Técnicas de molécula individual aplicadas al estudio de proteínas
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TÉCNICAS DE MOLÉCULA INDIVIDUAL
APLICADAS AL ESTUDIO DE PROTEÍNAS
Jorge Alegre-Cebollada
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¿Por qué estudiar el comportamiento de moléculas individuales?
Analizamos las ruta marítimas entre Nueva York y San Francisco
NYSF
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NYSF
Promedios frente a trayectorias individuales
Al medir propiedades promedio perdemos información
Ejemplo escuchado a Steve Block,
uno de los pioneros de las pinzas ópticas
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Interés del estudio de moléculas individuales
Obtención de propiedades individuales frente a propiedades promedio
Estudio de propiedades vectoriales: desplazamiento, fuerza, etc...
Paralelización : secuenciación de ADN de última generación
En un tubo de ensayo
la orientación
molecular es aleatoria
Motores moleculares
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Los primeros experimentos de molécula individual
Técnicas de molécula individual
Observación de moléculas individuales
Manipulación de moléculas individuales
Microscopio electrónico
E. Ruska
Premio Nobel de Física, 1986
Patch clamp (electrofisiología)
E. Neher y B. Sakmann
Premio Nobel de Fisiología o Medicina, 1991
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Fluorescencia de molécula individual
aplicada al estudio de proteínas
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Observación mediante fluorescencia de molécula individual
TIRF
(Fluorescencia de reflexión interna total)
Reducción de señal de fondo: confinamiento del volumen de excitación
Optimización de fluoróforos
Mejores cámaras
Zero-mode waveguides
Proteínas fluorescentesConjugación química
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Catálisis de una enzima individual: colesterol oxidasa
Lu et al. Science (1998) 282,1877
Las enzimas fluctúan entre estados de alta y baja actividad
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Transferencia de energía por resonancia Förster (FRET)
Eficiencia FRET
R0 = f (solapamiento espectral, orientación)
fluorescencia
donador
absorción
aceptor
longitud de onda (λ)
D
D
A
A
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Medida de cambios conformacionales mediante FRET
Z-B B-Z
Aceptor
Dador
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Huella dactilar (fingerprint) en experimentos de molécula individual
Dos obligaciones del investigador:
Evaluar críticamente sus resultados
Evaluar críticamente los resultados de sus colegas
Colesterol oxidasaCambio conformacional
(FRET)
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Técnicas de manipulación de moléculas individuales
Pinzas Ópticas Microscopía de Fuerza Atómica (AFM)
Pinzas Magnéticas
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AFM
Microscopía de fuerza atómica
aplicada al estudio de proteínas
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Titina
Pili bacterianos
Síntesis de proteínas
Plegamiento oxidativo
Degradación en
proteosoma
Fuerzas mecánicas y proteínas: desde el nacimiento a la muerte
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La elasticidad de las proteínas y el desplegamiento mecánico
Fuerza
Dominio plegado
Dominio desplegado
Z-line
Thin filament (actin)
Thick filament (myosin)
Estiramiento
Titin
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A
B
Fuerzas mecánicas y exposición de sitios crípticos
Detección de señales mecánicas: mecanotransducción
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Fuerzas mecánicas como desnaturalizantes de proteínas
Coordinada de reacción, x
(longitud de extremo a extremo)
F1
F2
F2 > F1
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El AFM como aplicador de fuerzas
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AFM casero
Microscopio
óptico
piezo
sensor de fuerza
Espectrómetros de AFM
AFM comercial (100K Euro)
Muchos AFM comerciales están
optimizados para imagen
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Fotodiodo
(A-B→Fuerza)
espejosláser
Palanca
(cantilever)
proteína
accionador lineal (extensión)
A
B
Experimentos a velocidad constante: force-extension
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Cantilevers de AFM para experimentos de molécula individual
Enfoque del láser
Escoger el cantilever adecuado: la
constante de muelle (spring constant)
5-20 pN/nm
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El modelo worm-like chain de elasticidad entrópica
• x : extensión de la molécula
• Lc: longitud de contorno
(extensión a fuerza infinita)
• p: longitud de persistencia
(~flexibilidad interna)
p (ssDNA) << p (dsDNA)
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La importancia del fingerprint en AFM
Ruptura de enlace
Tip-surface distance (nm)
¿Ruptura?
Desplegamiento de poliproteínas
Patrón repetitivo (sawtooth)Distancia
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Interacciones no específicas ocurren cerca de la superficie
Interacciones no específicas
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Ingeniería de poliproteínas
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Experimentos a fuerza constante: force-clamp
• ¿Cómo medimos dependencias con la fuerza?
• El uso de sistemas de retroalimentación permite mantener la fuerza constante
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Un ejemplo de un registro experimental a fuerza constante
Eventos de
desplegamiento
en forma de escalera
Tiempo de respuesta:
5 ms (electrónico)
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NATURALEZA
Cuatro moléculas
diferentes estiradas a la
misma fuerza (110 pN)
Tiempo (s)
lon
git
ud
(2
0 n
m/d
iv)
Δtk
Naturaleza probabilística de los eventos de desplegamiento
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k (F)
F = 140 pN
Medida de la cinética de desplegamiento
Suma de varias trazas
individuales
Se ajusta bien a una
exponencial sencilla
N Uk (F)
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Tk
xF
Bekk
0
∆xu= 2.4 Å
Caracterización del desplegamiento mecánico
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3 replegados
4 desplegados
5 replegados
0 desplegados
Estudios de replegamiento
Desplegam. Replegamiento Test
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A B
C
Estudio de reacciones químicas a nivel individual
Eventos de
desplegamiento
Eventos de
reducción
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MT
Pinzas magnéticas aplicadas
al estudio de proteínas
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Pinzas magnéticas
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Extended
(high force)
Extended
(low force)
Ventajas e inconvenientes de las pinzas magnéticas
Ventajas• No requiere sistema de retroalimentación
• Estabilidad
• Buena sensibilidad a fuerzas < 20 pN
• Posibilidad de paralelizar
Inconvenientes• Baja resolución temporal
• No adecuado para estudiar reacciones químicas
• No es comercial
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OT
Pinzas ópticas aplicadas
al estudio de proteínas
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El fundamento de las pinzas ópticas
Ventajas• Buena sensibilidad a fuerzas < 20 pN
• Manipulación controlada: versatilidad
Inconvenientes• No adecuado para mirar reacciones químicas
• Necesidad de usar asas moleculares
• Instrumentación compleja
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A
B C
Configuraciones experimentales
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Desplegamiento/
replegamiento
Motores
moleculares
Algunos experimentos con pinzas ópticas
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Estudio de motores moleculares mediante pinzas ópticas
Traducción en el
ribosoma
Empaquetamiento
de DNA por virus
Enzimas
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Bibliografía