas hospitalarias = 7 estudiantes; prácticas laboratorio o campo = 15; prácticas sala ordenador o laboratorio de idiomas = 30, clases problemas o seminarios o casos prácticos = 40). TP: Tutorías Programadas (seguimiento docente, tipo tutorías ECTS). EP: Estudio personal, trabajos individuales o en grupo, y lectura de bibliografía.

Sistemas de evaluación

Los estudiantes serán examinados de la asignatura según el programa aprobado para el curso académico.La asignatura se aprobará con una nota igual o superior a 5 puntos. Los instrumentos de evaluación y su ponderación serán los siguientes: - Examen: prueba individual que puede adoptar diferentes formas (desarrollo o respuesta larga, respuesta corta, tipo test, ejercicios, problemas, etc.) o ser una combinación de éstas. Ponderación: contribuirá a la nota entre un 40 y un 100% - Participación activa en el aula: método de evaluación continua basado en la participación activa del estudiante en las actividades que se desarrollan en el aula. Ponderación: contribuirá a la nota entre un 0 y un 10% - Resolución de ejercicios y problemas: prueba consistente en el desarrollo e interpretación de soluciones adecuadas a partir de la aplicación de rutinas, fórmulas, o procedimientos para transformar la información propuesta inicialmente por el profesor. Esta actividad puede realizarse en el aula o como actividad no presencial. Ponderación: contribuirá a la nota entre un 0 y un 20%. - Elaboración de trabajos y su presentación (casos prácticos, proyectos,etc.): desarrollo de un trabajo que puede ser desde breve y sencillo hasta amplio y complejo, incluso proyectos y memorias propios de últimos cursos. Esta actividad de evaluación puede también incluir la exposición del trabajo para demostrar los resultados del aprendizaje. Ponderación: contribuirá a la nota entre un 0 y un 20%. Se aplicará el sistema de calificaciones vigente en cada momento; actualmente, el que aparece en el RD 1125/2003, artículo 5º. Los resultados obtenidos por el alumno en cada una de las materias del plan de estudios se calificarán en función de la siguiente escala numérica de 0 a 10, con expresión de un decimal, a la que podrá añadirse su correspondiente calificación cualitativa: 0 - 4,9: Suspenso (SS), 5,0 - 6,9: Aprobado (AP), 7,0 - 8,9: Notable (NT), 9,0 - 10: Sobresaliente (SB). La mención de Matrícula de Honor podrá ser otorgada a alumnos que hayan obtenido una calificación igual o superior a 9.0. Su número no podrá exceder del 5 % de los alumnos matriculados en una asignatura en el correspondiente curso académico, salvo que el número de alumnos matriculados sea inferior a 20, en cuyo caso se podrá conceder una sola Matrícula de Honor.




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Aclaraciones: 1. Examen ordinario 1.1 Teoría La materia impartida será objeto de examen teórico (ver criterios de valoración) cuya superación por el alumno será requisito indispensable para obtener el aprobado en la asignatura. Caso de considerarse conveniente, en razón del desarrollo del curso, podrá acordarse por profesor y alumnos la realización de un examen eliminatorio del conjunto de la materia teórica, previo al examen oficial de Febrero. 1.2 Problemas Las clases de teoría se complementarán con clases de problemas, entendiendo que los alumnos asistentes se comprometen a resolverlos en público y serán puntuados por el profesor. La nota final de problemas se obtendrá tras normalizar la suma de calificaciones de cada alumno y normalizar en relación a la nota más alta. El profesor indicará la materia para cada clase de problemas, señalando aquellos que interese en la bibliografía recomendada. Supondrán hasta el 10% de la nota final 1.3 Prácticas de laboratorio Se realizarán de modo intensivo, en un periodo de una a dos semanas por alumno. El temario de prácticas está directamente relacionado con la materia impartida en teoría, implicando el uso de tecnología del ADN recombinante en microorganismos. La valoración de las prácticas se realizará mediante un examen por cuestiones cortas. Supondrán hasta el 15% de la calificación final y se realizarán en función de las disponibilidades de material y de la actualidad aplicada de las mismas, escogidas entre el siguiente listado:

- Electroforesis en campo pulsante de ADN de levaduras. - Aislamiento de plásmidos de Escherichia coli. - Perfil plasmídico de bacterias lácticas. - Análisis de restricción de plásmidos bacterianos. - Uso de la PCR en identificación y caracterización genómica.

1.4 Seminarios y otras actividades Previo acuerdo con el profesor, se podrá mejorar la nota final mediante la realización de actividades como seminarios o trabajos escritos sobre temas relacionados con la asignatura, pero no tratados extensamente en prácticas o teoría. Supondrán hasta el 15% de la nota final. Serán impartidos individualmente o de forma conjunta, en cuyo caso se dividiría la calificación obtenido entre el número de participantes. 2. Exámenes extraordinarios En los exámenes extraordinarios se evaluará los conocimientos teóricos y prácticos de la asignatura completa.

Bibliografía y otros recursos




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Libros de teoría - BROWN, T.A. 2008. Genomas. Médica Panamericana. Evitar el capítulo de reparación y mutagénesis. - CABALLERO, J.L., V. VALPUESTA y J.M. BLANCO. 2001. Introducción a la Biotecnología Vegetal: Métodos y Aplicaciones. Caja Sur. Córdoba. - GLICK, B.R. y J.J. PASTERNAK. 1994. Biotechnology. Principles & Applications of Recombinant DNA. ASM PressA. Washington. - IZQUIERDO ROJO, M. 2001. Ingeniería Genética y Transferencia Génica. Pirámide. Madrid. MENSUA, J.L. 2003. Genética. Problemas y Ejercicios Resueltos. Pearson. Madrid. - OLD, R.W. y S.B. PRIMROSE. 1994. Principios de Manipulación Genética. Acribia, Zaragoza. En inglés (6ª edición): Principles of Gene Manipulation. S.B. Primrose, R.M. Twyman, R.W. Old. 2001. Blackwell. Londres. - PASSARGE, E. 2004. Genética, Texto y Atlas. Panamericana. Madrid. - PERERA J., A. TORMO y J.L. GARCÍA. 2002. Ingeniería Genética. Síntesis. Madrid. - SAMBROOK, J., E.F. FRITSCH y T. MANIATIS. 1990. Molecular Cloning. A Laboratory Manual (second edition). CSHL Press. Cold Spring Harbor. - SINGER, M. y P. BERG. 1993. Genes y Genomas. Omega. Barcelona. - WALKER, J.M. y E.B. GINGOLD. 1997. Biología Molecular y Biotecnología. Acribia. Zaragoza. - WATSON, J.D., J. TOOZE y D. KURT. 1987. ADN Recombinante. Labor. Madrid. - WATSON, J.D., T.A. BAKER, S.P. BELL, A. GANN, M. LEVINE y R. LOSICK. 2006. Biología Molecular del Gen. 5ª Edición, Ed. Médica Panamericana. Madrid. Libros de problemas - REBOLLO, JE. 1991. Problemas de Genética Molecular. Servicio de Publicaciones, UNEX. Cáceres. - TORMO, A. 1998. Problemas de Genética Molecular, Editorial Síntesis. - MÉNSUA, J.L. 2003. Genética, problemas y ejercicios resueltos. Prentice Hall. Páginas web Las que se especificarán en cada tema, en información actualizada cada curso. Aula virtual de la asignatura en el Campus Virtual de la UEx, donde se dispondrá de los siguientes recursos: - materiales: presentaciones de cada tema del programa, documentos, artículos científicos, artículos de divulgación científica, noticias en medios de comunicación, animaciones, videos, - enlaces a páginas web: libros de texto,webs temáticas para ampliar y profundizar en temas concretos de la asignatura, …




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Horario de tutorías

José Emilio Rebollo Feria: martes, miércoles y jueves de 12 a 14h, despacho DG3 del Anexo de Biología.

Recomendaciones

Se aconseja que, previamente a cursar la asignatura, el estudiante haya adquirido los siguientes conocimientos/competencias: • Saber interpretar gráficos • Conocer inglés a nivel básico • Conocer los contenidos de la asignatura “Genética Molecular”

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