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Revista de la Asociación Madrileña de Veterinarios de Animales de Compañía

• Caso Clínico:

Priapismo Canino: a

proposito de 2 casos con

mala evolución

M. Lázaro, I de la Escalera

• Caso misterioso...: ¿Qué

es un parásito espurio?

N. Fernández, A. Pérez-Higueras

• Así se hace...:

Preparación del campo

quirúrgico

C. Sanchez-Mellado

• Últimas publicaciones

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nº 64 - 2014

Revista de la Asociación Madrileña de Veterinarios deAnimales deCompañía

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Caso Clínico

HSEV JN14 ANUNCIO FARMINA ARGOS_Maquetación 1 16/06/14 16:06 Página 1

La utilidad de Internet para el veterinario clínico.

Terminando el año 2014 suena ya casi prehistórico decir que Internet está al alcance de todos y que ha revolucionado la vida personal y profesional de la mayoría de nosotros los veterinarios, tanto en la manera que tenemos de comunicarnos entre nosotros como con los propietarios de nuestros pacientes. En la actualidad es raro que hagamos un informe y no lo enviemos por correo electrónico o que nuestros clientes nos conozcan a través de la página web de nuestra clínica u hospital. Decir que esta página web es un escaparate a nuestros servicios y debe ser optimizada para que atraiga al potencial cliente es también algo que todos sabemos.

Esta editorial quiere hacer hincapié en otro aspecto muy importante que puede tener Internet en la profesión, en este caso desde una perspectiva más científica y menos comercial. Decíamos en la anterior editorial de la revista Centro que “la utilidad de las revistas científicas como método de comunicación entre los veterinarios clínicos es un hecho incuestionable”. Pues bien, gracias a la difusión a través de Internet de estas revistas y a la facilidad con la que se acceden a las bases de datos de revistas médicas es posible la adquisición de numerosos artículos científicos. Pero la cosa no queda ahí, en la utilidad de Internet como herramienta para la búsqueda de la información científica, sino que, tal y como se menciona en dos de los artículos incluidos en la sección “Ultimas publicaciones en…” Internet puede ayudar en la obtención de información de propietarios de mascotas o de veterinarios clínicos que luego darán lugar a artículos científicos de gran utilidad. Por ejemplo, en el artículo publicado sobre la experiencia de los propietarios en el tratamiento de mascotas (perros y gatos) con diabetes mellitus se obtuvo información de mas de 800 propietarios de animales a lo largo de todos los Estados Unidos que muy difícilmente se podrían conseguir sin contar con Internet. El segundo artículo que merece atención es el que hace referencia a la asociación entre el estado de salud oral en gatos y su afección por retrovirus. Es interesante destacar que este estudio, que cuenta con la asombrosa cantidad de 5179 pacientes (asombrosa en el mundo veterinario donde el número de pacientes integrados en un estudio científico habitualmente es muchísimo menor), solo puede haber sido realizado gracias a la colaboración entre veterinarios pertenecientes a diversos hospitales y centros de recogida. Todos estos veterinarios recibieron formación en el tema en cuestión a través de Internet (por ejemplo seminarios online o “webinars”).

La facilidad y disponibilidad para la utilización de Internet hace que debamos considerar esta herramienta también como un método de aprovechamiento científico a la que desde AMVAC animamos a todos los socios. Aprovecho estas líneas para recordar a todos los socios que esta revista Centro Veterinario puede ser descargada fácilmente en formato .pdf a través del enlace: http://www.amvac.es/revista-centro-veterinario.php

Atentamente,

Isidro Mateo Dirección editorial revista CENTRO

Editorial

Caso Clínico

4

ResumenEl priapismo se define como una erección persistente

del pene, frecuentemente dolorosa, que dura más de 4 horas en ausencia de estímulo o deseo sexual. Se trata de una pato-logía poco frecuente en los perros y apenas existe bibliogra-fía al respecto. En el caso de los gatos es aún más infrecuente, habiéndose descrito en pocos casos (siendo significativo que la mayoría de los casos se tratasen de gatos raza siames) re-lacionados con traumatismos tras un reciente acoplamiento o en ejemplares con peritonitis infecciosa felina. En este ar-tículo se aborda la fisiopatología y los posibles tratamientos de este proceso y se describen dos casos clínicos.

Abstract

Priapism is defined as a persistent erection of the penis, frequently painful that longs more than 4 hours, in absence of stimulus or sexual desire. It is an infrequent pathology in dogs with low number of cases described in the veterinary literatu-re. It is even more uncommon in cats (with relevant number of cases belonging to the siamese breed) and it is related with trauma after coupling or in cats affected with feline infectious peritonitis virus. This report focuses on pathophysiology and treatment for priapism and describes two clinical cases.

Palabras clave

Priapismo, parafimosis, pene, fisiopatología de la erec-ción.

Key words

Priapism, paraphimosis, penis, erection pathophysio-logy

Introducción

El priapismo, definido como una erección persistente del pene, frecuentemente dolorosa y que dura más de 4 ho-

ras en ausencia de estímulo o deseo sexual debe ser diferen-ciado de la parafimosis, patología en la que en ausencia de erección peneana, aparece una marcada congestión.1 En la parafimosis existe una dificultad para regresar el pene al in-terior de la vaina prepucial (imagen 1) que puede deberse a un reducido orificio prepucial, a una longitud inadecuada del prepucio, a debilidad de los músculos retractores del pene o traumatismos.1 El diagnóstico se basa en la exploración física, siendo importante valorar la apertura prepucial para diferenciar priapismo y parafimosis, ya que el tratamiento corrector y su pronóstico difieren en gran medida.

En medicina humana el priapismo se diferencia entre no isquémico o de flujo arterial alto, frente al isquémico, veno-oclusivo, o de bajo flujo.2 El priapismo isquémico es consi-derado una emergencia en las personas y está causado por congestión venosa y aumento de la viscosidad de la sangre, asociándose a menudo con tromboembolismo, enfermedad de células falciformes, discrasias hematológicas, hemodiálisis,

Priapismo Canino: a proposito de 2 casos con mala evolución

Canine priapism. Description of two clinical cases with bad prognosis

Manuel Lázaro Rubio, Inmaculada de la Escalera Hueso

Centro Veterinario Mirasierra. C/ Cambrils 14, 28034, Madrid

Contacto: [email protected]

Imagen 1. Parafimosis en un perro. Obsérvese la incapaci-dad del pene de regresar a la vaina prepucial y la conges-tión del glande en ausencia de erección peneana.

Priapismo Canino: a proposito de 2 casos con mala evolución - M. Lázaro, I. de la Escalera

5

nutrición parenteral, terapia con heparina, drogas vasoacti-vas, neoplasias, lesiones de la médula espinal y a consecuencia de la anestesia, que provoca una estimulación parasimpática prolongada.2 El priapismo no isquémico, producido por el flu-jo arterial aumentado a través de los cuerpos cavernosos, es a menudo causado por un traumatismo, pero también puede ser el resultado de la acción de fármacos vasoactivos y ciertos trastornos neurológicos. En medicina humana la diferencia-ción entre estos dos tipos de priapismo se establece en base a los resultados de la ecografía Doppler (evidenciándose fís-tulas arteriocavernosas) y en la gasometría del aspirado de la sangre de los cuerpos cavernosos.2

En el perro, entre las posibles causas descritas se incluyen infección urinaria crónica, afección lumbosacra, compresión neurovascular por masa pelviana o abdominal (prostatomegalia, megacolon, etc), traumatismo peneano, tromboembolismo, y de origen idiopático.3 La diferenciación entre priapismo isquémico o no isquémico resulta complica-da de realizar y no es imprescindible para el enfoque tera-péutico. Si es importante la valoración de la urgencia, basada en el estado del animal, la presencia de dolor y, fundamen-talmente, la consideración del estado del pene. El priapis-mo isquémico es causante de importante dolor, además de precisar una mayor urgencia terapéutica, mientras que en el priapismo no isquémico el dolor es menor y el paso del tiempo no tiene efectos tan catastróficos.2

Dentro de la fisiopatología del priapismo se debe con-siderar que el nervio pudendo (las raíces nerviosas que lo forman se originan en segmentos medulares S1-S3) es res-ponsable de la sensibilidad peneana. La erección se produce cuando los estímulos parasimpáticos, a través del nervio pélvico (segmentos medulares S1-S2) hacen que se incre-mente de forma activa el flujo sanguíneo arterial hacia los cuerpos cavernosos y disminuya el drenaje venoso mediante la contracción de las fibras de músculo liso que lo rodean. La presión interna soportada por la túnica albugínea, hace que los cuerpos cavernosos se vuelvan rígidos. Después de la intromisión, la contracción de los músculos constrictores del vestíbulo vulvar de la hembra, estimulan de forma refleja la contracción isquioretral en el macho, lo que provoca una

oclusión parcial venosa con la erección de los bulbos pe-neanos y el glande (imagen 2). Los estímulos simpáticos a través del nervio hipogástrico (segmentos medulares L1-L4) contrarrestan estos efectos. Como causa del priapismo se ha postulado una disregulación de este mecanismo de control de la erección a nivel peneano, o en niveles superiores, in-cluidos los sistemas nerviosos central y periférico.2

El diagnóstico del priapismo es clínico, se realiza mediante la inspección del pene y no entraña dificultades, aunque, como ya se ha referido previamente, debe diferen-ciarse de la parafimosis. Las pruebas complementarias que deben realizarse para identificar la etiología subyacente son: análisis de sangre y de orina, examen completo del aparato reproductor (incluyendo radiología y ecografía abdominal) y evaluación radiológica de la columna vertebral. En los casos en los que se sospeche de una patología neurológica subya-cente se debe valorar la realización de análisis de líquido cefalorraquídeo o pruebas de imagen avanzadas (resonancia magnética).4

Descripción de casos clínicos

Caso 1

Tano, podenco andaluz, de 30 kg de peso, de 8 años de edad, entero, que pertenece a una rehala de caza mayor. Es remitido a consulta por presentar una fuerte erección detec-tada cuatro horas antes, aunque el propietario desconocía el momento del inicio del problema ya que no había visto al paciente desde el día anterior.

Durante el examen físico el paciente se mostraba muy molesto, sin querer echarse, y se apreciaba exudación sero-sanguinolenta a través de la superficie peneana. El pene se encontraba en erección y expuesto fuera de la vaina prepu-cial con una marcada congestion venosa (imagen 3). Tras la exploración se realizó un tratamiento urgente de soporte, procediéndose al lavado del pene con suero salino, aplica-ción de gel lubricante y reintroducción parcial dentro del

Imagen 2. Imagen esquemática del pene canino. Obsér-vense la disposición de las distintas estructuras vasculares encargadas de la irrigación del pene.

Imagen 3. Priapismo en un perro. Obsérvese la erección peneana con marcada congestión.

Caso Clínico

6

prepucio. Se realizaron radiografías de columna, así como análisis de sangre y orina, no detectándose más alteración que la existencia de leucocitos en orina (6 por campo). Se consideró un diagnóstico inicial de priapismo idiopático o secundario a una infección urinaria (debido a la presencia de leucocitos en orina).

Como tratamiento se aplicaron inyecciones intraca-vernosas de metoxamina a una concentración de 2 mg/ml (Metoxamina wellcome, Wellcome farmaceutica S.A., Tres Cantos). Se inocularon inicialmente 4 ml, repartidos en 4 puntos; repitiéndose a la hora y a las 3 horas, momento en el que la erección disminuyó ligeramente, quedando el pene bien protegido por la vaina prepucial. Estas inyeccio-nes, en contra de lo que pudiera parecer, no son molestas para el animal, tolerándolas sin necesidad de sedación o anestesia. En contra de las recomendaciones de hospitali-zación el propietario solicitó el alta voluntaria por lo que se

inició tratamiento con enrofloxacino (Baytril sabor 150mg, Bayer, Sant Joan Despí) a dosis de 5mg/kg/12h y colocación de collar isabelino con la recomendación de revisar en 24 horas. El paciente no acude nuevamente a consulta hasta pasados 2 días, momento en el que el pene presenta colora-ción violácea, con zonas claramente isquémicas (imagen 4). La decisión terapéutica en ese momento fue proceder a la amputación del pene y realizar orquidectomia y uretrosto-mía preescrotal (imagen 5. El postoperatorio y la evolución posterior fueron satisfactorios.

Caso 2

Es remitido para evaluación Leónidas, pastor alemán de 12 años, de 40 kg de peso, entero con paraparesia no am-bulatoria e incontinencia urinaria y fecal. El paciente había sido diagnosticado previamente de estenosis lumbosacra (síndrome de cauda equina) por lo que estaba siendo me-dicado con gabapentina (Gabapentina 400mg cápsula dura, Rathiopharm España, Madrid) (10mg/kg/12h), cefalexina (12,5mg/kg/12h) (Kefloridina forte, Ciclum S.L., Sant Just Desvern) y prednisolona (0.4mg/kg48h) (Prednisona Cinfa, Cinfa, Huarte). Durante el procesado de las pruebas com-plementarias el paciente sufre una marcada erección que no desaparece en las siguientes horas, aun a cuando el pene es recolocado y lubrificado dentro de la vaina prepucial. Se mantiene al animal con una infusión de buprenorfina para controlar el dolor y proporcionar leve sedación. Durante su hospitalización el paciente se produce un autotraumatis-mo peneano con automutilización casi completa del pene (imagen 6), provocado por el lamido incesante de la región (consecuencia probable de la pérdida de sensibilidad). En ese momento, dada la situación del paciente, los propietarios optan por la eutanasia del mismo.

Discusión

Aunque está descrita la recuperación espontánea de algunos pacientes caninos con priapismo, el tratamiento

Imagen 4. Automutilación peneana. Obsérvese la pérdida casi total del pene por autotraumatismo.

Imagen 5. Mismo paciente que el representado en la imagen 3 tras 48 horas de evolución sin manejo adecuado.Obsérvese el deterioro en el estado del pene.

Imagen 6. Automutilación peneana.Obsérvese la pérdida casi total del pene por autotraumatismo”.

Priapismo Canino: a proposito de 2 casos con mala evolución - M. Lázaro, I. de la Escalera

requiere por un lado la identificación y corrección de la etiología subyacente, y por otro la terapia sintomática para evitar la desecación y necrosis del pene.4 Los cuida-dos de soporte del pene requieren su higiene periódica, la aplicación de lubricantes que impidan su desecación y el uso de collares isabelinos para evitar el autotraumatismo por lamido. Es determinante la urgencia en tomar medidas en las primeras horas tras la aparición del proceso, pues el paso del tiempo complica enormemente el pronóstico y limita las opciones terapéuticas. Desde el punto de vista farmacológico se ha demostrado la eficacia de fármacos α-adrenérgicos como la fenilefrina (no disponible en nues-tro país), etilefrina, efedrina y pseudoefedrina (fármacos usados en rinitis, asma y otros procesos alérgicos), me-toxamina o adrenalina.2 La mayor eficacia se consigue con inyecciones de etilefrina (2-6mg) o metoxamina (2-10mg) en los cuerpos cavernosos, siendo recomendable el aspi-rado previo de la sangre de los cuerpos cavernosos. Los pacientes deben ser monitorizados por los posibles efectos cardiovasculares adversos. En medicina humana está des-crito como tratamiento del priapismo de bajo flujo el uso de inyecciones repetidas durante largos periodos de tiempo (varias semanas o incluso meses) hasta que el proceso se resuelva. Si la respuesta a las inyecciones intracavernosas no tiene éxito en 48-72 h, en medicina humana se aconse-ja una intervención quirúrgica para crear shunt entre los cuerpos cavernosos y la vena safena. La medicación oral

con pseudoefedrina (1-2mg/kg/12h) es una alternativa descrita de manera anecdótica en perros con priapismo de bajo flujo. En aquellos casos en los que exista un daño severo del pene, la amputación del mismo, acompañada de uretrostomia escrotal o preescrotal puede ser la única alternativa. La uretrostomía perineal debe evitarse siempre que se pueda en los perros, ya que con frecuencia es causa de dermatitis muy complejas de corregir.5

En los 2 casos presentados, las características clínicas y de manejo que presentaban los pacientes (escaso seguimien-to y colaboración del propietario en un caso y disfunción neurológica grave en el segundo) condujeron a los malos resultados.

Bibliografía1. Kustritz MV, Olson PN. Theriogenology question of the month. Priapism or

paraphimosis. J Am Vet Med Assoc 1999;214:1483-1484.

2. Lavely JA. Priapism in dogs. Top Companion Anim Med 2009;24:49-54.

3. Root Kustritz MV. Disorders of the canine penis. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2001;31:247–257.

4. Enfermedades del pene y el prepucio. En: Feldman y Nelson: Endocrino-logía y reproducción canina y felina (3ª ed.). Buenos Aires, Inter.-Medica 2007:1065-1073.

5. Cirugía del aparato genital y reproductor. En: Fossum TW: Cirugía en pe-queños animales (3ª ed.). Buenos Aires, Inter.-Medica 2009:702-774

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Objetivo del estudio

Determinar parámetros farmacocinéticos (PKs) de cimicoxib a 2mg/kg 24 horas tras su admi-nistarción oral durante 10 días, antes y despues de la inducción experimental de enfermedad re-nal moderada en perros.

Metodología

• 8 perros adultos, edad 15 +/-4 meses y peso 8.9 +/-0.61 kg.

• Evaluación de parámetros renales a día 0, se-guido de un periodo de lavado de 3 semanas.

• Tras el primer periodo de lavado los perros recibieron cimicoxib a 2mg/kg 24 horas PO durante 10 días. La farmacocinética (PK) de cimicoxib fue determinada los dias 0 y 9.

• Despues de un segundo periodo de lavado de dos semanas los perros fueron sometidos a cirugía para la inducción experimental de enfermedad renal. Seguido de un periodo de recuperacion posquirúrgico de dos semanas.

• Tras su recuperación, se evaluaron los pará-metros renales.

• Posteriormente y tras un nuevo perido del lava-do, los perros con enfermedad renal recibieron 2mg/kg 24 horas de cimicoxib durante 10 días, y se determinó la PK de cimicoxib a día 0 y 9.

• Modelo de enfermedad renal: bajo anestesia general se realizó nefrectomía derecha y elec-trocuagulación del cortex renal izquierdo.

• Evaluación de la función renal: tasa de filtra-ción glomerular (GFR) y flujo plasmático renal efectivo (aclaramiento plasmático de iohexol y aclaramiento plasmático de PAH) (ERPF).

• Se realizaron hematologias y bioquímicas completas al mismo tiempo

Resultados

Resultados del modelo de enfermedad renal:• Disminución de la GFR 59% y ERPF 58%.• Incremento de BUN, creatinina, Ca y albúmina.• Disminución del peso corporal.• Disminución de WBC, RBC, Hb, HT, linfoci-

tos, monocitos y basófilos tras la inducción de enfermedad renal.

Farmacocinética del Cimicoxib en perros sanos y con enfermedad renal

E. Jeunesse, H. Lefevre, J. Braun, M. lacroix, M. Schneider.1.- (Veterinaria, Research Scientist), (Veterinario, Nutritionist), 2.- Research Group, Affinity Petcare, S.A.

Cimicoxib es un antiinflamatorio no esteroideo (AINE). Como la mayoría de los AINEs tiene un importante metabolismo hepático y sus metabolitos son principalmente eliminados por heces. Los AINEs como el cimicoxib se prescriben frecuentemente en perros mayores que sufren osteoartrosis. Estos perros pueden tener enfermedad renal subclínica. Se sabe que los AINEs son fármacos potencialmente nefrotóxicos, ya que disminuyen la producción de prostaglandinas y prostaciclinas vasodilatadoras. Por este motivo, es importante saber si la farmacocinétia de estos fármacos se ve modificada en perros con alteraciones de la función renal.

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Farmacocinética del cimicoxib en perros sanos y con enfermedad renal.

E. Jeunesse, H Lefevre, J Braun, M lacroix, M Schneider.Data on file, registro EMEA

Introducción Cimicoxib es un antiinflamatorio no esteroideo (AINE). Como la mayoría de los AINEs tiene un importante metabolismo hepático y sus metabolitos son principalmente eliminados por heces. Los AINEs como el cimicoxib se prescriben frecuentemente en perros mayores que sufren osteoartrosis. Estos perros pueden tener enfermedad renal subclínica. Se sabe que los AINEs son fármacos potencialmente nefrotóxicos, ya que disminuyen la producción de prostaglandinas y prostaciclinas vasodilatadoras. Por este motivo, es importante saber si la farmacocinétia de estos fármacos se ve modificada en perros con alteraciones de la función renal.

Metodología• 8 perros adultos, edad 15 +/-4 meses y

peso 8.9 +/-0.61 kg.

• Evaluación de parámetros renales a día 0, seguido de un periodo de lavado de 3 semanas.

• Tras el primer periodo de lavado los perros recibieron cimicoxib a 2mg/kg SID PO durante 10 días. La PK de cimicoxib fue determinada los dias 0 y 9.


• Tras su recuperación, se evaluaron los parámetros renales.

• Posteriormente y tras un nuevo perido del lavado, los perros con enfermedad renal recibieron 2mg/kg SID de cimicoxib durante 10 días, y se determinó la PK de cimicoxib a día 0 y 9.

• Modelo de enfermedad renal: bajo anestesia general se realizó nefrectomía derecha y electrocuagulación del cortex renal izquierdo.

• Evaluación de la función renal: tasa de filtración glomerular (GFR) y flujo plasmático renal efectivo (aclaramiento plasmático de iohexol y aclaramiento plasmático de PAH) (ERPF).

• Hematologías y bioquímicas completas fueron realizadas al mismo tiempo.

Objetivo del estudio • Determinar parámetros PKs de cimicoxib a 2mg/kg SID tras su administarción oral durante 10 días,

antes y despues de la inducción experimental de enfermedad renal moderada en perros.

Resultados Resultados del modelo de enfermedad renal:

• Disminución de la GFR 59% y ERPF 58%.

• Incremento de BUN, creatinina, Ca y albúmina.

• Disminución del peso corporal.

• Disminución de WBC, RBC, Hb, HT, linfocitos, monocitos y basófilos tras la inducción de enfermedad renal.

Parámetro Perros sanos Enfermos renales Valor P

GFR (mL/kg/min) 2.5 +/- 0.38 1.0 +/- 0.32 <0.001*

ERPF (mL/min/kg) 6.7+/-1.24 2.7 +/-0.83 <0.001*

Urea (mmol/L) [1.6-10.9] 6.2+/-2.64 13.9+/-4.90 0.000*

Creatinina (µmol/L) [44-133] 71.1 +/-12.32 203.1+/-69.48 0.001*

Ca (mmolo/L) [2.4-3.0] 2.68 +/-0.1 2.87 +/-0.092 0.000*

Albúmina (g/L) [23-39] 30.6+/-1.4 28.5+/-1.26 0.033*

WBC (x 103) [6-17] 13.1 +/-2.48 10.6 +/-2.73 0.025*

RBC (x106) [5.5-8.5] 6.6 +/- 0.57 6.1 +/-0.62 0.036*

HGB (g/dL) [12-18] 15.7 +/-1.32 14.0+/-1.51 0.002*

Hct (%) [37-55] 43.8 +/-3.27 41.9+/-3.45 0.041*

MCHC (g/dL) [32-36] 35.7+/-0.62 33.5 +/-0.9 0.000.

RDW-CV (%) [11.5-17.0] 16.5+/-1.15 15.1 +/-1.59 0.042*

Linfo (x103/µL) [1-4.8] 4.3 +/-0.97 3.3+/-1.21 0.011*

Mono (x103/µL) [0.2-1.4] 1.1 +/-0.36 0.67 +/-0.145 0.006*

Baso (x103/µL) [rare] 0.04+/-0.012 0.02+/-0.007 0.006*

* Clinicamente relevante

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peso 8.9 +/-0.61 kg.

















GFR (mL/kg/min) 2.5 +/- 0.38 1.0 +/- 0.32 <0.001*

ERPF (mL/min/kg) 6.7+/-1.24 2.7 +/-0.83 <0.001*

Urea (mmol/L) [1.6-10.9] 6.2+/-2.64 13.9+/-4.90 0.000*


Ca (mmolo/L) [2.4-3.0] 2.68 +/-0.1 2.87 +/-0.092 0.000*

Albúmina (g/L) [23-39] 30.6+/-1.4 28.5+/-1.26 0.033*

WBC (x 103) [6-17] 13.1 +/-2.48 10.6 +/-2.73 0.025*

RBC (x106) [5.5-8.5] 6.6 +/- 0.57 6.1 +/-0.62 0.036*

HGB (g/dL) [12-18] 15.7 +/-1.32 14.0+/-1.51 0.002*

Hct (%) [37-55] 43.8 +/-3.27 41.9+/-3.45 0.041*

MCHC (g/dL) [32-36] 35.7+/-0.62 33.5 +/-0.9 0.000.

RDW-CV (%) [11.5-17.0] 16.5+/-1.15 15.1 +/-1.59 0.042*

Linfo (x103/µL) [1-4.8] 4.3 +/-0.97 3.3+/-1.21 0.011*

Mono (x103/µL) [0.2-1.4] 1.1 +/-0.36 0.67 +/-0.145 0.006*

Baso (x103/µL) [rare] 0.04+/-0.012 0.02+/-0.007 0.006*


PA35

7 PA355

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CONCLUSIÓN

Aunque los AINEs son fármacos potencialmente nefrotóxicos este estudio muestra que la farmacocinética del cimicoxib no se ve afectada en perros con enfermedad renal moderada. Esto ofrece al veterinario una opción cuando el tratamiento con AINEs no pueda evitarse dado que el cimicoxib no se acumula en perros sanos. Aún así, los parámetros renales debieran ser monitorizados y los dueños debieran ser informados de los posibles efectos adversos de estos fármacos, tales como vómitos y diarrea. En caso de observar incrementos en los parámetros renales o reacciones adversas, el tratamiento debiera ser interrumpido.

DiscusiónEl modelo de enfermedad renal fue efectivo dado que disminuyó la GFR y ERPF más de un 50% en relación a los valores iniciales. Aun con estas alteraciones, la farmacocinética del cimicoxib no se vio alterada. La metabolización del cimicoxib es mayoritariamente hepática (90%) y no se observa acumulación de cimicoxib tras su administración repetida tanto en perros sanos como en perros con enfermedad renal.

Perfil de concentración plasmàtica media de iohexol +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción

de enfermedad renal

Perfil de concentración plasmàtica media de PAH +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción

de enfermedad renal600 -

500 -

400 -

300 -

200 -

100 -

0 -0 60 -120 --180 -240 --300 -360 -420 480 540 600

Conc

entra

ción

(µg/

mL)

Tiempo (min)

Perros sanos Perros con enfermedad renal

100 -

90 -

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60 -

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40 -

30 -

20 -

10 -

0 -0 60 -120 --180 -240 --300 -360 -420 480 540 600

Conc

entra

ción

(µg/

mL)

Tiempo (min)


Farmacocinética: no se observaron cambios en ninguno de los parámetros PKs en los perros con enfermedad renal inducida.

Sanos Enfermos renales

Parámetro PK Día 0 Día 9 Día 0 Día 9 Valor P

Cmax (µg/L) 577.6+/-225.52 737.8+/-239.26 582.8+/-237.84 610+/-217.73 >0.05

Tmax (h) 3.8 +/-2.42 4.0+/-2.14 4.5+/-1.77 4.2+/-2.98 >0.05

AUCO-24h(h*µg/L) 3518+/-982.5 4240+/-1038.4 3980+/-1552.0 4785+/-1989.4 >0.05

Valor próximo a 1= Ausencia de acumulación de cimicoxib en perros sanos o con enfermedad renal.

Parámetro AUC ratio D9/D0: - Sanos: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.27+/-0.363

- E. renales: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.22+/-0.367

Perfil de concentración plasmàtica media de iohexol +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción de enfermedad renal

Perfil de concentración plasmàtica media de PAH +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción de enfermedad renal

Discusión

El modelo de enfermedad renal fue efectivo dado que disminuyó la GFR y ERPF más de un 50% en relación a los valores iniciales. Aun con estas alteraciones, la farmacocinética

del cimicoxib no se vio alterada. La meta-bolización del cimicoxib es mayoritariamente hepática (90%) y no se observa acumulación de cimicoxib tras su administración repetida tanto en perros sanos como en perros con enfermedad renal.

PA35

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By

CONCLUSIÓN

Aunque los AINEs son fármacos potencialmente nefrotóxicos este estudio muestra que la farmacocinética del cimicoxib no se ve afectada en perros con enfermedad renal moderada. Esto ofrece al veterinario una opción cuando el tratamiento con AINEs no pueda evitarse dado que el cimicoxib no se acumula en perros sanos. Aún así, los parámetros renales debieran ser monitorizados y los dueños debieran ser informados de los posibles efectos adversos de estos fármacos, tales como vómitos y diarrea. En caso de observar incrementos en los parámetros renales o reacciones adversas, el tratamiento debiera ser interrumpido.

DiscusiónEl modelo de enfermedad renal fue efectivo dado que disminuyó la GFR y ERPF más de un 50% en relación a los valores iniciales. Aun con estas alteraciones, la farmacocinética del cimicoxib no se vio alterada. La metabolización del cimicoxib es mayoritariamente hepática (90%) y no se observa acumulación de cimicoxib tras su administración repetida tanto en perros sanos como en perros con enfermedad renal.

Perfil de concentración plasmàtica media de iohexol +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción

de enfermedad renal

Perfil de concentración plasmàtica media de PAH +/-SD vs. tiempo en 8 perros Beagle antes y depues de la inducción

de enfermedad renal600 -

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0 -0 60 -120 --180 -240 --300 -360 -420 480 540 600

Conc

entra

ción

(µg/

mL)

Tiempo (min)



Sanos Enfermos renales

Parámetro PK Día 0 Día 9 Día 0 Día 9 Valor P

Cmax (µg/L) 577.6+/-225.52 737.8+/-239.26 582.8+/-237.84 610+/-217.73 >0.05

Tmax (h) 3.8 +/-2.42 4.0+/-2.14 4.5+/-1.77 4.2+/-2.98 >0.05

AUCO-24h(h*µg/L) 3518+/-982.5 4240+/-1038.4 3980+/-1552.0 4785+/-1989.4 >0.05


Parámetro AUC ratio D9/D0: - Sanos: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.27+/-0.363

- E. renales: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.22+/-0.367


CONCLUSIÓNAunque los AINEs son fármacos potencialmente nefrotóxicos este estudio muestra que la farmacocinética del cimicoxib no se ve afectada en perros con enfermedad renal moderada. Esto ofrece al veterinario una opción cuando el tratamiento con AINEs no pueda evitarse dado que el cimicoxib no se acumula en perros sanos o con insuficiencia renal. Aún así, los parámetros renales deberán ser monitorizados y los dueños deben ser informados de los posibles efectos adversos de estos fármacos, tales como vómitos y diarrea. En caso de observar incrementos en los parámetros renales o reacciones adversas, el tratamiento debe ser interrumpido.


Parámetro AUC ratio D9/D0:

- Sanos: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.27+/-0.363

- E. renales: AUC0-24hD9/ AUC0-24hD0= 1.22+/-0.367}

By





peso 8.9 +/-0.61 kg.

















GFR (mL/kg/min) 2.5 +/- 0.38 1.0 +/- 0.32 <0.001*

ERPF (mL/min/kg) 6.7+/-1.24 2.7 +/-0.83 <0.001*

Urea (mmol/L) [1.6-10.9] 6.2+/-2.64 13.9+/-4.90 0.000*


Ca (mmolo/L) [2.4-3.0] 2.68 +/-0.1 2.87 +/-0.092 0.000*

Albúmina (g/L) [23-39] 30.6+/-1.4 28.5+/-1.26 0.033*

WBC (x 103) [6-17] 13.1 +/-2.48 10.6 +/-2.73 0.025*

RBC (x106) [5.5-8.5] 6.6 +/- 0.57 6.1 +/-0.62 0.036*

HGB (g/dL) [12-18] 15.7 +/-1.32 14.0+/-1.51 0.002*

Hct (%) [37-55] 43.8 +/-3.27 41.9+/-3.45 0.041*

MCHC (g/dL) [32-36] 35.7+/-0.62 33.5 +/-0.9 0.000.

RDW-CV (%) [11.5-17.0] 16.5+/-1.15 15.1 +/-1.59 0.042*

Linfo (x103/µL) [1-4.8] 4.3 +/-0.97 3.3+/-1.21 0.011*

Mono (x103/µL) [0.2-1.4] 1.1 +/-0.36 0.67 +/-0.145 0.006*

Baso (x103/µL) [rare] 0.04+/-0.012 0.02+/-0.007 0.006*


Caso Misterioso

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Historia clínica

Es remitido a consulta un perro mestizo, hembra de 2 años, castrada con peso de 29,3kg por un cuadro de diarrea líquida y presencia de vermes en las heces sin que se apreciase pérdida de peso. Al paciente se le había desparasitado con Drontal Plus ® (praziquantel, pamoato de pirantel y febantel) hacía mas de tres meses, estaba siendo alimentado con pienso de gama baja com-prado en supermercado y convivia con otros perros en los que no se ejercía control antiparasitario en el exterior de una casa. Tras la exploración física completa del animal en la que no se observa-ron alteraciones fisiológicas reseñables, se realizó la petición de un coprológico seriado de tres días consecutivos para confirmar o descartar la presencia de formas parásitas que pudiesen ser la causa etiológica de la diarrea que sufría el paciente. La técnica coprológica de elección en carnívoros es el método de Telemann

modificado, sin embargo, en los laboratorios en los que se realiza diagnóstico parasitológico de forma rutinaria, o en aquellos casos en los que se sospecha de la presencia de Giardia spp. todas las muestras recibidas son analizadas también con la técnica de MIF (mertiolato yodo formalina), método de elección para estos agen-tes parasitarios. Los resultados que se detallan a continuación fueron obtenidos tras el procesado y lectura de las muestras. A pesar de la consistencia semiforme de las heces y la ausencia de formas parásitas macroscópicas en los días en los que se realizó la recogida, en el análisis microscópico se pudo observar la pre-sencia de abundantes fibras vegetales, restos de alimento digeri-do, sobrecrecimiento bacteriano moderado y similar en las tres muestras, abundantes quistes de Giardia spp., huevos de Toxocara canis y cuatro huevos del parásito representado en la imagen 1. Asimismo se evidenciaron numerosas levaduras (Cyniclomyces. guttulatus).

¿Qué es un parásito espurio?Nélida Fernández Pato1, Alba Pérez-Higueras García-Largo2

1 Docente Servicio de Parasitología y Enfermedades Parasitarias, Hospital Clínico Veterinario - Universidad Alfonso X el Sabio.2 Hospital Clínico Veterinario – Universidad Alfonso X el Sabio

Avenida de la Universidad nº1 28691, Villanueva de la Cañada, Madrid, España


Imagen 1: Formas parasitarias encontradas mediante método de flotación simple. Vista macroscópica mediante objetivo 40X.

1. ¿A que forma parasitaria corresponde el huevo de la imagen 1?

2. ¿Qué técnicas o métodos coprológicos se utilizan en carnívoros y en qué consisten?

3. ¿Un análisis coprológico sólo identifica agentes parasitarios?

4. ¿Cuáles de los parásitos encontrados en nuestro paciente pueden considerarse parásitos espurios?

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Caso Misterioso

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1. ¿A que forma parasitaria corresponde el huevo de la imagen 1?

Por las características morfológicas de la cubierta externa del huevo, capa media albuminosa, presencia de aparato piriforme y embrión hexacanto en su interior se concluyó que se trataba de un Anoplocefálido (imagen 1). Sin embargo los carnívoros no se ven afectados por estos parásitos a diferencia de los équidos, ovejas, vacas, conejos o roedores. Tras realizar las mediciones en longitud y anchura del huevo, y tras encontrar características morfológicas idénticas a las observadas también en huevos de Anoplocefálidos

equinos, se identificaron estos huevos como Cittotaenia (sin. Mos-govoyia) pectinata pectinata (Goeze, 1782), cestodo de conejos y liebres descritos en la comunidad de Madrid en 19541. Tras cum-plimentar la encuesta epidemiológica, los datos relacionados con el hospedador y el medio ambiente nos permitieron conocer que el perro se infectó al salir al campo por ingestión de uno de los hospe-dadores definitivos de este cestodo, un conejo o una liebre.

2. ¿Qué técnicas o métodos coprológicos se utilizan en carnívoros y en qué consisten?

Los métodos laboratoriales utilizados para el diagnóstico de endoparásitos digestivos son distintas técnicas que forman parte de la coprología y que incluyen análisis macroscópicos y microscópicos realizados con las muestras de heces. En este caso clínico el propie-tario confirmó haber detectado vermes en las heces. Por este motivo entre otros, se necesitó la confirmación etiológica para la aplicación de un tratamiento antiparasitario adecuado. Independientemente del método coprológico utilizado, el primer paso de cualquier co-prología es el examen macroscópico de las heces que nos permitirá visualizar no solo sus características organolépticas sino, en algunos casos, la detección de formas parásitas macroscópicas como son los anillos grávidos de cestodos, o parásitos completos como Toxocara spp. o Toxascaris leonina (imagen 2). Para el diagnóstico de endopa-rásitos digestivos en carnívoros, la técnica coprológica de elección, es el método de Telemann modificado, técnica indirecta, basada en la concentración de formas parásitas. Para realizar esta técnica utilizamos ácido acético al 5% para disgregar las heces y después éter, consiguiendo así eliminar la capa grasa y una mejor visualiza-ción del sedimento. Esta técnica se realiza a su vez utilizando dos tipos de análisis coprológicos, uno mediante lectura del sedimento resultante del procesado de la muestra y otro, mediante flotación simple de dicho sedimento utilizando cualquier solución densa como puede ser la solución salina saturada o el sulfato de zinc. El método de Telemann modificado recibe el nombre de coprológico rutinario cuando se realiza sobre una única muestra, o bien análi-sis coprológico seriado cuando analizamos muestras recogidas en días consecutivos, oscilando el número de tres a cinco. La elección de un tipo de análisis coprológico u otro, se realiza en función de la anamnesis y de la historia clínica del animal, entre otros aspectos. En aquellos casos en los que el paciente de forma repetida y alter-nante en el tiempo, o bien en el momento de la consulta, presenta las heces con pérdida de consistencia o existencia de diarrea, se pedirá un análisis coprológico seriado. La elección del número de muestras recogidas y analizadas varía, aunque en todos los casos debemos destacar la importancia que tiene el hecho de que dicha toma de muestras debe realizarse en días consecutivos debido a la excreción intermitente de algunos agentes parasitarios como por ejemplo Giardia spp. (imagen 3), que pueden ser responsables de diarreas crónicas e intermitentes en los carnívoros.

El método de MIF (mertiolato yodo formalina), es una técnica de análisis coprológico que tiñe y conserva las formas parásitas presentes en las heces. Después del disgregado y filtrado de la muestra, se utilizan dos soluciones stock, la solución A formada por agua destilada, timerosal (1:1000) formaldehído y glicerina y la solución B que contiene, agua destilada, yoduro potásico y cristales de yodo. Esta técnica se utiliza para facilitar la detección de formas parásitas de pequeño tamaño como Giardia spp. o Entamoeba spp.

Imagen 1. Huevos de Cittotaenia pectinata pectinata. Vista microscópica con objetivo 40X tras método de flotación simple. Obsérvese el aparato piriforme el interior (flechas).

Imagen 2. Huevos de Toxocara canis vista microscópica con objetivo de 4X y 40x (inserción), en la que se puede apreciar la presencia de huevos de este ascárido en elevado número debido a la prolificidad del agente etiológico En la imagen a 40X se pueden apreciar las tres cubiertas que protegen al huevo en el medio ambiente, siendo la tercera rugosa, ocupando todo el interior observamos el embrión.

13

3. ¿Un análisis coprológico sólo identifica agentes parasitarios?

Cualquier análisis de heces comienza con el estudio macros-cópico de la muestra, en el que como se ha comentado con ante-rioridad podemos valorar la presencia de fibrina, moco, sangre, grasa, fibras vegetales o restos de alimento no digerido. Tras este análisis se efectúa el estudio microscópico de la muestra y, en este caso, además de la identificación de formas parásitas, se valora la presencia o no de sobrecrecimiento bacteriano, la cantidad de almidón, la presencia de fibras no vegetales o restos de alimento digerido, e incluso la presencia de levaduras como Cyniclomyces guttulatus (imagen 4). En nuestro caso clínico estas levaduras fue-ron observadas en elevado número por campo microscópico. La presencia de este tipo de levadura, ha sido detectada en otros casos clínicos, tanto en animales asintomáticos como en perros (y gatos) con cuadros diarreicos, en los que el tratamiento con nistatina fue efectivo. Todo ello a pesar de la controversia existente en la actuali-dad, sobre el poder patógeno de esta levadura.2

4. ¿Cuáles de los parásitos encontrados en nuestro paciente pueden considerarse parásitos espurios?

El parasitismo es la simbiosis o vida en común existente entre un parásito y un hospedador. Es un proceso evolutivo que requiere de la adaptación del parásito al hospedador para poder depender metabólicamente de él. La especificidad parasitaria es la responsa-ble de que un parásito pueda completar su ciclo biológico, bien total o parcialmente en un hospedador, aunque no todos los parásitos afectan a una única especie. Aquellos que pueden completar su ciclo biológico en distintas especies animales, reciben el nombre de poco-especie específicos. Sin embargo, cuando se observa un agente parasitario que no es propio de la especie animal en la que se ha detectado tras realizar una técnica diagnóstica, hablamos

de parásito en tránsito, parásito espurio o pseudoparasitismo. Estos parásitos transitan por el hospedador, sin que se realice su establecimiento en el mismo y cuando son eliminadas las formas parásitas pueden seguir siendo viables. Son organismos que ac-cidentalmente entran en contacto con un hospedador, que no se implantan, por lo que no tienen ninguna importancia clínica y por tanto no se debe ejercer ningún control sobre ellos. Este es el caso del hallazgo coprológico de los cuatro huevos de C. pectinata pecti-nata. Distintos agentes etiológicos del grupo de los Anoplocefálidos pueden ser encontrados en especies animales tan distintas como los équidos, (Blanchard, 1849), orangutanes (Blanchard, 1891), conejos (Goeze,1981) y roedores.3 En el caso de los carnívoros sólo ha sido detectada la presencia del género Bertiella.4 El hecho de que el carnívoro presentase estos huevos de cestodos, tras descartar la presencia del género Bertiella (por tener características morfológi-cas diferentes) hizo que se considerase este parásito como parásito en tránsito o espurio. Este fenómeno de pseudoparasitismo ha sido también estudiado en medicina humana donde se diferencia clara-mente entre presencia de formas parásitas en heces como contami-nación por consumo de productos animales sin control veterinario, y presencia de verdaderas parasitaciones.5,6

Imagen 4. Levadura Cyniclomyces guttulatus vista microscópica con objetivo de 75X tras realizar el procesado de la muestra de heces con el método de MIF (A) y método Telemann modificado (B), técnica coprológica de elección en carnívoros

Imagen 3. Quistes de Giardia spp vista microscópica con objetivo 75X tras realizar la técnica coprológica de elección o método MIF. Puede apreciarse además la presencia de restos de alimento y bacterias.

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Caso Misterioso

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DiscusiónEn el presente caso clínico queremos destacar la importan-

cia de la identificación de los agentes etiológicos parasitarios pre-sentes en el animal. La falta de consistencia en las heces o incluso pérdida total de la misma, como es el caso de la diarrea, puede deberse entre otras causas, a la presencia y consecuencia de la acción patógena de endoparásitos digestivos. Un endoparásito digestivo no es solamente un parásito que tiene localización di-gestiva, sino todo aquel agente parasitario que en algún momento de su ciclo biológico pasa por el tracto digestivo, y que por ende, podemos diagnosticar mediante la utilización de métodos o téc-nicas coprológicas. En este caso, para la elección del tratamiento antiparasitario se tuvo en cuenta tanto los ascáridos presentes en las muestras (Toxocara canis), como los protistas digestivos (Giardia spp.). Sin embargo no se tuvieron en cuenta los Anoplo-cefálidos presentes en las heces por considerarse un parásito espurio sin consecuencias clínicas.

Tras tener en cuenta los hallazgos laboratoriales obtenidos tras el procesado de las heces, los agentes etiológicos detectados y la edad del animal, se instauró un tratamiento antiparasitario con producto nematocida, cestodicida y con actividad frente Giardia spp. El fármaco elegido fue febendazol durante 5 días y se realizó un análisis coprológico de revisión post tratamiento para la va-loración de la eficacia del tratamiento. En las muestras de heces recogidas tras el tratamiento antiparasitario no se detectaron for-mas parásitas en ninguna de las muestras, la presencia de C. guttu-lattus había disminuido y la consistencia de las heces era normal. Para ejercer un control antiparasitario específico, se recomendó la recogida de muestras de heces cada tres meses, para así poder identificar posibles problemas parasitarios, evitar su transmisión entre los animales que convivan juntos disminuyendo de manera progresiva la contaminación del medio ambiente. Debido a los ha-llazgos encontrados durante el análisis microscópico de las mues-tras también se valoró establecer un cambio en la alimentación con pienso de mayor calidad.

La instauración de un tratamiento antiparasitario en el animal, es sólo una de las medidas de control de las parasitosis, que nos servirá, para la eliminación de las formas parásitas endógenas de los distintos agentes etiológicos que afectan al perro siempre y cuando el principio activo seleccionado, sea efectivo. En la elección del tratamiento antiparasitario, deben tenerse en cuenta: el principio activo, su mecanismo de acción y el propio animal. para evitar en casos extremos de parasi-tación un posible fallecimiento del paciente por agentes que produzcan parálisis espástica y muerte masiva de los parásitos. Por ejemplo, fallecimiento del paciente tras tratamiento anti-parasitario con un principio activo cuyo mecanismo de acción produzca parálisis espástica y muerte masiva de los agentes etiológicos. Además, debemos recordar el espectro de actividad del producto aplicado, ya que no todos actúan frente a todas las fases endógenas de los parásitos, algunos son exclusivamente adulticidas y otros también larvicidas u ovicidas. Aunque los principios activos eficaces frente a los nematodos son conoci-dos, se están investigando continuamente nuevas formulacio-nes, nuevas combinaciones e incluso distintas vías de admi-

nistración (tópica en lugar de oral), buscando productos anti-parasitarios de amplio espectro que cubran los parásitos más prevalentes y que sean eficaces.7 La resistencia antihelmíntica podría ser responsable de fallos terapéuticos y falta de eficacia del tra tamiento administrado, aunque en animales de compa-ñía no es tan relevante como pueda ser en équidos o rumiantes. En nuestro caso clínico la presencia de más animales que no seguían ningún protocolo de desparasitación permitía que pu-dieran estar parasitados y contaminando el medio ambiente. Dentro del control de las parasitosis debemos comprender que no sólo debemos tratar al hospedador parasitado, sino que para evitar reinfecciones tenemos que aplicar unas medidas higiénico-sanitarias adecuadas en el medio ambiente. Además, debemos recordar la resistencia de las formas parásitas en el medio ambiente. En el caso de Giardia spp. la supervivencia es baja, ya que la falta de humedad hace que no puedan sobrevivir mucho tiempo. Sin embargo, los huevos de ascáridos, como los de Toxocara canis, sobreviven largos periodos de tiempo ya que poseen tres cubiertas. Esta supervivencia es mayor en terrenos con materia orgánica y en aquellos lugares sin acción directa de la luz que deseca el medio y limita su supervivencia. Todos estos hechos hacen necesaria la interpretación epidemiológica del problema parasitario, no sólo para poder solucionar el cua-dro clínico, sino para prevenir posibles reinfecciones o apari-ción de enfermedades en los animales que convivan juntos. De esta forma tras haber realizado el tratamiento antiparasitario adecuado, en este caso con fenbendazol, que presenta actividad frente Giardia spp y Toxocara canis, se realizó un análisis copro-lógico post tratamiento para confirmar la eficacia del producto antiparasitario. Se debe recordar además que deben cumplirse las medidas de control medio ambiental como la retirada de las heces, medidas de control sobre el hospedador como análisis coprológicos rutinarios cada 3-4 meses o desparasitaciones preventivas que evitarán que las formas parásitas eliminadas con las heces en un animal, alcancen su forma infectante y pue-dan parasitar a más hospedadores.

Bibliografía1. Anónimo. Cuadro estadístico de los casos clínicos atendidos en la con-

sulta médica de la Facultad de Veterinaria de Madrid, durante el curso escolar de 1951-1952. Ciencia Veteterinaria (rev). 1954;15:76.

2. MandigersPJ,DuijvestijnMB,AnkringaN,etal.TheclinicalsignificanceofCyniclomyces guttulatus in dogs with chronic diarrhoea, a survey and a prospective treatment study. Vet Microbiol. 2014;172:241-247.

3. Haverkost TR, Gardner SL. New species in the genus Monoecocestus (Cestoda: Anoplocephalidae) from Neotropical rodents (Caviidae and Sigmodontinae). J Parasitol. 2010;96:580-595.

4. Africa C, García E. The occurrence of Bertiella in man, monkey and dog in the Phillipines. Phillip J Sci1935;56:1-11.

5. Zabala Martín-Gil I, Justel Pérez JP, Cuadros González J. Pseudoparasitism of Dicrocoelium dentriticum. Aten Primaria 2007;39: 379-380.

6. Cabeza-Barrera I, Cabezas-Fernández T, Salas Coronas J, Vázquez Ville-gas J, Cobo F. Dicrocoelium dendriticum: An emerging spurious infection in a geographic area with a leen of immigration. Ann Trop Med Parasitol 2011; 105:403-406.

7. Knaus M, Baker CF, Reinemeyer CR, Chester ST, Rosentel J, Rehbein S. Efficacyofanoveltopicalcombinationoffipronil,(S)-methoprene,epri-nomectin and praziquantel against adult and larval of Toxocara cati in cats. Vet Parasitol. 2014;202:39-49.

15

La colocación de un tubo torácico o de toracostomía debe ser debe ser considerado en pacientes con quilotórax como consecuencia de problemas sistémicos, hemotórax o neumotórax como consecuencia de traumatismos, piotórax por presencia de cuerpos extraños o tras el postquirúrgico de una toracotomía. En estos casos la presencia de quilo, aire o pus en el espacio pleural da lugar a una incorrecta distensión de los pulmones con lo que se produce una dis-nea grave conllevando a la cianosis e hipoxia tisular.

Los tubos de drenaje torácico se deben colocar con el paciente preferiblemente bajo sedación profunda o aneste-siado y monitorizado para permitir la respiración durante el procedimiento. No obstante, en situaciones de urgencia este procedimiento puede ser realizado con el animal sin intubar, por lo que se requiere un conocimiento exacto de la técnica de colocación.

Así se hace...

Colocación de tubo torácicoCovadonga Sánchez-Mellado

Servicio de cirugía del Hospital Clínico Veterinario – Universidad Alfonso X el Sabio. Avda de la Universidad nº1. Villanueva de la Cañada 28691, Madrid, España.


Paso 1 - Preparación del paciente

Siempre es aconsejable que el animal esté bajo aneste-sia general o sedación profunda. Es muy recomendable la realización de un bloqueo de nervios intercostales. Se coloca al paciente en decúbito lateral y se rasura una generosa área de la pared costal lateral (desde la región caudal a la extremidad anterior hasta pasada la última costilla). El tubo torácico deberá tener la lon-gitud comprendida entre la zona de la incisión (10º espacio intercostal) y el aspecto ventral del tórax in-mediatamente por detrás de la extremidad anterior de ese mismo lado (imagen 1, longitud del tubo marcado con la flecha en la imagen). Posteriormente se procede a la limpieza de una forma aséptica con povidona yo-dada o clorhexidina y alcohol.

Que material es necesario • Sonda para el drenaje torácico (Pleurocan® de

Braun) o tubo de drenaje torácico de tamaño correspondiente (del mismo diámetro que el del bronquio principal tal y como se observa en una radiografía lateral).

• Equipo esterilizado (campo quirúrgico, porta agujas, hoja de bisturí, guantes, clamp).

• Sutura no absorbible para fijar la sonda

• Llave de tres vias

Así se hace...

16

Paso 2 - Colocación del tubo torácico

Localizar el 10º espacio intercostal (imagen 2A) don-de se hace una pequeña incisión con la hoja de bisturí para introducir el estilete junto con el tubo de tórax. Desplazar el catéter por el tejido subcutáneo desde el 10º espacio intercos-tal hasta el 8º espacio intercostal por donde se penetra a la cavidad torácica mediante un empuje firme pero controlado (imagen 2B). En este paso se debe vigilar en todo momento que el estilete no dañe parénquima pulmonar. Comprobar que la entrada de piel no coincida con la entrada en tórax puesto que así se crea un cierre más hermético y se evita la forma-ción de un neumotórax.

Recomendación: en casos en los que estén ocupados ambos hemitórax se recomienda la colocación de dos tubos torácicos ya que no siempre existe comunicación entre ambos hemitórax.

Paso 3 - Paso del tubo

Desplazar todo el catéter hacia la zona más cráneo ventral del espacio pleural hasta introducir todos los agujeros del tubo de drenaje (imagen 3A). Asegurar que la sonda está cerrada siempre en su extremo distal (ima-gen 3B) para no provocar un neumotórax y una vez que hemos introducido por completo el tubo añadir el sistema de drenaje que consta de una llave de tres vías y una vál-vula unidireccional (imagen 3C).

Recomendación: una vez colocado el tubo torá-cico evitar la entrada iatrogénica de aire en el torax cerrando dicho tubo. El anestesista debe realizar venti-lación mecánica positiva para favorecer la salida de aire del interior de la cavidad torácica mientras el cirujano procede a la extracción del contenido mediante succión con jeringa de tamaño apropiado.

Colocación de tubo torácico

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Paso 4 – Fijación del tubo torácicoUna vez colocada la sonda y el sistema de drenaje se

deben fijar a la piel con una bolsa de tabaco (imagen 4A) y con una sutura de sandalia romana (imágenes 4B y 4C). Una vez fijado el tubo torácico se procederá al vendado delicado del tórax mediante venda cohesiva o de malla para evitar que el tubo quede enredado, se ensucie o sufra tirones.

Recomendación: después de la colocación de ambos tubos SIEMPRE realizar dos radiografías, una un pro-yección lateral y otra ventro-dorsal para confirmar que su posición es correcta (la punta del tubo debe dirigirse craneo-ventralmente desde su entrada en el 8º espacio intercostal hasta alcanzar el segundo y tercer espacio intercostal sin que aparezca doblado).

Debemos saber…

La toracocentesis en una técnica mediante la cual se consigue vaciar el espacio pleural de líquido o de aire puncionando con una aguja o con un catéter, bien con fines diagnósticos o terapéuticos. Es una técnica rápida para la estabilización del paciente mientras se obtiene un diagnóstico.

Simplemente es necesario:

• Guantes estériles

• Aguja de palomilla o catéter intravenoso de 14-16G. Al usar una aguja se corre más riesgo de perforar el parénquima pulmonar y al utili-zar un catéter el riesgo disminuye puesto que es menos traumático pero tiende a retorcerse dando lugar a un drenaje no adecuado.

• Llave de 3 vías con alargador

• Aguja de 20ml o 50ml

La preparación del paciente es idéntica a la del paciente que va a re-querir un tubo torácico (vease Paso 1 – preparación del paciente). Una vez preparado se debe localizar el 7º u 8º espacio intercostal. Si se trata de un neumotórax la punción se realizará en la zona más dorsal y si es un derrame la punción se hará en la zona más ventral del tórax. Se debe trac-cionar la piel cranealmente desplazándola de tal manera que al terminar la punción el orificio de la piel no coincida con el orificio de entrada a la cavidad pleural (imagen 5A). Al realizar la punción introducir la aguja o el catéter de forma paralela a la cavidad torácica para evitar lacerar el parénquima pulmonar (imagen 5B). Una vez que se ha penetrado en la cavidad torácica conectar la llave de tres vías junto con el alargador y usar la jeringa para drenar el contenido (imagen 5C).

Recomendación: la punción ha de ser siempre por el borde craneal de la costilla para evitar la vascularización e inervación que discurre por la zona caudal.

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Estimulación farmacológica del apetito. Opciones lógicas en el gato inapetentePharmacological appetite stimulation. Rational choices in the inappetent catGnew W, Korman R J Feline Med Surg 2014;16:749-756

IntroducciónLa inapetencia o anorexia es uno de

los primeros signos clínicos que pueden mostrar los gatos enfermos por cualquier causa. Puesto que los gatos poseen reque-rimientos proteicos altos y dependen de las proteínas para la gluconeogenesis, se debe evitar una malnutrición prolongada ya que ésta puede ser más perjudicial que la propia enfermedad subyacente (por ejemplo pro-duciéndose un compromiso inmunitario, retraso en la curación de heridas y altera-ciones del metabolismo hepático o lipidosis hepática). Por este motivo una de las metas durante el diagnóstico y tratamiento de la enfermedad subyacente debe ser el correc-to aporte nutricional del paciente.

Estimulación del apetitoEs importante no utilizar los estimu-

lantes del apetito como una sustitución al diagnóstico de la patología subyacente y a su tratamiento específico. Debe mostrarse especial atención al control de la analgesia, tránsito intestinal, fiebre y náuseas antes de la administración de estos medicamentos. Los estimulantes del apetito deben considerarse en las siguientes situaciones: durante el pro-ceso diagnóstico de corta duración, cuando la anorexia es moderada y no exista impe-dimento físico para la prehensión o ingesta, cuando se sospeche de una causa ambiental o conductual de la anorexia, mientras se resuel-ve la causa primaria de una enfermedad no crítica y en aquellos pacientes crónicamente enfermos en los que se deben administrar tratamientos paliativos. Se deben calcular las necesidades energéticas diarias y si pasados 2-3 días después del uso de estimulantes del apetito no se logra una nutrición adecuada debe plantearse otro tipo de nutrición asisti-da (enteral) tal y como sucede en los paciente

críticos debido a la gran demanda de requeri-miento calórico. Aunque no esta confirmado que la suplementación de la dieta con vita-minas del grupo B prevenga la aparición de anorexia en gatos la facilidad de su uso hace que su administración deba ser considerada en todos los gatos inapetentes.

Opciones farmacológicas para el estímulo del apetito

1.) Anabolizantes como la nandro-lona (2.5mg/kg IM cada 2-3 semanas).

El balance de nitrógeno positivo al que dan lugar estos fármacos en animales debili-tados se ha demostrado que tiene un efecto de estimulante del apetito de larga duración pero menos pronunciado y predicible que con glucocorticoides o benzodiacepinas. Sus efectos adversos son múltiples y no deben ser utilizados en pacientes con hipercalcemia, insuficiencia hepática, enfermedades cardio-vasculares, insuficiencia hipofisaria, nefritis o con carcinomas mamarios o prostáticos.

2.) Benzodiacepinas como el Diazepam (0.05 - 1mg/kg IV lento) o el oxacepam (0.25-2.5mg/kg/12h PO).

En el ámbito hospitalario se recomienda su uso por via intravenosa ya que vía oral son menos efectivos. La ingesta de alimento co-mienza a las 20 minutos de su administración pero su efecto es de poca duración. Como efec-tos adversos se debe considerar la posibilidad de reacción hepatotóxica idiosincrásica (tras su administración por via oral) que es casi siempre mortal, por lo que no deben ser uti-lizadas en pacientes con disfunción hepática.

3.) Ciproheptadina (0.2 – 4mg/kg/12h PO)

Es el fármaco mas utilizado como esti-mulante del apetito en gatos aunque su efecto puede decaer tras su administración prolon-

gada. Como efectos adversos se encuentran la sedación, hiperexcitabilidad y efectos anti-colinérgicos por lo que no se recomienda su administración en pacientes con insuficiencia hepática, renal o cardiaca, cuadros obstructi-vos intestinales o lipidosis hepática.

4.) Glucocorticoides como la pred-nisolona (0.25-0.50mg/kg/24-48h PO)

Solo se debe considerar su uso si ade-más deseamos alguno de sus otros efectos (anti-inflamatorio, inmunosupresor o anti-neoplásico). Deben ser utilizados con cuida-do en pacientes con diabetes mellitus o con enfermedad cardiovascular.

5.) Acetato de megestrol (1mg/kg/12-24h PO)

Sus numerosos efectos adversos y con-traindicaciones hacen que no se recomienden actualmente como estimulantes del apetito.

6.) Mirtazapina (dosis descritas desde 1.88mg/gato/12-24h hasta 3.5mg/gato/72h)

En dos estudios con gatos sanos jóve-nes se observo que la dosis de 1.88mg/gato era eficaz como estimulante del apetito. El efecto farmacológico se produce entre las 8 y 36 horas de su administración. Puesto que los animales con insuficiencia renal tienen un retraso en el aclarado del fármaco se debe administrar cada 48 horas. Se debe utilizar con precaución en pacientes con diabetes mellitus, insuficiencia renal (aunque su uso esta descrito en pacientes con enfermedad renal crónica estable en los que se observó un incremento significativo del apetito y de peso tras su administración cada 48 horas durante 3 semanas), insuficiencia hepática o en administración conjunta con seleginina o tramadol, ya que pueden provocar un síndro-me serotoninérgico.

Revision realizada por Ana Rios Boeta, coordinadora del Área de pequeños animales del Hospital Clínico Veterinario de la Universidad Alfonso X el Sabio

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Experiencias de los propietarios en el tratamiento de perros y gatos diagnosticados de diabetes mellitus en los Estados UnidosOwner experiences in treating dogs and cats diagnosed with Diabetes Mellitus in the United States.Aptekmann KP, Armstrong J, Coradini M, Rand J J Am Anim Hosp Assoc 2014;50:247–253.

Objetivo Ampliar la información disponible

para los veterinarios y la industria del cuidado de mascotas encuestando pro-pietarios de perros y gatos diabéticos con respecto a su experiencia, las prácticas y su grado de satisfacción en el tratamiento de una mascota con diabetes mellitus.

Material y MétodosEncuesta basada en Internet, llevada a

cabo por 834 propietarios de pacientes con diabetes mellitus. Se llevó a cabo un estudio descriptivo de los resultados y posterior-mente se realizó comparación de los mis-mos mediante test de Chi cuadrado para detectar diferencias entre las respuestas de propietarios de perros y de gatos.

Resultados: Un total de 834 propietarios realiza-

ron la encuesta. Un 97% de los perros dia-béticos y un 82% de gatos diabéticos eran tratados con inyecciones de insulina asocia-da o no a otros fármacos, la cual era admi-nistrada dos veces al día en el 87% de los perros y en el 73% de los gatos. En perros la insulina administrada con mayor frecuen-cia fue la insulina lenta de origen porcino y la insulina protamina neutra. En gatos las más frecuentes fueron glargina e insulina protamina zinc. El nivel de satisfacción de los propietarios con el control diabético de sus mascotas fue del 66% en gatos frente al 50% en perros. Únicamente un 29.2% y 34.7% de los gatos y perros respectiva-mente fueron alimentadas con dietas pres-

critas para el tratamiento de la diabetes. El tratamiento fue considerado como caro por la mayoría de los propietarios. Tras el diag-nóstico la fuente de información sobre la diabetes más utilizada por los propietarios fue Internet (37%) y el veterinario (34%).

ConclusionesLos veterinarios deberían animar a

los propietarios para emprender el trata-miento con insulina en sus mascotas dia-béticas, dado el elevado éxito observado en el estado clínico de los pacientes después de iniciar el tratamiento. Se anima a los veterinarios a utilizar internet como medio de información para los propietarios, inclu-yendo consejos para el manejo de la enfer-medad, dietas apropiadas y frecuencia de visitas al veterinario.

Asociación entre la salud oral e infección por retrovirus en gatosAssociation between oral health status and retrovirus test results in catsKornya MR, Little SE, Scherk MA, Sears WC, Bienzle D. J Am Vet Medic Assoc 2014,245:916-922

ObjetivoPuesto que existen múltiples factores

(como la flora bacteriana oral, la dieta, la hi-persensibilidad a antígenos de la placa, las in-fecciones víricas y el estado inmunitario) que se han considerado como contribuyentes a la enfermedad oral inflamatoria en gatos el ob-jetivo del estudio presente es el de determinar la asociación entre el estado de salud oral y la seropositividad a FeLV y FIV en esta especie.

Material y métodosEstudio transversal realizado en 5179

gatos evaluados por veterinarios (ya sea por su trabajo en clínica veterinaria como en centros de recogida) que fueron formados a través de Internet para valorar, evaluar y puntuar la salud oral de los gatos de los cua-les no había conocimiento de vacunación

previa frente al virus de la inmunodeficien-cia. Los gatos fueron clasificados en función de su salud oral en las siguientes categorías: animales sanos, animales con enfermedad inflamatoria oral (gingivitis, periodontitis y estomatitis) y animales con otras lesiones (reabsorción, placa dental, lesiones traumá-ticas o neoplasias). También se registró la edad, sexo y resultados de test ELISA frente a los retrovirus FeLV y FIV.

ResultadosDel total de 5719 gatos, 237 (4,6%)

y 186 (3,6%) fueron positivos a FIV y FeLV respectivamente, el 20,7% tenían gingivitis, el 11,1% periodontitis, el 3,9% estomatitis y el 4,9% padecían otros trastornos orales. En cualquier rango de edad, la enfermedad oral inflamatoria se asoció con un riesgo sig-nificativamente mayor en aquellos pacientes

con un test positivo a FIV, comparado con el riesgo a padecer otros problemas orales o au-sencia de enfermedad oral. La estomatitis fue la patología mas frecuente en aquellos gatos que padecían una infección por FIV. Los gatos con cualquier patología inflamatoria oral tu-vieron más riesgo de ser positivos al test fren-te a FeLV que los gatos sin enfermedad oral. En gatos seronegativos la prevalencia de la enfermedad oral se incrementa con la edad.

Conclusiones y relevancia clínica

Los animales con enfermedad infla-matoria oral tienen más posibilidades de ser seropositivos a retrovirus por lo que se recomienda analizar a aquellos gatos que presenten esta patología con el fin de iniciar un tratamiento adecuado.

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Tiempo de supervivencia a largo plazo y calidad de vida en perros con signos clínicos asociados a shunt portosistémico tras tratamiento médico o quirúrgicoLong-term survival and quality of life in dogs with clinical signs associated with a congenial portosystemic shunt alter surgical or medical treatmentGreenhalgh SN, Reeve JA, Johnstone T, Goodfellow MR, Dunning MD, O´Neil EJ, Hall EJ, Whatsi PJ, Jeffery ND J Am Vet Med Assoc 2014:245:527-533

ObjetivoComparar el tiempo de supervivencia

a largo plazo y la calidad de vida en perros con signos clínicos asociados a shunt por-tosistémico que fueron sometidos a trata-miento médico o quirúrgico.

Material y métodosEstudio prospectivo de cohortes en

el que participaron 124 perros con shunt portosistémico (110 extrahepáticos y 14 intrahepáticos) que fueron tratados de manera médica o quirúrgica (de manera no aleatoria, aunque sin tener en consideración la reseña, variables clínicas o tiempo de su-pervivencia esperado). Todos los pacientes fueron estabilizados mediante tratamiento médico consistente en dieta y antibioterapia

durante un periodo mínimo de 3 semanas. Aquellos pacientes con tratamiento médico continuaron dicho tratamiento de por vida, siendo ajustado en función de los requeri-mientos del paciente mientras que aquellos que fueron sometidos a cirugía correctora lo hicieron mediante una de las siguientes técnicas: celofan, constrictor ameroide o ligadura parcial o total del vaso anómalo. El propietario del paciente fue consultado acerca de la calidad de vida de su mascota mediante un cuestionario que generaba una puntuación que reflejaba la frecuencia de signos clínicos asociados (alteraciones neurológicas, gastrointestinales o urinarias)

ResultadosTiempo de seguimiento medio de

1936 días. La tasa de supervivencia fue sig-nificativamente mayor en aquellos pacien-

tes tratados de manera quirúrgica (tiempo de supervivencia medio de 2156 días) com-parados con aquellos tratados de manera médica (tiempo de supervivencia medio de 836 días). La edad en el momento del diagnóstico o el tipo de shunt no influyeron en la tasa de supervivencia. La frecuencia en la que se apreciaron signos clínicos fue significativamente menor en el grupo de pacientes tratados de manera quirúrgica.

ConclusionesEl tratamiento quirúrgico de los

shunts portosistémicos mejora de manera significativa la tasa de supervivencia y dis-minuye la frecuencia de signos clínicos re-currentes asociados al shunt comparados con el tratamiento médico de lo mismos. La edad en el momento del diagnóstico no debe influir la elección del tratamiento.

Concentración basal de cortisol sérico como método de detección de hipoadrenocorticismo en perros.Basal serum cortisol concentration as a screening test for hypoadrenocorticism in dogsBovens C, Tennant K, Reeve J, Murphy KF J Vet Intern Med 2014;28:1541-1545

ObjetivoEvaluar la sensibilidad y especifici-

dad de la concentración basal de corti-sol sérico en la detección de hipoadre-nocrticismo en una población de perros con sospecha de dicha enfermedad.

Material y métodosEstudio retrospectivo de casos con-

trol realizado sobre 450 perros con en-fermedad no relacionada con glándulas adrenales y 14 perros con hipoadreno-corticismo de aparición natural. El diag-

nóstico definitivo de hipoadrenocorticis-mo se realizó mediante la confirmación de valores séricos de cortisol ≤2μg/dL tras el test de estimulación con ACTH.

ResultadosUtilizando un punto de corte de

≤2μg/dL la sensibilidad y especificidad del cortisol basal sérico para detectar el hipoadrenocorticismo fue del 100% y 63.3% respectivamente, mientras que un punto de ≤1μg/dL tuvo unos valo-res de sensibilidad y especificidad de 85.7% y 91.8% respectivamente.

Conclusión y relevancia clínica

La determinación del cortisol ba-sal es un método de útil en el cribado de pacientes con hipoadrenocorticismo utilizando un punto de corte de ≤2μg/dL, siendo muy poco probable que los animales presenten esta enfermedad si sus valores son ≥2μg/dL. Una concen-tración basal de ≤2μg/dL no confirma la presencia de hipoadrenocorticismo, siendo necesaria la utilización de un test de estimulación con ACTH.

1. ¿Qué patología es susceptible de ser confundida con priapismo?

a. Autotraumatismo peneano

b. Hematoma uretral

c. Parafimosis

d. El priapismo es inconfundible

2. Qué grupo farmacológico puede ser utilizado para el tratamiento del priapismo?:

a. Los fármacos α-adrenérgicos

b. Los fármacos β-adrenérgicos

c. Los fármacos parasimpaticomiméticos

d. Las metilxantinas

3. ¿Qué tipo de priapismo debe ser considerado una urgencia médica?

a. El de bajo flujo o isquémico

b. El de alto flujo no isquémico

c. Ambos

d. Ninguno es una urgencia médica

4. ¿Qué es un parásito espurio?

a. Aquel parásito que encontramos de casualidad en un estudio coprológico

b. Un parásito que no produce patología clínica en el hospedador

c. Aquel parásito que puede completar su ciclo biológico en diferentes especies

d. Aquel parásito que no es propio de la especie animal en la que se ha detectado

5. ¿Cuál es el método coprológico de elección para detectar parásitos digestivos en carnívoros?

a. Examen directo de las heces

b. Método Bowman

c. MIF

d. Telemann modificado

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6. ¿Cuándo se debe colocar un tubo de drenaje torácico?

a. En casos de edema pulmonar

b. Cuando exista riesgo de perforación pulmonar por traumatismo

c. Cuando exista contenido líquido o gaseoso en cavidad torácica que impida la expansión del parénquima pulmonar

d. Cuando encontremos imagen de cuerpo extraño bronquial

7. ¿Cuál es el espacio intercostal mas adecuado para penetrar en la cavidad torácica con el tubo de drenaje?

a. El 6º espacio intercostal

b. El 8º espacio intercostal

c. El 10º espacio intercostal

d. El 12º espacio intercostal

8. Señale la respuesta FALSA: La toracocentesis con catéter o palomilla:

a. Al igual que con el tubo torácico se realiza a través del 8º espacio intercostal

b. Permite la extracción de contenido de cavidad torácica de manera continua, su fijación se realiza de manera similar a la del tubo torácico

c. Permite la extracción aire, líquido o quilo

d. Es recomendable realizarla con el animal bajo sedación

9. En perros, una concentración basal de cortisol ≤2μg/dL en perros

a. Confirma la presencia de hipoadrenocorticismo

b. Indica insuficiencia adrenal

c. Indica hiperadrenocorticismo

d. Es sugerente de hipoadrenocorticismo pero debe confirmarse mediante estmulación con ACTH

10. Señale la opción FALSA.

a. La gingivitis es la patología inflamatoria oral mas frecuente en gatos con FIV

b. La patología inflamatoria oral mas frecuente en gatos es la gingivitis

c. Los gatos con patología inflamatoria oral tienen mas probabilidades de ser positivos frente a retrovirus

d. En gatos seronegativos la prevalencia de patología inflamatoria oral se incrementa con la edad

Soluciones en la página 20

Normas de publicación

La revista Centro tiene como objetivo publicar artículos cien-tíficos que versen sobre medicina y cirugía de los animales de compañía y que tengan preferentemente un carácter práctico y novedoso. El artículo deberá ser enviado a la dirección [email protected] para su remisión a los editores y comité editorial.

La revista CENTRO publica manuscritos que pueden ser re-dactados bajo diversos formatos:

Artículos de Revisión. Trabajos de revisión bibliográfica y actualización sobre un determinado tema. Por norma general, estos manuscritos serán solicitados por el Comite editorial a los autores que se estimen convenientes.

Artículos Originales. Artículos versados sobre un proyecto de investigación.

Descripción de casos clínicos. Artículos que describen una patología que por su rareza o excepcionalidad merezcan ser publicados. Dado el caracter fundamentalmente divulgativo que presentará la revista, no será necesario que el caso sea el primero descrito de su clase, bastará que sea una caso de presentación infrecuente siempre y cuando en la discusión del mismo se aporten datos de utilidad para el clínico. En este formato también se pueden recoger casos en los que se quiera describir la utilización de una técnica novedosa en el diagnós-tico o tratamiento de una patología concreta.

Caso misterioso. En esta sección se aportarán los datos de la historia clínica, examen clínico y pruebas complementa-rias para posteriormente plantear cuestiones que el clínico deberá resolver.

Publicación previa y originalidadLos artículos originales no pueden haberse publicado o ha-ber sido aceptados para su publicación en ninguna revista nacional o internacional, ya sea en parte o en su totalidad. En lo que a los trabajos de revisión se refiere, el comité editorial determinará en cada caso si se aplica esta exigencia o no. La dirección de la revista (junta de AMVAC) se reserva el dere-cho de rechazar cualquier artículo en base a motivos éticos, en especial cuando los ensayos descritos hayan sido motivo de sufrimiento injustificado para los animales.

Publicación o rechazo de artículosLos artículos recibidos serán evaluados por los miembros del Comité editorial que dictaminarán la conveniencia o no de su publicación. Para que una artículo sea aceptado para su publicación, deberá reunir una serie de condicio-nes en cuanto a forma y estructura que a continuación detallamos. Los autores deben ceñirse a estas normas, a fin de evitar largas correcciones y, en consecuencia, dila-taciones en la publicación del artículo. No se realizará nin-guna corrección o modificación conceptual del manuscri-to aceptado sin el consentimiento de los autores excepto

los cambios editoriales. Los artículos que no reúnan los aspectos formales y de estructura o que no sean de inte-rés científico serán rechazados y devueltos al autor.

Información general para preparar los manuscritos

EstiloPara la escritura del artículo debe de emplearse el formato Microsoft Word (.doc). Los artículos deben de escribirse a doble espacio y con márgenes de 3 cm superior, inferior y ambos lados. La fuente será Time Roman 12p. Las líneas del manuscrito deben de enumerarse de forma continua, así como las páginas. Los artículos originales no deberán tener más de 4500 palabras, la descripción del caso clínico no mas de 2500 palabras y las revisiones bibliográficas unas 5000 palabras. Las referencias bibliográficas, leyendas de figuras y tablas quedan excluidas del número total de palabras. Para referirse a productos, equipos y fármacos se identificaran con el nombre genérico y entre paréntesis el nombre comer-cial, laboratorio y ciudad del mismo si procede.

Estructura general de un artículo original y descripción de casos clínicos

1. Página del títuloPágina del Título del manuscrito en la primera página. En esta página se debe incluir el nombre de los autores, di-rección, clínica o institución en la que ejercen así como un medio de contacto con el autor principal (generalmente e-mail). El título debe ser breve y adecuado al contexto del manuscrito. Deben evitarse títulos excesivamente largos y los que no reflejen con exactitud el contenido del artículo. El título debe de escribirse en español y en inglés.

2. ResumenResumen del trabajo en castellano (máximo 300 palabras). El resumen debe indicar los objetivos del trabajo, la metodología usada y los principales resultados y conclusiones, enfatizando las aportaciones y los aspectos novedosos del trabajo.Este resumen debe estar traducido al inglés.

3. Palabras clave tanto en español como en inglés

4. Texto principalIntroducción. Debe plantear el problema investigado en el trabajo, aportar al lector la información necesaria para com-prender el artículo. Debe de incluir el objetivo del trabajo.Material y Métodos. Se describen detalladamente el ma-terial y las técnicas utilizadas (selección de los animales, métodos analíticos, etc.) en el estudio. Un buen apartado de material y métodos debe permitir a un clínico o inves-tigador competente repetir las experiencias del autor.

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Resultados. Deben describir únicamente los datos obtenidos en las pruebas realizadas o estudios estadísticos de los mis-mos. No deben incluirse una interpretación de los mismos ya que eso se deberá desarrollar en el apartado de discusión. Los resultados se deben presentar incluidos en el texto o en forma de gráficas o tablas que los apoyen de una manera gráfica.

Discusión. En esta sección el autor presenta una interpre-tación de los resultados en el mismo orden que los resulta-dos. El autor deberá comparar y confrontar sus resultados con los de otros autores y extraer de ellos las conclusiones.

Cuando el manuscrito trate sobre la presentación de un caso clínico, los apartados del mismo serán: introducción, descripción del caso clínico y discusión

5. Agradecimientos

6. BibliografíaCualquier afirmación que se haga en el artículo y que no se desprenda de los resultados del mismo, debe ir acompañada de su correspondiente cita bibliográfica. Estas referencias se ordenarán al final del artículo según su aparición en el texto, recibiendo un número consecutivo en función de su orden de aparición. Estos números se incluirán en el texto en formato de superíndice.

Estilo de la BibliografíaRevistas: nombrar a todos los autores siempre que sean menos de seis. Si son más, nombrar a los tres primeros y luego añadir et al.:Lewis DD, Hosgood G. Complications associated with the use of iohexol for myelography of the cervical column in dogs: 66 cases (1988-1990). J Am Vet Medic Assoc 1992;200:1381-1384.

Libros:Antinoff N: Musculoskeletal and neurological diseases, in: Quesenberry KE, Carpenter JW (eds): Ferrets, rabbits and rodents, clinical medicine and surgery. (ed 2 rev). St. Louis, MO, Saunders/Elsevier, 2004.

7. Tablas Las tablas deben incluirse como archivos diferentes al tex-to. Deben de estar numeradas en el orden que aparecen en el texto y sus leyendas irán incluidas después del texto.

8. FigurasLas figuras deben de ir en archivos diferentes al texto. El formato será en .TIF, JPG. Cuando sean gráficas tendrán una resolución mínima de 1000 dpi e imágenes 300 dpi. Las le-yendas de las figuras deberán ir incluidas en el archivo de texto tras las leyendas de las tablas. En ellas se debe explicar lo que se quiere resaltar de la imagen, utilizando si fuese ne-cesario signos de marcación como flechas, puntas de flecha, asteriscos etc...

9. Conflicto de intereses y fuentes de financiación Los autores deberán declarar la fuente de financiación re-cibida así como los posibles conflictos de interés.

RevisionesLa estructura de los artículos de revisión será determinada por el propio autor, adaptándose esta a las necesidades re-queridas por el artículo.

El caso misteriosoEl objetivo del caso misterioso es el de dar a los lectores la oportunidad de evaluar sus conocimientos sobre un caso concreto y la interpretación de las pruebas complementarias utilizadas en el diagnóstico de dicho caso (radiografías, eco-grafías, electrocardiogramas, imágenes de tomografia com-puterizada o resonancia magnética, pruebas electrofisiológi-cas etc...).

Para ello el autor deberá incluir la historia clínica del caso y las pruebas complementarias (entre 1 y 3 imágenes) que permitieron el diagnóstico del mismo.

El texto deberá ser organizado bajo los epígrafes siguientes:

• Historia clínica• Pruebas complementarias• Preguntas formuladas al lector• Tratamiento y evolución• Discusión

La discusión deberá estar focalizada en describir como los hallazgos de las pruebas complementarias realizadas permitieron el diagnóstico de la patología. En la discusión se podrán aportar nuevas imágenes que permitan aclarar o mejorar el entendimiento de la patología en cuestión o su comparación con otras técnicas diagnósticas.

Las imágenes deberán ser enviadas por duplicado (con y sin marcas identificativas). Aquellas que tengan marcas identifi-cativas deberán contener una leyenda explicativa de las mis-mas.

El formato del texto deberá seguir las mismas reglas que los artículos originales y descripción de casos clínicos.La bibliografía no deberá superar las 5 referencias.

Soluciones a la Autoevaluación:1.C

2.A

3.A

4.D

5.D

6.C

7.B

8.B

9.D

10.A

Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para gatos. Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para perros ≤ 8 kg. Seresto collar 4,50 g + 2,03 g para perros > 8 kg. Composición: 1 Collar (38 cm) de Seresto para gatos y Seresto para perros ≤ 8 kg contiene: 1,25 g de imidacloprid y 0,56 g de flumetrina. 1 Collar (70 cm) de Seresto para perros > 8 kg contiene: 4,50 g de imidacloprid y 2,02 g de flumetrina. Propiedades farmacológicas: Imidacloprid es un ectoparasiticida activo contra los estadíos larvales de las pulgas, las pulgas adultas y los piojos. Flumetrina es un ectoparasiti-cida que proporciona la actividad acaricida del medicamento. El medicamento tiene un efecto repelente contra garrapatas. Los collares mejoran la infestación por Sarcoptes scabiei en perros preinfestados y se logra la curación completa después de 3 meses. Las dos sustancias activas se liberan continua y lentamente a bajas concentraciones, del collar hacia el perro, estando presentes en el pelaje a concentraciones acaricidas/insecticidas durante el periodo de eficacia completo. Indicaciones: Perros y gatos: Prevención y tratamiento de la infestación por pulgas (Ctenocephalides felis) durante 7-8 meses. La eficacia contra las pulgas comienza inmediatamente después de la aplicación del collar. En perros, protege el entorno inmediato del animal al inhibir el desarrollo de larvas de pulga durante 8 meses y en gatos, durante 10 semanas. Puede utilizarse como parte de una estrategia de tratamiento de la dermatitis alérgica por picadura de pulgas (DAPP). El medicamento es eficaz contra las infestaciones por garrapatas durante 8 meses por su efecto repelente (en perros, Ixodes ricinus y Rhipicephalus sanguineus y en gatos, Ixodes ricinus) y su efecto acaricida (en perros y gatos, Ixodes ricinus, Rhipicephalus turanicus. Además, en perros Dermacentor reticulatus). Es eficaz contra larvas, ninfas y garrapatas adultas. Las garrapatas presentes en el animal antes del tratamiento pueden no morir en las primeras 48 horas después de la aplicación del collar, por lo que podrían permanecer adheridas y visibles. Por tanto, se recomienda retirar las garrapatas existentes en el animal previo a la aplicación del collar. La prevención de nuevas infestaciones por garrapatas se inicia durante los dos primeros días después de la aplicación del collar. En perros, además está indicado para el tratamiento de la infestación por piojos picadores/masticadores (Trichodectes canis). Preferentemente, el collar debe aplicarse antes del inicio de la temporada de pulgas o garrapatas. Posología y modo de administración: 1 collar por animal. Ajuste el collar sin apretar alrededor del cuello (dejar un espacio de aproximadamente 2 dedos entre el collar y el cuello). El animal debe llevar el collar de forma continua durante los 8 meses de periodo de protección. Compruebe el collar periódicamente y ajústelo si fuera necesario, especialmente en gatitos con crecimiento rápido. El collar está diseñado con un mecanismo de cierre seguro. En el caso improbable de que un gato quedara atrapado por el collar, la misma fuerza del animal es suficiente para ensancharlo y quitárselo rápidamente. Contraindicaciones: No tratar a cachorros de menos de 7 semanas ni a gatitos de menos de 10 semanas. No usar en caso de hipersensibilidad a las sustancias activas o a algún excipiente. Precauciones de uso: Para los animales: El medicamento es resistente al agua y continúa siendo eficaz aunque el animal se moje. Sin embargo, debe evitarse una exposición intensa y prolongada al agua o el uso frecuente de champús dado que la duración de la actividad puede verse disminuida. Para la persona que administra el medicamento: Mantenga la bolsa que contiene el collar en la caja hasta el momento de su uso. No permita que los niños jueguen con el collar ni que se lo introduzcan en la boca. Los animales que lleven collar no deberían dormir en la cama con sus propietarios, especialmente los niños. Las personas con hipersensibilidad conocida a los componentes del collar deben evitar el contacto con el collar. Lávese las manos con agua fría después de colocar el collar. Reacciones adversas: Ocasionalmente, puede observarse un ligero prurito y/o eritema en los primeros días tras la colocación del collar en animales que no están acostumbrados a llevar collar. Asegúrese de que no esté demasiado apretado. Puede producirse una ligera pérdida de pelo y reacciones cutáneas leves en la zona de aplicación, generalmente desaparecen en 1 ó 2 semanas sin necesidad de retirar el collar. En casos aislados, puede recomendarse la retirada temporal del collar hasta que los síntomas hayan desaparecido. Además en gatos, en raros casos, al inicio, pueden aparecer reacciones leves y pasajeras tales como depresión, cambios en la ingesta, salivación, vómitos y diarrea. Al igual que ocurre con otros medicamentos de uso tópico, pueden presentarse dermatitis alérgicas de contacto en animales con hipersensibilidad. Uso durante la gestación o lactancia: En ausencia de datos disponibles, el medicamento no se recomienda en perras ni gatas en gestación o lactación. Sobredosificación: Es improbable que ocurra una sobredosis y no se esperan signos de sobredosis. En el caso improbable de que el animal ingiera un collar, podrían presentarse síntomas gastrointestinales leves. Formatos comercializados: Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para gatos: Caja con 1 collar. Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para perros ≤ 8 kg: Caja con 1 collar. Seresto collar 4,50 g + 2,03 g para perros > 8 kg: Caja con 1 collar. Titular de la Autorización: Bayer Hispania, S.L., Av. Baix Llobregat, 3-5. 08970 Sant Joan Despí (Barcelona). Número de registro: 2348 ESP, 2349 ESP y 2351 ESP. Sin prescripción veterinaria. Para más información consulte el prospecto del medicamento.

• Combinación sinérgica de Imidacloprid y Flumetrina.• Nueva e innovadora forma de protección.• Efecto repelente frente a garrapatas demostrado.

De protección y tranquiliDaDmeses

es el único antiparasitarioexterno con una duración de hasta 8 meses.

Hasta

Hasta 8 meses de protección frente a pulgas y garrapatas

Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para gatos. Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para perros ≤ 8 kg. Seresto collar 4,50 g + 2,03 g para perros > 8 kg. Composición: 1 Collar (38 cm) de Seresto para gatos y Seresto para perros ≤ 8 kg contiene: 1,25 g de imidacloprid y 0,56 g de flumetrina. 1 Collar (70 cm) de Seresto para perros > 8 kg contiene: 4,50 g de imidacloprid y 2,02 g de flumetrina. Propiedades farmacológicas: Imidacloprid es un ectoparasiticida activo contra los estadíos larvales de las pulgas, las pulgas adultas y los piojos. Flumetrina es un ectoparasiti-cida que proporciona la actividad acaricida del medicamento. El medicamento tiene un efecto repelente contra garrapatas. Los collares mejoran la infestación por Sarcoptes scabiei en perros preinfestados y se logra la curación completa después de 3 meses. Las dos sustancias activas se liberan continua y lentamente a bajas concentraciones, del collar hacia el perro, estando presentes en el pelaje a concentraciones acaricidas/insecticidas durante el periodo de eficacia completo. Indicaciones: Perros y gatos: Prevención y tratamiento de la infestación por pulgas (Ctenocephalides felis) durante 7-8 meses. La eficacia contra las pulgas comienza inmediatamente después de la aplicación del collar. En perros, protege el entorno inmediato del animal al inhibir el desarrollo de larvas de pulga durante 8 meses y en gatos, durante 10 semanas. Puede utilizarse como parte de una estrategia de tratamiento de la dermatitis alérgica por picadura de pulgas (DAPP). El medicamento es eficaz contra las infestaciones por garrapatas durante 8 meses por su efecto repelente (en perros, Ixodes ricinus y Rhipicephalus sanguineus y en gatos, Ixodes ricinus) y su efecto acaricida (en perros y gatos, Ixodes ricinus, Rhipicephalus turanicus. Además, en perros Dermacentor reticulatus). Es eficaz contra larvas, ninfas y garrapatas adultas. Las garrapatas presentes en el animal antes del tratamiento pueden no morir en las primeras 48 horas después de la aplicación del collar, por lo que podrían permanecer adheridas y visibles. Por tanto, se recomienda retirar las garrapatas existentes en el animal previo a la aplicación del collar. La prevención de nuevas infestaciones por garrapatas se inicia durante los dos primeros días después de la aplicación del collar. En perros, además está indicado para el tratamiento de la infestación por piojos picadores/masticadores (Trichodectes canis). Preferentemente, el collar debe aplicarse antes del inicio de la temporada de pulgas o garrapatas. Posología y modo de administración: 1 collar por animal. Ajuste el collar sin apretar alrededor del cuello (dejar un espacio de aproximadamente 2 dedos entre el collar y el cuello). El animal debe llevar el collar de forma continua durante los 8 meses de periodo de protección. Compruebe el collar periódicamente y ajústelo si fuera necesario, especialmente en gatitos con crecimiento rápido. El collar está diseñado con un mecanismo de cierre seguro. En el caso improbable de que un gato quedara atrapado por el collar, la misma fuerza del animal es suficiente para ensancharlo y quitárselo rápidamente. Contraindicaciones: No tratar a cachorros de menos de 7 semanas ni a gatitos de menos de 10 semanas. No usar en caso de hipersensibilidad a las sustancias activas o a algún excipiente. Precauciones de uso: Para los animales: El medicamento es resistente al agua y continúa siendo eficaz aunque el animal se moje. Sin embargo, debe evitarse una exposición intensa y prolongada al agua o el uso frecuente de champús dado que la duración de la actividad puede verse disminuida. Para la persona que administra el medicamento: Mantenga la bolsa que contiene el collar en la caja hasta el momento de su uso. No permita que los niños jueguen con el collar ni que se lo introduzcan en la boca. Los animales que lleven collar no deberían dormir en la cama con sus propietarios, especialmente los niños. Las personas con hipersensibilidad conocida a los componentes del collar deben evitar el contacto con el collar. Lávese las manos con agua fría después de colocar el collar. Reacciones adversas: Ocasionalmente, puede observarse un ligero prurito y/o eritema en los primeros días tras la colocación del collar en animales que no están acostumbrados a llevar collar. Asegúrese de que no esté demasiado apretado. Puede producirse una ligera pérdida de pelo y reacciones cutáneas leves en la zona de aplicación, generalmente desaparecen en 1 ó 2 semanas sin necesidad de retirar el collar. En casos aislados, puede recomendarse la retirada temporal del collar hasta que los síntomas hayan desaparecido. Además en gatos, en raros casos, al inicio, pueden aparecer reacciones leves y pasajeras tales como depresión, cambios en la ingesta, salivación, vómitos y diarrea. Al igual que ocurre con otros medicamentos de uso tópico, pueden presentarse dermatitis alérgicas de contacto en animales con hipersensibilidad. Uso durante la gestación o lactancia: En ausencia de datos disponibles, el medicamento no se recomienda en perras ni gatas en gestación o lactación. Sobredosificación: Es improbable que ocurra una sobredosis y no se esperan signos de sobredosis. En el caso improbable de que el animal ingiera un collar, podrían presentarse síntomas gastrointestinales leves. Formatos comercializados: Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para gatos: Caja con 1 collar. Seresto collar 1,25 g + 0,56 g para perros ≤ 8 kg: Caja con 1 collar. Seresto collar 4,50 g + 2,03 g para perros > 8 kg: Caja con 1 collar. Titular de la Autorización: Bayer Hispania, S.L., Av. Baix Llobregat, 3-5. 08970 Sant Joan Despí (Barcelona). Número de registro: 2348 ESP, 2349 ESP y 2351 ESP. Sin prescripción veterinaria. Para más información consulte el prospecto del medicamento.

• Combinación sinérgica de Imidacloprid y Flumetrina.• Nueva e innovadora forma de protección.• Efecto repelente frente a garrapatas demostrado.

De protección y tranquiliDaDmeses

es el único antiparasitarioexterno con una duración de hasta 8 meses.

Hasta

Hasta 8 meses de protección frente a pulgas y garrapatas

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Revista de la Asociación Veterinarios de...

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