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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
Facultad De Ingeniería Química
Carrera De Ingeniería Química
Trabajo De Titulación
Previo A La Obtención Del Título De Ingeniero Químico
TEMA
Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En
Estanques De Camarones
AUTORES
Coronel Rojas Klever Iván
Yupa Cabadiana Glenda Katherine
DIRECTOR DEL TRABAJO DE TITULACION
ING. JOSE CARDENAS MURILLO MSc.
GUAYAQUIL-ECUADOR
2018-2019
REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO: Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En Estanques De
Camarones.
AUTOR(ES) (apellidos/nombres): Coronel Rojas Klever Ivan
Yupa Cabadiana Glenda Katherine
REVISOR(ES)/TUTOR(ES)
(apellidos/nombres):
Ing. Jose Cardenas Murillo msc
Ing. Miroslav Alulema Cuesta msc
INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil
UNIDAD/FACULTAD: Ingeniería Química
MAESTRÍA/ESPECIALIDAD:
GRADO OBTENIDO:
FECHA DE PUBLICACIÓN: No. DE PÁGINAS:
ÁREAS TEMÁTICAS: Campo: desarrollo biotecnológico( enzimas)
Área: Ingeniería Química
Aspecto: Disminución de la materia orgánica en estanques de camarones.
PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS: Optimización, Enzima, DQO, Calidad del Agua
RESUMEN/ABSTRACT
El siguiente estudio, tiene como propósito determinar la dosis óptima de un activador enzimático, para lograr la adecuada
degradación de materia orgánica no consumida en el agua, proveniente de la alimentación de los camarones; el mismo que actúa
como un catalizador que acelera la biodegradación. Dado que el deterioro de la calidad del agua, debido a la lenta descomposición
de los nutrientes, impacta negativamente en las condiciones de cría del crustáceo, produciendo liberación de compuestos nocivos
para la vida acuática, como amonio, nitritos, etc. Para lo cual se construyó 4 reactores con aireación mecánica, conteniendo las
muestras de agua y suelo de las piscinas camaroneras, con concentraciones C1= 2 �l/L, C2= 1,8 �l/L, C3= 2.4 �l/L, C4= 0 �l/L.,
para control de la enzima en estudio, con un tiempo de retención de 1 semana. Los parámetros físicos-químicos analizados en el
agua fueron: temperatura, salinidad, pH, DQO y conductividad. El estudio demostró una reducción sustancial en los tiempos de
degradación de la carga orgánica en términos de DQO como efecto de la utilización de la enzima, alcanzando una concentración
final de 3.33 mg/L, por debajo del límite máximo tolerable para los camarones, en comparación con la concentración final de 1200
mg/L de la pecera de control sin enzima; además de la disminución de malos olores mejorando la calidad de la misma. Los valores
para el pH fueron de 8.58, oxigeno 8.38 (mg/l), salinidad 18.5 (ppm) , conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura 25.18(ºC)
ADJUNTO PDF: x SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono:
0993097808
0981543902/042253070
E-mail:
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN: Nombre: Universidad de Guayaquil
Teléfono: (04)228-7072,2287258
E-mail: http://www.ug.edu.ec
Guayaquil, 1 de Marzo del 2019
CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR
Habiendo sido nombrado ING.MIROSLAV GONZALO ALULEMA CUESTA, Msc tutor del trabajo
de titulación Evaluación Del Activador Enzimático En La Disminución De La Materia Orgánica En Estanques De Camarones
certifico que el presente trabajo de titulación, elaborado por Coronel Rojas Ivan Klever , con
C.I. No.0921348835, Yupa Cabadiana Glenda Katherine, , con C.I. No. 0950280099 con mi respectiva
supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de Ingeniero Químico , en la Carrera
Ingeniería Química /Facultad de Ingeniería Química, ha sido REVISADO Y APROBADO en todas sus partes,
encontrándose apto para su sustentación.
ING.MIROSLAV GONZALO ALULEMA CUESTA, Msc
C.I. No. 1709365116
FACULTAD DE INGENIERÍA QUÍMICA
CARRERA DE INGENIERÍA QUÍMICA
UNIDAD DE TITULACIÓN
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrado Ing. José Guillermo Cárdenas Murillo, Msc, tutor del trabajo de titulación certifico
que el presente trabajo de titulación ha sido elaborado por Coronel Rojas Klever Iván con
C.I. 0921348835 y Yupa Cabadiana Glenda Katherine con C.I. 0950280099, con mi
respectiva supervisión como requerimiento parcial para la obtención del título de INGENIERO QUÍMICO.
Se informa que el trabajo de titulación: “EVALUACION DEL ACTIVADOR ENZIMATICO EN LA
DISMINUCION DE LA MATERIA ORGANICA EN ESTANQUES DE CAMARONES
, ha sido orientado durante todo el periodo de ejecución en el programa antiplagio (indicar el nombre del
programa antiplagio empleado) quedando el 1 % de coincidencia.
https://secure.urkund.com/view/47273285-975262-508918
Docente tutor
Ing. José Guillermo Cárdenas
C.I.090577842
ANEXO 6
FACULTAD DE INGENIERIA QUIMICA
CARRERA INGENIERIA QUIMICA
UNIDAD DE TITULACIÓN
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO NO
COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS
Nosotros, Coronel Rojas Klever Iván con C.I. 0921348835 y Yupa Cabadiana Glenda
Katherine con C.I. 0950280099, certifico que los contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo
título es “EVALUACION DEL ACTIVADOR ENZIMATICO EN LA DISMINUCION DE
LA MATERIA ORGANICA EN ESTANQUES DE CAMARONES” son de
mi absoluta propiedad y responsabilidad Y SEGÚN EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA
SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia
gratuita intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no académicos, en
favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del mismo, como fuera pertinente
Coronel Rojas Klever Iván
C.I 0921348835
YUPA CABADIANA GLENDA KATHERINE
C.I 0950280099
ANEXO 12
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E INNOVACIÓN
(Registro Oficial n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior
y centros educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas politécnicas, institutos superiores
técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los conservatorios superiores, e institutos públicos de investigación como resultado de su
actividad académica o de investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de investigación o innovación, artículos académicos,
u otros análogos, sin perjuicio de que pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales corresponderá a
los autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita, intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la obra
con fines académicos.
DEDICATORIA
A Dios por permitirme culminar mis estudios, fue el que me dio sabiduría, paciencia ganas y sobre
todo amor para no darme por vencida durante el camino largo que fue mi carrera, no fue fácil este
proceso.
A mis padres Eulogio y Judith por siempre brindarme su apoyo, su fortaleza para no rendirme,
por sus valores de humildad, respeto, amor y responsabilidad.
A mis hermanos, Mónica y Sebastián por ser mi motivo principal de culminar mi carrera y ser
ejemplo de ellos.
A mis amigos quienes me demostraron que son parte de mí, y que me han apoyado en los
momentos difíciles que estuvieron siempre en mi crecimiento profesional.
A mis profesores por la gran labor de enseñarme y demostrarme sus conocimientos.
Glenda Yupa Cabadiana
VII
DEDICATORIA
Le dedico a Dios por darme la bendición y sabiduría para lograr mis metas.
A mi madre Inés Eleuteria Rojas Sevillano por haberme dado la vida y ser mi inspiración
para salir adelante durante todo este proceso.
A mi tía Cleofa Rojas Sevillano por darme el apoyo y estar siempre presente en todas las
actividades que me propuestos durante toda mi vida.
A mis abuelos Antonio Rojas e Inés sevillano por haber cuidado de mí en mis inicios.
Iván Coronel Rojas
VIII
AGRADECIMIENTO
Les agradezco:
A Dios
A mis Padres que me apoyaron incondicionalmente.
A mis tutores que me compartieron sus conocimientos en mí
A miguel que me apoyado con conocimiento en toda mi carrera. Y a mi compañero de tesis.
Glenda Yupa Cabadiana
IX
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por darme vida.
A mi madre Inés Rojas Sevillano por haberme educado con todas sus posibilidades y llegar
donde estoy.
A mi hermana Massiel Coronel Rojas por apoyarme, ser incondicional y estar siempre
conmigo en todo, te quiero mucho hermana
A mis ti@s Cleofa, Patricia, Fernando, Roberto Rojas Sevillano por estar presente en mis
retos de vida
A mis Herman@ Silvia y David, a mis prim@s
A mi tutor ing. José Caldena por haber sido mi guía tanto como decano, maestro y tutor
de tesis. Gracias ingeniero
A mi compañera de esta propuesta de trabajo por haber soportado mi mal carácter, mis
ofensas tanto en los trabajos que hicimos en la carrera universitaria, como durante la tesis.
Gracias Katy
Iván Coronel Rojas
X
ÍNDICE
CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR ..................................................................................... 3
DEDICATORIA ........................................................................................................................... VI
DEDICATORIA ......................................................................................................................... VII
AGRADECIMIENTO ............................................................................................................... VIII
AGRADECIMIENTO .................................................................................................................. IX
RESUMEN ................................................................................................................................ XIII
ABSTRACT .............................................................................................................................. XIV
ÍNDICE DE TABLAS ............................................................................................................... XV
ÍNDICE DE FIGURAS ............................................................................................................. XVI
SIMBOLOGÍA ........................................................................................................................ XVII
INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 1
CAPÍTULO I .................................................................................................................................. 3
1. Problema ............................................................................................................................... 3
1.1. Tema ................................................................................................................................... 3
1.2. Planteamiento del problema......................................................................................... 3
1.3. Formulación Y Sistematización De La Investigación ............................................ 3
1.3.1. Formulación del problema de investigación ........................................................ 3
1.3.2. Sistematización del problema .................................................................................. 4
1.4. Justificación De La Investigación ............................................................................... 4
1.4.1. Justificación Teórica ......................................................................................................... 4
1.4.2. Justificación Metodológica .............................................................................................. 4
1.4.3. Justificación Práctica ........................................................................................................ 5
1.5. Objetivos De La Investigación ..................................................................................... 5
1.5.1. Objetivo General ................................................................................................................. 5
1.5.2. Objetivos Específicos ........................................................................................................ 5
1.5.3. Delimitación De La Investigación ................................................................................... 6
1.6. Variables ............................................................................................................................ 6
1.6.1. Variable Dependiente.................................................................................................. 6
1.6.2. Variable Independiente ...................................................................................................... 6
1.7. Hipótesis ............................................................................................................................ 6
1.7.1. Hipótesis general o premisa: ........................................................................................... 6
1.7.2. Hipótesis Nula ..................................................................................................................... 7
1.7.3. Hipótesis Alternativa ......................................................................................................... 7
XI
1.8. Operacionalización De Las Variables ........................................................................ 8
CAPÍTULO II ................................................................................................................................. 9
2. Marco Referencial ............................................................................................................... 9
2.1. Antecedentes .................................................................................................................... 9
2.2. Marco Teórico ................................................................................................................. 11
CAPÍTULO III .............................................................................................................................. 24
3. Materiales y Métodos ....................................................................................................... 24
3.1. Tipo de investigación ................................................................................................... 24
3.2. Materiales y Equipos .................................................................................................... 25
3.3. Toma de muestra ........................................................................................................... 25
3.4. Diseño de equipo de experimentación .................................................................... 26
3.5. Método de experimentación ....................................................................................... 26
3.6. Datos ................................................................................................................................. 27
3.6.1. Dosificación del Activador Enzimático .............................................................. 27
3.7. Técnica aplicada para la evaluación ........................................................................ 27
3.7.1. Protocolo De Muestreo ............................................................................................ 27
3.7.2. pH ................................................................................................................................... 27
3.7.3. Oxígeno disuelto ........................................................................................................ 28
3.7.4. Temperatura ................................................................................................................ 28
3.7.5. Salinidad y Conductividad ...................................................................................... 28
3.7.6. DQO ............................................................................................................................... 28
3.8. Normas aplicadas .......................................................................................................... 28
3.8.1. Conservación de la muestra ................................................................................... 28
3.8.2. Criterios de DQO ........................................................................................................ 28
3.8.3. Criterios de calidad del agua .................................................................................. 28
CAPÍTULO IV .............................................................................................................................. 29
4. Resultados .......................................................................................................................... 29
4.1. Resultados de análisis físico-químico..................................................................... 29
4.1.1. Parámetros Analizados de Semana 1 .................................................................. 29
4.1.2. Resultados de DQO semana 1 ............................................................................... 30
4.1.3. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones ................................................................ 31
4.1.4. Discusión de resultados .......................................................................................... 31
4.2. Tabla de resultados de la semana 2 ......................................................................... 32
4.2.1. Tabla de resultados DQO semana 2 ..................................................................... 33
XII
4.2.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones ................................................................ 34
4.2.3. Discusión de análisis ................................................................................................ 34
4.3. Tabla de resultados la semana 3............................................................................... 35
4.3.1. Tabla de resultados de DQO semana 3 ............................................................... 36
4.3.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones ................................................................ 37
4.3.3. Discusión de análisis ................................................................................................ 37
4.4. Tabla de resultados la semana 4............................................................................... 38
4.4.1. Tabla de resultados DQO semana 4 ..................................................................... 39
4.4.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones ................................................................ 40
4.4.3. Discusión de análisis ................................................................................................ 40
4.5. DISCUSIÓN Y ANÁLISIS DE RESULTADOS ........................................................... 41
4.6. Análisis en las columnas de agua ............................................................................ 41
4.6.1. pH ................................................................................................................................... 41
4.7. Oxígeno ............................................................................................................................ 42
4.8. Temperatura .................................................................................................................... 43
4.9. Salinidad .......................................................................................................................... 43
4.10. Conductividad ............................................................................................................ 44
CAPÍTULO V ............................................................................................................................... 46
CONCLUSIONES ....................................................................................................................... 46
RECOMENDACIONES ............................................................................................................. 47
Bibliografía ................................................................................................................................. 48
Anexos A ..................................................................................................................................... 51
ANEXO B ............................................................................................................................................ 52
ANEXO C ............................................................................................................................................ 57
ANEXO D ............................................................................................................................................ 67
ANEXO E ............................................................................................................................................. 75
XIII
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE INGENIERIA QUIMICA
CARRERA DE INGENIERIA QUIMICA
AUTORES:
CORONEL ROJAS KLEVER IVAN
YUPA CABADIANA GLENDA KATHERINE
TUTOR:
ING. JOSE CARDENAS MURILLO MSc.
RESUMEN
El siguiente estudio, tiene como propósito determinar la dosis óptima de un activador
enzimático, para lograr la adecuada degradación de materia orgánica no consumida
en el agua, proveniente de la alimentación de los camarones; el mismo que actúa como
un catalizador que acelera la biodegradación. Dado que el deterioro de la calidad del
agua, debido a la lenta descomposición de los nutrientes, impacta negativamente en
las condiciones de cría del crustáceo, produciendo liberación de compuestos nocivos
para la vida acuática, como amonio, nitritos, etc. Para lo cual se construyó 4 reactores
con aireación mecánica, conteniendo las muestras de agua y suelo de las piscinas
camaroneras, con concentraciones C1= 2 𝛍l/L, C2= 1,8 𝛍l/L, C3= 2.4 𝛍l/L, C4= 0 𝛍l/L.,
para control de la enzima en estudio, con un tiempo de retención de 1 semana. Los
parámetros físicos-químicos analizados en el agua fueron: temperatura, salinidad, pH,
DQO y conductividad. El estudio demostró una reducción sustancial en los tiempos de
degradación de la carga orgánica en términos de DQO como efecto de la utilización de
la enzima, alcanzando una concentración final de 3.33 mg/L, por debajo del límite
máximo tolerable para los camarones, en comparación con la concentración final de
1200 mg/L de la pecera de control sin enzima; además de la disminución de malos
olores mejorando la calidad de la misma. Los valores para el pH fueron de 8.58,
oxigeno 8.38 (mg/l), salinidad 18.5 (ppm) , conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura
25.18(ºC).
Palabras claves: Optimización, Enzima, DQO, Calidad del Agua.
XIV
.
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE INGENIERIA QUÌMICA
CARRERA DE INGENIERIA QUIMICA
AUTHORS:
CORONEL ROJAS KLEVER IVAN
YUPA CABADIANA GLENDA KATHERINE
ADVISOR:
ING. JOSE CARDENAS MURILLO MSc.
ABSTRACT
The purpose of the following study is to determine the optimal dose of an enzyme
activator, in order to achieve the adequate degradation of organic matter not
consumed in water, from the feeding of shrimp; the same that acts as a catalyst that
accelerates biodegradation. Since the deterioration of water quality, due to the slow
decomposition of nutrients, negatively impacts crustacean breeding conditions,
producing release of compounds harmful to aquatic life, such as ammonium, nitrites,
etc. To which end, 4 reactors with mechanical aeration were built, containing the water
and soil samples from the shrimp ponds, with concentrations C1 = 2 μl / L, C2 = 1.8 μl
/ L, C3 = 2.4 μl / L, C4 = 0 μl / L., To control the enzyme under study, with a retention
time of 1 week. The physical-chemical parameters analyzed in the water were:
temperature, salinity, pH, DQO and conductivity. The study showed a substantial
reduction in the degradation times of the organic load in terms of DQO as an effect of
the use of the enzyme, reaching a final concentration of 3.33 mg / L, below the
maximum limit tolerable for shrimps, in comparison with the final concentration of 1200
mg / L of the control tank without enzyme; In addition to the reduction of bad smells
improving the quality of it. The values for the pH were 8.58, oxygen 8.38 (mg / l),
salinity 18.5 (ppm), conductivity 29.23 (mg / cm), temperature 25.18 (ºC).
Keywords: Optimization, Enzyme, DQO, Water Quality.
XV
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1 Operacionalización de las variables ............................................................................ 8
Tabla 2: Materiales, Equipos y Reactivos ............................................................................... 25
Tabla 3: diseño de experimentación ........................................................................................ 27
Tabla 4: protocolo de muestreo ................................................................................................ 27
Tabla 5: Parámetros Fisicoquímicos Semana 1 .................................................................... 29
Tabla 6: Resultado DQO semana 1 ......................................................................................... 30
Tabla 7: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua ........................................................ 32
Tabla 8: Tabla de resultado DQO semana ............................................................................. 33
Tabla 9: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua ...................................................... 35
Tabla 10: Tabla de resultados DQO semana 3 ..................................................................... 36
Tabla 11: Pruebas de la enzima en aguas de camaroneras: semana 4 ........................... 38
Tabla 12: Tabla de resultados DQO semana 4 ..................................................................... 39
Tabla 13: resultados de los análisis de DQO ......................................................................... 41
Tabla 14: Efecto del pH en el camarón ................................................................................... 41
Tabla 15: tabla de control semana 1 ................................................................................... 67
Tabla 16: tabla de control semana 2 ................................................................................... 69
Tabla 17: tabla de control semana 3 ................................................................................... 71
Tabla 18: tabla de control semana 4 ................................................................................... 73
XVI
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1: Principio de exclusión del patógeno ....................................................................... 12
Figura 2: Actividad Enzimática Vs Temperatura ................................................................... 14
Figura 3: Proceso De Reacción Del Sustrato - Producto ..................................................... 15
Figura 4: Reacción con Enzima ............................................................................................... 15
Figura 5: Hidrolisis del almidón ................................................................................................ 17
Figura 6: Proceso De Descomposición De La Materia ......................................................... 18
Figura 7: Balance de Materia Aeróbica ................................................................................... 19
Figura 8: Balance de Materia Anaeróbica .............................................................................. 19
Figura 9: Piscina Extensivas ..................................................................................................... 21
Figura 10: Piscina Semi- Extensiva ......................................................................................... 22
Figura 11: Piscina Intensiva ...................................................................................................... 22
Figura 12: Reactor con agua y aireador ................................................................................ 26
Figura 13: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones ................ 31
Figura 14: Grafica de diferencia del DQO 1con las diferentes concentraciones ............. 34
Figura 15: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones ................ 37
Figura 16: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones ................ 40
Figura 17: Parámetros de calidad de agua y sus valores estándar ................................... 42
Figura 18:Condiciones de temperatura para especies acuáticas. ...................................... 43
Figura 19: ficha técnica de enzima a utilizar .......................................................................... 51
Figura 20: colocación de muestras reactores ........................................................................ 57
Figura 21: Pesaje de la enzima ................................................................................................ 57
Figura 22: Reactores Listos ...................................................................................................... 58
Figura 23: visualización de una agua oscura antes de la enzima ...................................... 58
Figura 24: Reactor de calentamiento con muestras ............................................................. 59
Figura 25: Espectrofotómetro ................................................................................................... 59
Figura 26: Medidor de pH .......................................................................................................... 60
Figura 27: Medidor de Oxigeno ................................................................................................ 60
Figura 28: Reactores ya con la dosificación ........................................................................... 61
Figura 29 :Reactores ya puesta la enzima ............................................................................. 61
Figura 30: Ubicación de camaronera ...................................................................................... 62
Figura 31 Ubicación camaronera ............................................................................................. 62
Figura 32: Recolección de muestras en la camaronera ....................................................... 63
Figura 33: Estanque Camaronera ............................................................................................ 63
Figura 34: Reactor de DQO ...................................................................................................... 64
Figura 35: Solución A y Solución B con la muestra .............................................................. 64
Figura 36: Espectrofotómetro ................................................................................................... 65
Figura 37: Estanques acuático ................................................................................................. 65
Figura 38: Estanques para la recolección de la Muestras ................................................... 66
Figura 39: Norma Técnica Ecuatoriana .................................................................................. 75
Figura 40: Parámetros de DQO ..................................................................................................... 76
Figura 41: Criterios a partir de los parámetros de DQO ....................................................... 77
Figura 42: Soluciones A+B para DQO .......................................................................................... 78
Figura 43: Reactivos aplicados para los análisis de DQO ................................................... 79
XVII
SIMBOLOGÍA
𝛍l micro litro
ml mililitro
l litro
ha Hectárea
mg miligramo
ppm parte por millón
cm centímetro
Co control
T₁ tratamiento uno
T₂ tratamiento dos
T₃ tratamiento tres
Cd1 control día uno
Cd2 control día dos
Cd3 control día tres
Cd4 control día cuatro
Cd5 control día cinco
T₁d1 tratamiento uno día uno
T₁d2 tratamiento uno día dos
T₁d3 tratamiento uno día tres
T₁d4 tratamiento uno día cuatro
T₁d5 tratamiento uno día cinco
T₂d1 tratamiento dos días uno
T₂d2 tratamiento dos días dos
T₂d3 tratamiento dos días tres
T₂d4 tratamiento dos días cuatro
T₂d5 tratamiento dos días cinco
T₃d1 tratamiento tres días uno
T₃d2 tratamiento tres días dos
T₃d3 tratamiento tres días tres
T₃d4 tratamiento tres días cuatro
T₃d5 tratamiento tres días cinco
1
INTRODUCCIÓN
En el Ecuador las industrias acuícolas principalmente derivadas de la producción de
camarón, han logrado un rápido crecimiento económico y productivo, contribuyendo al
incremento del PIB del país; Los últimos 15 años las exportaciones de camaroneros
fluctuaron en 5000 toneladas, a pesar de diferentes problemas sanitarios en cuanto a
brotes virales como la Mancha Blanca, que marco un quiebre abrumador a las
exportaciones, con una reducción de la producción en un 30% (Plaza, 2002), a pesar de
aquello el camarón sigue estando entre los principales productos no petroleros de más
exportación (Mario, 2015).
La demanda de camarón en el país ha tenido un rápido y sostenido crecimiento, en
cuanto a exportaciones, como se puede observar durante los años 2003-2010, dichas
exportaciones subieron en 284.7%, representando 849,5 millones de dólares; lo que nos
demuestra la evolución importante del sector y el aporte a la economía (Varela, 2011).
La alimentación del camarón, es uno de los rubros económicos más importantes en
cuanto a la producción, representando el 60% de la inversión, siendo las proteínas el
nutriente clave en el crecimiento de los especímenes (Dean M. Akiyama, 2012).
Dependiendo del tipo de cultivo, ya sea semi–intensivo o Intensivo; existe una
considerable contribución de nutrientes, que no logra ser aprovechado en su totalidad
por los crustáceos, acumulándose en el fondo de los estanques; impidiendo que la biota
no se desarrolle naturalmente; representando una pérdida económica para el acuicultor
(Julian, 2010).
El exceso de materia de origen orgánica en el agua es generado principalmente por los
alimentos no consumidos, heces y plantas acuáticas muertas (algas), lo que deriva una
serie de problemas, como malos olores y enfermedades infecciosas, derivadas de
hongos, virus o bacterias; llevando a la muerte inminente de los camarones, además de
disminuir el crecimiento y la producción de los especímenes (Tayron, 2017a).
2
Además, de que el cultivo de este crustáceo está impactando negativamente al ambiente,
debido a que los afluentes son vertidos directamente en cuerpos naturales de agua, con
altas concentraciones de carga orgánica y metabólicos, haciendo que la calidad de agua
que se desecha de las piscinas sea pésima (Tello, repositorio, 2015).
Es por ello, que la aplicación de enzimas, para ayudar a la biodegradación son cada vez
más utilizadas; dado que aceleran el tiempo de degradación de la materia orgánica y la
eliminación de sustancias nocivas como el amoníaco; las mismas que actúan como
catalizadores en las reacciones bioquímicas en las piscinas, favoreciendo en una mejor
calidad de agua y de suelo, durante la cría de camarones (aquafeed, 2014).
Con estos antecedentes, se procedió a realizar un estudio de laboratorio, con el fin de
evaluar la óptima dosificación de una enzima bio-degradadora, determinando la
eficiencia y la velocidad de degradación de la materia orgánica, a través de diferentes
recipientes que contenían concentraciones enzimáticas variadas, el control del proceso
fue monitoreado por medio de parámetros físico-químicos importantes para el adecuado
crecimiento de los crustáceos, como: temperatura, pH, salinidad, DQO y conductividad,
en un intervalo de tiempo de 24 horas para los parámetros físicos y de 7 días para los
fisicoquímicos.
3
CAPÍTULO I
1. Problema
1.1. Tema
Evaluación de un Activador Enzimático en la Disminución de la Materia Orgánica en
Estanques De Camarones.
1.2. Planteamiento del problema
En la actualidad, la utilización de bio-degradadores, ya sea del tipo enzimático o
microbiológico, en el control de materia orgánica en estanques de camarón, se lo realiza
de manera casi empírica, ósea basándose en el nivel de turbidez observable en el
momento de la dosificación; o siguiendo las recomendaciones del proveedor, las cuales
no toman en cuenta las condiciones físico-químicas de los mismos. Generando así un
consumo excesivo (sobredosificación), lo que se traduce en pérdidas de carácter
económico debido al gasto inadecuado del producto; o a su vez un consumo de la
enzima, dando como resultado una ineficiente degradación de materia orgánica.
1.3. Formulación Y Sistematización De La Investigación
1.3.1. Formulación del problema de investigación
a) ¿De qué manera influye el uso del activador enzimático, en la economía de los
acuicultores?
b) ¿Cómo incide la correcta dosificación de la enzima, en la velocidad de
degradación de los compuestos orgánicos?
4
1.3.2. Sistematización del problema
a) ¿Cuál ha sido la inversión en cuanto a adquisición de activador enzimático, que
han tenido que incurrir los acuicultores, antes de la dosificación adecuada?
b) ¿Cuál es el impacto sobre la tasa diaria de renovación de agua en los estanques,
con la aplicación del activador?
1.4. Justificación De La Investigación
1.4.1. Justificación Teórica
El control del proceso para la determinación de la eficiencia del activador se fundamenta
en las normativas:
NTE INEN 1203:2013, Determinación de la demanda química de oxígeno (DQO), la cual
determina la concentración de materia orgánica presente en el agua.
NTE INEN 2169:2013, sobre la calidad del agua para Muestreo, además del manejo y
conservación de muestras.
1.4.2. Justificación Metodológica
El uso de tratamientos biológicos con bacterias y enzimas en el tratamiento de aguas de
camaroneras, está dado buenos resultados en la mejora de la calidad de la misma. Entre
los principales beneficios de estos tratamientos, es la eliminación de olores
desagradables, aumenta de la productividad, descomposición de sulfuro de hidrógeno,
amoníaco, nitritos; además de menor tasa de renovación de agua e impacto positivo al
medio ambiente. El estudio pretende evaluar y determinar la dosificación óptima de la
enzima para el control del exceso de materia orgánica.
5
1.4.3. Justificación Práctica
El consumo óptimo del activador enzimático, proveerá un ahorro económico importante,
durante todo el proceso de cría y engorde de los camarones; dado que, al dosificar
correctamente, se asegurará una eliminación máxima carga orgánica presente en el
agua del estanque, evitando el exceso o la insuficiencia en cuanto a enzima, mejorando
la calidad de la misma; además de contribuir al control de otros parámetros físicos-
químicos importantes para la vida de los crustáceos.
1.5. Objetivos De La Investigación
1.5.1. Objetivo General
Evaluar el uso del activador enzimático en la disminución de la materia orgánica en
estanques de camarones.
1.5.2. Objetivos Específicos
Determinar los parámetros físico-químicos iniciales y finales de las muestras de
agua de los estaques de camaroneros (oxígeno, salinidad, conductividad, temperatura,
pH, DQO).
Establecer la concentración óptima del activador enzimático, para cumplir los
límites permisibles de calidad del agua.
Calcular la tasa de remoción de DQO, utilizando la enzima en los reactores piloto
durante el tratamiento.
6
1.5.3. Delimitación De La Investigación
El estudio se realizó en la Universidad de Guayaquil, en el Laboratorio de Investigación
de Medio Ambiente, de la Facultad de Ingeniería Química.
1.6. Variables
1.6.1. Variable Dependiente
Parámetros Físico - Químicos del agua de los estanques de camarón.
Indicadores:
Salinidad
Conductividad
DQO
pH
1.6.2. Variable Independiente
Enzimas
Indicadores:
Concentraciones
Temperatura
1.7. Hipótesis
1.7.1. Hipótesis general o premisa:
La aplicación de un activador enzimático, incide significativamente en la eliminación de
la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.
7
1.7.2. Hipótesis Nula
Ho= La aplicación de un activador enzimático, NO incide significativamente en la
eliminación de la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.
1.7.3. Hipótesis Alternativa
H1: La aplicación de un activador enzimático, SI incide significativamente en la
eliminación de la carga orgánica presente en el agua de las camaroneras.
8
1.8. Operacionalización De Las Variables
Tabla 1 Operacionalización de las variables Elaborado por: Coronel & Yupa
Tipo de
variables
Variable Definición Equip
o
Método unidad
Dependiente
DQO
Parámetro para medir el grado
de contaminación y la cantidad
de materia orgánica presente en
el agua (Industrial, 2015)
HACH
-DRB
200
HACH
-
DR/40
00U
Calidad del agua
determinación
DQO.metodo del
dicromato. Norma UNE
77004:2002,ISO
6060:1989
mg/l
Salinidad
Parámetro que mide el contenido
salino del agua. (Lutenberg, s.f.)
Se mide directamente
introduciendo la sonda en
las columnas de agua
ppm
Conductivida
d
Capacidad del fluido para conducir
corriente eléctrica a través de los
iones disueltos, lo que da una idea
del grado de mineralización del
agua (waterboards, 2010)
Se mide directamente
introduciendo la sonda
en las columnas de
agua
mS/cm
pH
Parámetro que mide la
concentración de iones de
hidrógeno en una solución
(López, 2016)
HACH
-
HG30
D
Medición directa,
introduciendo la
sonda en las aguas.
Independiente
Enzima
Proteínas que aceleran las
reacciones bioquímicas.(Cuadro,
n.d.).
Balanz
a
analitic
a
Aplicación directa mg/l
Temperatura
Propiedad que determinan si los
sistema se encuentran en
equilibrio térmico (Inzunza, 2002)
HACH
-
HG30
D
El método para la
lectura de este
parámetro es Introducir
directamente el Equipo
de medición
(/termómetro de sonda)
°C
9
CAPÍTULO II
2. Marco Referencial
2.1. Antecedentes
A nivel mundial, los impactos ambientales derivados Acuicultura son severos; los mismos
que dependiendo del tipo de cultivo; existe una considerable contribución de nutrientes,
que no logra ser aprovechado en su totalidad por los crustáceos, acumulándose en los
estanques, lo que ocasiona que el agua se renueve a una tasa permanente (Julian,
2010).
Es así que la aplicación de la biotecnología, en el control de exceso de materia orgánica
es cada vez más prometedora y contribuye al desarrollo sostenible de la acuicultura, a
través del control de la contaminación de las aguas (Rodríguez-Miranda, 2017); en vez
de verter dichos afluentes directamente en cuerpos naturales de agua, con altas
concentraciones de carga orgánica y metabólicos, haciendo que la calidad de agua que
se desecha de las piscinas sea pésima (Tello, repositorio, 2015).
La biodegradación, a través de microorganismos o enzimas, juegan un papel importante
en el control y/o eliminación de materia orgánica con efectos nocivos para las especies
acuáticas (camarones). Dicha método permite acelerar la degradación de la materia
orgánica, ofreciendo una excelente tasa de remoción (LÓPEZ, 2007).
Existen diferentes trabajos realizados, sobre la biodegradación de la materia orgánica
con la ayuda de activadores enzimáticos; como a continuación se detalla:
Título: Biodegradación De La Materia Orgánica Presente En Las Aguas Residuales De
Una Empresa De Pinturas
10
Autores: Luisa Fernanda Posada Uribe y Sandra Mosquera López
Año: 2007
Sinopsis: “la Compañía de Pintura, preocupada por la calidad de su efluente, desarrolló
un tratamiento biológico con cepas nativas, que permitió disminuir la carga orgánica y
darle al agua otro uso. Durante el proceso de aislamiento se obtuvieron cuatro (4) cepas,
utilizándose dos métodos para transferir las colonias a medio líquido y lograr su
crecimiento: procesos con y sin adaptación. Se realizó la evaluación económica del
proceso de biodegradación y se encontró un VPN de $581.325,2, una relación B/C de
1.10 y una TIR del 10%. Indicando viabilidad para el tratamiento” (LÓPEZ, 2007).
Título: Estudio De Tratabilidad Utilizando La Enzima Bioenzymar Para El Uso De
Tratamiento De Aguas Residuales De La Industria Cartonera.
Autores: Albán Quinto Jessy Elizabeth y Tumbaco Castillo Jhordy Steven
Año: 2018
Sinopsis: “La utilización de enzima en el efluente de la Cartonera , redujo en un 89% la
Demanda Química de Oxígeno y en un 92% la Demanda Biológica de Oxígeno, en
cuanto a la caracterización fisicoquímicas, los parámetros alcanzaron valores permitidos
por la norma de efluente de descarga de agua marina” (ELIZABETH, 2018).
11
2.2. Marco Teórico
El camarón durante su etapa de crecimiento presenta diferentes hábitos alimenticios, es
así que en la etapa juvenil consumen los bentos y en su adultez son netamente
omnívoros, además de alimentarse de balanceado (EEUU, 2010).
El compuesto principal del balanceado es la proteína, la cual es provista a través de la
soya y la harina de pescado; siendo el nutriente de mayor valor económico, la misma
que es suministrada sin conocer los requerimientos proteicos de los crustáceos,
acumulándose paulatinamente en los estanques. (EEUU, 2010).
En los estanques están presentes diferentes tipos de desechos orgánicos como: algas,
fitoplancton, zooplancton, heces y alimento no consumido, creando un ambiente
favorable para la proliferación de microorganismos patógenos para los camarones
(Ching, 2003).
Es así que para resolver esta problemática de la materia orgánica no aprovechada,
existen tres puntos de vista: 1) Conocer a fondo los requerimientos de consumo y de
digestibilidad del tipo de camarón cultivado 2) Tener una tasa de renovación constante
de agua del estanque con caudales frescos del exterior 3) Acelerar la degradación de los
desechos alimenticios con la ayuda de enzimas catalizadoras (EEUU, 2010).
2.2.1 Principio De Exclusión De Agentes Patógenos
Las enfermedades de los crustáceos, pueden ser causados por factores tan bióticos
como abióticos; los patógenos forman parte del componente biótico, mientras que el
componente abiótico lo componen factores ambientales como la temperatura, pH,
niveles de nitrógenos, DQO, pesticidas, etc, como se muestra en la figura 1 (EEUU,
2010).Los patógenos necesitan de un ambiente adecuado y de un huésped para
desarrollarse y enfermar a los organismos cultivados; es así que el principio de exclusión
nos dice, que solamente cuando un agente patógeno es excluido del ambiente o del
huésped, se evitaría una enfermedad (EEUU, 2010).
A continuación como se muestra en la figura 1 respectivamente:
12
Figura 1: Principio de exclusión del patógeno Fuente: (EEUU, 2010).
Dado que el camarón, naturalmente tiene una diversidad de microorganismos en estado
latente hasta que estas dos condicionantes se logren.
2.2.2 Nitrógeno
El nitrógeno es uno de los elementos cruciales en la nutrición de los camarones; el
mismo que forma parte de los restos de materia orgánica y que es liberado durante la
degradación de la misma, causando ascensos de concentración súbitas de amoniaco,
que a su vez eutrofiza el agua del estanque, consumiendo el oxígeno disuelto.
Además de ser un fertilizante para el desarrollo de la biota; entre lo cual tenemos el
fitoplancton, bacterias autótrofas y las heterótrofas. Pero el exceso de este elemento
provoca niveles intolerables de amoniaco, nitratos y nitritos que son resultado del ciclo
normal del nitrógeno (Gurrola, 2016).
2.2.3 Calidad del agua
Los parámetros físicos-químicos más importantes que se deben tener en cuenta en los
estanques para el adecuado desarrollo de los camarones son: Temperatura, pH,
salinidad, turbidez, materia orgánica, oxígeno disuelto y alcalinidad (Boyd, 2018).
13
2.2.4 Temperatura
Los camarones se desarrollan a temperaturas entre 25 y 32ºC. En regiones
subtropicales, dicho parámetro puede bajar a menos de 25 °C por periodos largos, por
lo que el crecimiento de los camarones se ve inhibido(Boyd, 2018).
2.2.5 Oxígeno disuelto
Es un elemento esencial para todas las especies acuáticas; el mismo que se reduce, a
mayor número de organismos vivos y de actividades bioquímicas; dando lugar a
ambientes anaeróbicos, produciendo componentes contaminantes como Amonio,
Metano, etc (ceniacua, 2010).
El desarrollo de las bacterias nitrificantes está controlado por la cantidad de oxígeno
disuelto presente en el medio, dado que son aeróbicas, por lo que necesitan oxígeno
para desarrollarse; por lo cual el OD establece la oxidación del nitrógeno amoniacal que
pasa a nitritos y posteriormente a nitratos cuyas transformaciones solamente suceden
en medios que contengan suficiente OD. Las bacterias nitrificantes son muy sensibles a
las concentraciones de OD , en comparación con las bacterias heterótrofas(Jarpa, n.d.).
2.2.6 Ph y Alcalinidad
El pH, es un parámetro que muestra la concentración del ion de hidrogeno, mientras que
la alcalinidad mide el potencial de neutralizar ácidos fuertes. En los estanques de
camarón este parámetro es afectado por el proceso de la fotosíntesis de las algas
(Gurrola, 2016).
2.2.7 Salinidad
La salinidad afecta directamente a la presión osmótica del agua, es así que cada especie
acuática tolera rangos de presión; una salinidad menor al límite permisible afecta
directamente a la fisiología del crustáceo, mientras que una alta salinidad forzar al
camarón a gastas mucha más energía de osmo-rregulación (Gurrola, 2016).
14
2.2.8 Enzimas
Las enzimas son biomoléculas (proteínas), que aceleran las reacciones bioquímicas;
dichos catalizadores aumentan la energía de activación del proceso; Siendo solubles,
no pudiéndose separar del sustrato, ni reutilizarlas en otras reacciones (ELIZABETH,
2018).
Un factor crucial en la actividad catalítica de las enzimas, es la temperatura; siendo esta
un inhibidor cuando se sobrepasa de la temperatura a la que la enzima puede resistir
(ELIZABETH, 2018).
A continuación, en el grafico 2 se muestra la relación de la actividad enzimática vs la
temperatura:
Figura 2: Actividad Enzimática Vs Temperatura Fuente: (Mezquita A. , 2016)
2.2.9 Reacciones enzimáticas
La enzima se acopla al sustrato para transformar en otro compuesto. Posteriormente
sigue la transformación del sustrato a producto, dando la libertad al producto y así de
esta manera queda separada la enzima para iniciar un nuevo proceso con el sustrato.(De
Lera Santín, 2015)
A continuación, se muestra el proceso de la reacción en la figura 3
15
Figura 3: Proceso De Reacción Del Sustrato - Producto Fuente: (De Lera Santín, 2015).
en la figura 4 cómo se la da reacción entre enzima:
Figura 4: Reacción con Enzima Fuente: (De Lera Santín, 2015)
16
2.2.10 Resultado de concentraciones de enzima y de sustrato
El dinamismo enzimático está definido por la concentración de enzimas, sustratos, la
disponibilidad de cofactores; siendo la rapidez de la reacción cambiante, en función de
la concentración enzimática. Existe un tiempo inicial llamado estado pre-estacionario,
que es la mezcla del exceso de sustrato en la enzima y posteriormente llega el estado
estacionario que es donde persiste constante en el tiempo.(De Lera Santín, 2015)
2.2.11 Tipos de enzimas
En el mercado existen una extensa variedad enzimática; pero las más comunes son las
de tipo hidrolasas, como la proteasas, lipasas y amilasas. Las enzimas hidrolasas, tienen
la función de degradar macromoléculas, catalizando el rompimiento de las misma (De
Lera Santín, 2015).
2.2.12 Enzima amilasas
La hidrolisis del almidón en enlaces éter de los polisacáridos que se encuentran en el
almidón; las mimas que se dividen en: α-amilasa, β-amilasa y gluco-amilasa (“science-
direct-topic-amylase.pdf,” n.d.). El α- amilasa es una enzima que cataliza la hidrolisis de
los enlaces glucosídicos; la misma que se utiliza en el sector: textil, panificación, jarabes
de glucosa y fructuosa; representando unas de las más importante, tanto que se estima
que tiene el 30% del mercado mundial de enzima(Montor-Antonio et al., 2014).
17
Se puede observar en la figura 5 estructura del Almidón cuando cambia Amilasa por
medio del hidrolisis.
Figura 5: Hidrolisis del almidón Fuente: (google imagenes, 2019)
2.2.13 Enzima lítica
Las enzimas líticas son reguladas por el genoma de los fagos, la misma que destruye
la pared bacteriana desde la parte interior de la célula mala y así posibilitar la libertad de
la especie fagica; esta enzima destruye el huésped por lo que varían las designaciones
que se desarrollan por los enlaces químico de la reacción, recientemente esta enzima es
utilizada para eliminar y prevenir los agentes patógenos (Ronda, Vasquez, & López,
2003).
2.2.14 Dinámica Bacteriana
El objetivo principal de las bacterias, es la degradación de la materia orgánica y otros
nutrientes que se encuentran, ya sea suspendida en el agua de forma coloidal o
sedimentada en el suelo de los estanques (ELIZABETH, 2018).
18
A continuación, se muestra en la figura 6, el proceso de descomposición de la materia
de origen orgánico:
Figura 6: Proceso De Descomposición De La Materia Fuente: (Muñoz, 2012)
El metabolismo de los microorganismos, hace que la materia orgánica una vez
metabolizada sea trasformada en una nueva biomasa (anabolismo), además de
transformarla en otros compuestos químicos, mediante la liberando energía
(catabolismo) (Ramalho, 2016).
Existen dos tipos de condiciones que dan origen a la degradación de los compuestos
orgánicos, las cuales son: Aeróbico y Anaeróbico.
2.2.15 Proceso Aeróbico
En este proceso interviene el oxígeno disuelto en el agua, donde la materia orgánica se
oxida mediante catabolismo; Para ayudar a que este proceso tenga lugar, se introduce
suficiente oxígeno con la ayuda de aireadores mecánicos.
19
Se observar en la figura 7, el balance de la materia Aeróbica:
Figura 7: Balance de Materia Aeróbica
Fuente: (Rodríguez, 2016)
Ventajas
Reducción de malos olores
Degradación de compuestos
Disminución de parámetros físico-químicos (DQO y DBO5)
2.2.16 Proceso Anaeróbico
Proceso de fermentación que se lleva a cabo sin la presencia de oxigeno; el mismo que
finaliza la degradación de materia orgánica ya descompuesta, liberando metano.
A continuación, se observa en la figura 8:
Figura 8: Balance de Materia Anaeróbica Fuente: (Rodríguez, 2016)
20
Ventajas
Producción mínima de lodos.
Generación de metano, que puede ser aprovechado en otros procesos.
Ahorro en cuanto a la utilización de aireadores mecánicos.
2.2.17 Resultados prometedores
Las enzimas en los estanques de camarones como agente de control biológico tienen
una gran importancia específicamente en la calidad de agua y los lodos, ayudando al
desarrollo del crustáceo; demostrándose que utilizar bacterias y enzimas en los
estanques, mejora la calidad de los suelos negros con acumulación de materia orgánica,
además de la apariencia (color); aumentando el rendimiento productivo de los
camarones.
La utilización de enzimas determinadas como: amilasas, celulosas, proteasas o
bacterias como el bacillus, hacen posible la pre-digestión de algunos nutrientes con
mayor complejidad para ser digeridos. (Mayer, Enzimas – mejora en la calidad del agua
y el suelo en acuicultura, 2012).
.
2.3 Marco Conceptual
2.3.1 Enzimas
Son proteínas que ayudan a la catálisis de las reacciones biológicas, son una de las más
importantes biomoléculas debido a su poder catalítico (Alonso Mezquita, 2000).
Aceleran la transformación de un compuesto orgánico en otro, por ejemplo, la enzima
diastasa hidroliza más rápidamente el almidón que el ácido sulfúrico. En la actualidad se
han descubierto más de 2000 enzimas lográndose aislar unas 200, con las cuales se han
desarrollado productos para el mantenimiento industrial, alimenticio (Alonso Mezquita,
2000).
21
2.3.2 Materia orgánica
Son compuestos que contienen carbohidratos, proteínas, lípidos, etc. Los mismo son
susceptibles a la descomposición por microorganismos en dióxido de carbono y humus.
2.3.3 Sistema de producción extensivo
Tipo de estanques utilizan grandes extensiones de terreno >100 ha, con bajísima tasa
de recambio de agua, con una población inferior a 5 especímenes/m2, las especies que
habitan allí, se alimentan de los microorganismo que habita en los estanques, ya que
no reciben alimentación externa (Profesional, 2012).
Un tipo de estanque es la extensiva como podemos observar en la figura 9:
Figura 9: Piscina Extensivas Fuente: (google imagenes, 2019)
2.3.4 Sistema de producción semi-intensivo
Los estanques tienen una extensión < 20 ha, los cuales cuentan con una tasa de
recambio de agua cerca del 20% por día. Con una población de 25 especímenes /m2,
además reciben regularmente alimentación externa como una forma complementaria de
alimento(Profesional, 2012).
22
A continuación podemos observar en la figura 10 otro tipo de estanque Semi-Extensiva:
Figura 10: Piscina Semi- Extensiva Fuente: (google imagenes, 2019)
2.3.5 Sistema de producción Intensivo
Los estanques cuentan con una extensión < 2 ha, utilizan una elevada tasa de recambio
de agua (>50%). La densidad poblacional es de alrededor de 100 especímenes/m2,
utilizando aireación mecánica continua y alimentación externa constante, que es una de
las más tradicional (Profesional, 2012).
A continuación como nos muestra la figura 11 la piscina intensiva:
Figura 11: Piscina Intensiva Fuente: (google imagenes, 2019)
23
2.3.6 DQO en columnas de agua
Es un parámetro del grado de contaminación del agua, indica la cantidad de oxigeno
necesario para oxidar compuestos orgánicos, acorde a condiciones de temperatura
(ambientum, 2016).
2.3.7 pH en estanques de camaroneros
El pH es uno de los parámetros más importantes de control, dado que afecta el
metabolismo y los procesos fisicoquímicos en las especies acuáticas. Puede crear
susceptibilidad y estrés y eso hace que disminuya la producción, el pH suele cambiar de
la noche a la mañana; El dióxido de carbono (CO₂) tiene un efecto sobre el pH, cuando
el CO₂ se encuentra bajo, el pH del agua tiende aumentar y viceversa.
En estanques de cultivo el rango óptimo de pH se encuentra entre 7.5 a 8.5, valores entre
8.6 a 9.9 bloquean el proceso de muda ya que el ion predominante en el agua es el CO₃.
Aguas con alcalinidad moderada están más amortiguadas y hay un menor grado de
variación del Ph (“Balnova | pH en estanques de camarón,” 2014).
24
CAPÍTULO III
3. Materiales y Métodos
3.1. Tipo de investigación
La presente propuesta de trabajo de titulación corresponde a una investigación de:
a) Investigación Documental y Bibliográfica
Se recabo información de distintas fuentes bibliográficas, dicha información fue del
tipo primaria y secundaria. La información primaria, contenía toda la normativa
aplicable a los cultivos semi-intensivos de camarón y la información
secundaria contenían publicaciones de internet, paper’s y libros; ambas
investigaciones se vieron plasmada en el marco teórico.
b) Investigación Cuantitativa
En el estudio se analizó diferentes parámetros cuantitativos, los mismos que fueron
comparados con los respectivos límites permisibles estipulados en las normativas
correspondientes.
c) Investigación Experimental
En este tipo de investigación, se corrió cuatro tratamientos o experimentos; en los
cuales se ejercieron injerencia (manipulando) en las variables, para luego analizar
los resultados generados por las variables de respuesta.
25
3.2. Materiales y Equipos
Tabla 2: Materiales, Equipos y Reactivos
Nombre Descripción
Materiales Muestra a tratar:
Agua de camaronera
80 litro
Enzima 1 litro
Equipos pH metro HACH-HG30D
Reactor de calentamiento HACH-DRB 200
Espectrofotómetro HACH-DR/4000U
Analizador de oxigeno HACH-HG30D
Aireador JAD-PUMP S-4000B
Reactivos Agua de destilación 99.5 % pureza
Papel filtros MN 615-Ɵ 125mn
COD Solución A para medir el rango 4.0 - 40.0; 10
- 150 y 100 - 1500 mg/ l; 0,30 ml
por determinación de
Espectrofotómetro 0.30 ml por
muestra
COD Solución B para el rango de medición 100 -
1500 mg/ l; 2.30 ml y 2.85 ml por
determinación de
Espectrofotómetro 2.85 ml por
muestra
Elaborado por: Coronel & Yupa
3.3. Toma de muestra
La muestra de agua y de suelo fueron recogidas de una camaronera, ubicada en
el km 19 vía a la costa de la provincia del Guayas; para luego ser trasladadas al
laboratorio de la Facultad de Ingeniería Química.
26
3.4. Diseño de equipo de experimentación
Se construyeron 4 reactores de 15cm de largo, 20cm de ancho y 30cm de altura, a
los cuales se les hizo lavado y desinfección por cada prueba, para posteriormente
colocarle el agua a evaluar; Además se incorporó 4 aireadores mecánicos para
recrear las condiciones naturales de los estanques.
Figura 12: Reactor con agua y aireador Fuente: Coronel & Yupa
3.5. Método de experimentación
Se colocaron 500 ml de agua de muestra en cada reactor; luego se vertieron 3
concentraciones diferentes de enzima C1= 2 𝛍l/L, C2= 1,8 𝛍l/L, C3= 2.4 𝛍l/L, C4=
0 𝛍l/L, la última de control. Luego se realizaron los respectivos análisis de los
parámetros físico-químicos (temperatura, pH, oxígeno) diariamente, DQO en
intervalos de 48 horas y Salinidad y Conductividad en el día 1 y el día 6 de cada
corrida; registrados los valores obtenidos de cada uno, durante 6 días.
Repitiéndose la experimentación durante 4 semanas consecutivas, con el fin de
obtener suficientes datos, para el respectivo análisis estadístico.
27
3.6. Datos
3.6.1. Dosificación del Activador Enzimático
Tabla 3: diseño de experimentación
Elaborado por: Coronel & Yupa
3.7. Técnica aplicada para la evaluación
3.7.1. Protocolo De Muestreo
Tabla 4: protocolo de muestreo
PARÁMETROS MUESTREO
24 HORAS
MUESTREO
48 HORAS
MUESTREO
DIA 5
DQO X
Oxígeno Disuelto X
Potencial de
Hidrogeno
X
Temperatura X
Conductividad X
Salinidad X
Elaborado por: Coronel & Yupa
3.7.2. pH
Para la determinación del potencial de hidrógeno, se utilizó el multi-parámetro de
HACH-HG30D
DOSIFICACION ENZIMATICA PARA 5 LITROS DE AGUA
REACTORES ml de ENZIMA /ha ml ENZIMA /ha 𝛍l ENZIMA
1 0 0 0
2 400 1,2E10ˆ-3 1,2
3 600 1,8E10ˆ-3 1,8
4 800 2,4E10ˆ-3 2,4
28
3.7.3. Oxígeno disuelto
El oxígeno disuelto que se midió mediante el equipo HACH-HG30D
3.7.4. Temperatura
La temperatura se mide con el equipo HACH-HG30D
3.7.5. Salinidad y Conductividad
Los análisis de salinidad y Conductividad se los realizaron en el laboratorio de
aguas, Petróleo y Medio Ambiente.
3.7.6. DQO
Este análisis se realizó en base a la NTE INEN 1203:2013, utilizándose 0.30ml del
reactivo COD Solución A se utilizó y 2.85 ml para el reactivo COD Solución B,
utilizándose el Espectrofotómetro HACH-DR/4000U y el Reactor de calentamiento
HACH-DRB 200 por el método de absorbancia.
3.8. Normas aplicadas
3.8.1. Conservación de la muestra
Norma técnica ecuatoriana NTE INEN 2169:2013 “AGUA. CALIDAD DEL AGUA.
MUESTREO. MANEJO Y CONSERVACION DE MUESTRAS. (Ver Anexo)
3.8.2. Criterios de DQO
NTE INEN 1203:2013, para la determinación de la demanda química de oxígeno
(DQO), la cual determina la concentración de materia orgánica presente en el agua.
(Ver Anexo)
3.8.3. Criterios de calidad del agua
Se tomó las normativas del N₀ 0.97-A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para
la preservación de la vida acuática y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios.
(Ver Anexo)
29
CAPÍTULO IV
4. Resultados
En esta experimentación se obtuvo los siguientes resultados de las variables
usadas con la enzima
4.1. Resultados de análisis físico-químico
Los análisis se hicieron diariamente para las columnas de agua:
4.1.1. Parámetros Analizados de Semana 1
Tabla 5: Parámetros Fisicoquímicos Semana 1
Muestras pH Oxigeno
(mg/l)
Salinidad
(ppm)
Conductividad
(mg/cm)
Temperatura
(ºC)
Cd1
Cd2
Cd3
Cd4
Cd5
T₁d1
T₁d2
T₁d3
T₁d4
T₁d5
T₂d1
T₂d2
T₂d3
T₂d4
T₂d5
T₃d1
T₃d2
T₃d3
T₃d4
T₃d5
Promedio
8.75
8.67
8.60
8.71
8.70
8.80
8.70
8.65
8.75
8.73
8.76
8.67
8.64
8.76
8.74
8.76
8.67
8.67
8.75
8.72
8.71
8.39
8.54
8.70
8.58
8.70
8.44
8.60
8.69
8.61
8.68
8.45
8.59
8.72
8.69
8.72
8.44
8.64
8.72
8.60
8.72
8.61
7.8
7.8
7.8
7.8
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.5
7.8
7.8
7.8
7.8
7.8
7.8
7.65
13.03
13.03
13.03
13.03
13.03
12.98
12.98
12.98
12.98
12.98
12.92
12.92
12.92
12.92
12.92
13.30
13.30
13.30
13.30
13.30
12.41
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
26
Fuente: Coronel & Yupa
30
4.1.2. Resultados de DQO semana 1
Tabla 6: Resultado DQO semana 1
Fuente: Coronel & Yupa
Semana
1
TRATAMIENTOS
Días C (𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₁(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₂(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₃(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂)
1
1836.66
1836.66
1836.66
1836.66
3
-
1770
1703.33
636.66
5 - 1036.66 770 3.33
31
4.1.3. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones
Figura 13: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones
Fuente: Coronel & Yupa
4.1.4. Discusión de resultados
Los análisis del DQO(demanda química de oxigeno) para la primera semana se
mostró en la figura 13 está en 1836.66 al inicio sin la enzima en la que queda una
como control (C₀) , ya con la enzima con las diferentes concentraciones, para el
primer análisis en el tercer día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control
es de 1770 la del tratamiento (T₂) 1703.33 y la del tratamiento (T₃) 636.66 hay una
diferencia entre la inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día,
(T₁)1036.60, (T₂) 770 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con
la enzima para la primera semana a dado buenos resultados.
1836.66 1836.66 1836.661836.66
1770
1036.6
1836.661703.33
770
1836.66
636.66
3.330
200
400
600
800
1000
1200
1400
1600
1800
2000
DQ
O
MUESTRAS
DIFERENCIA CON LAS DIFERENTES CONCENTRACIONES(semana 1)
C₀ T₁ T₂ T₃
Día 3Día 1 Día 5
32
4.2. Tabla de resultados de la semana 2
Tabla 7: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua
Fuente: Coronel & Yupa
Muestras pH Oxigeno
(mg/l)
Salinidad
(ppm)
Conductividad
(mg/cm)
Temperatura
(ºC)
C₀d1
C₀d2
C₀d3
C₀d4
C₀d5
T₁d1
T₁d2
T₁d3
T₁d4
T₁d5
T₂d1
T₂d2
T₂d3
T₂d4
T₂d5
T₃d1
T₃d2
T₃d3
T₃d4
T₃d5
Promedio
8.28
8.84
8.70
8.75
8.86
8.21
8.79
8.70
8.72
8.82
8.25
8.83
8.80
8.75
8.84
8.27
8.84
8.83
8.77
8.87
8.69
7.29
8.62
8.58
8.63
8.53
6.15
8.45
8.43
8.49
8.44
6.68
8.50
8.53
8.59
8.49
6.74
8.47
8.48
8.52
8.44
8.15
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.3
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.4
6.35
10.84
10.84
10.84
10.84
10.84
10.76
10.76
10.76
10.76
10.76
10.89
10.89
10.89
10.89
10.89
11.00
11.00
11.00
11.00
11.00
10.87
26
24
24
24
24
26
24
24
24
24
26
24
24
24
24
26
24
24
24
24
24.4
33
4.2.1. Tabla de resultados DQO semana 2
Tabla 8: Tabla de resultado DQO semana
Fuente: Coronel & Yupa
Semana
2
TRATAMIENTOS
Días C (𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₁(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₂(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂) T₃(
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂)
1
1170
1170
1170
1170
3
-
1036.60
970
303.33
5 - 703.33 436.66 3.33
34
4.2.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones
Figura 14: Grafica de diferencia del DQO 1con las diferentes concentraciones
Fuente: Coronel & Yupa
4.2.3. Discusión de análisis
Los análisis del DQO para la segunda semana se mostró en la figura 14 está
en 1170 al inicio sin la enzima en la que queda una como control (C₀) , ya con
la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el tercer
día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 1036.60 la del
tratamiento (T₂) 970 y la del tratamiento (T₃) 303.33 hay una diferencia entre la
inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁)703.33, (T₂)
436.66 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con enzima para
la segunda semana a dado buenos resultados.
35
4.3. Tabla de resultados la semana 3
Tabla 9: Pruebas de la enzima en Reactor con el agua
Muestras pH Oxigeno
(mg/l)
Salinidad
(ppm)
Conductividad
(mg/cm)
Temperatura
(ºC)
C₀d1
C₀d2
C₀d3
C₀d4
C₀d5
T₁d1
T₁d2
T₁d3
T₁d4
T₁d5
T₂d1
T₂d2
T₂d3
T₂d4
T₂d5
T₃d1
T₃d2
T₃d3
T₃d4
T₃d5
Promedio
8.34
8.55
8.55
8.51
8.49
8.33
8.46
8.42
8.41
8.43
8.33
8.49
8.50
8.45
8.45
8.41
8.53
8.52
8.50
8.47
8.46
8.17
8.34
8.38
8.46
8.63
8.16
8.24
8.30
8.43
8.74
8.18
8.29
8.36
8.46
8.53
8.18
8.27
8.36
8.50
8.52
8.39
29.8
29.8
29.8
29.8
31.0
29.8
29.8
29.8
29.8
30.3
29.8
29.8
29.8
29.8
30.7
29.8
29.8
29.8
29.8
31.5
30
46.7
46.7
46.7
46.7
47.1
46.7
46.7
46.7
46.7
46.6
46.7
46.7
46.7
46.7
47.1
46.7
46.7
46.7
46.7
48.2
46.82
27
25
25
25
24
27
25
25
25
24
27
25
25
25
24
27
25
25
25
24
25.11
Fuente: Coronel & Yupa
36
4.3.1. Tabla de resultados de DQO semana 3
Tabla 10: Tabla de resultados DQO semana 3
Fuente: Coronel & Yupa
Semana
3
TRATAMIENTOS
Días C T₁ T₂ T₃
1
2103.33
2103.33
2013.33
2103.33
3
- 603.33 370 136.66
5 - 170 136.66 3.33
37
4.3.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones
Figura 15: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones
Fuente: Coronel & Yupa
4.3.3. Discusión de análisis
Los análisis del DQO para la tercera que se muestra en la figura 15 está en
2103.33 al inicio sin la enzima en la que queda una como control ( C₀ ) , ya con
la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el tercer
día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 603.33 la del
tratamiento (T₂) 370 y la del tratamiento (T₃) 136.66 hay una diferencia entre la
inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁)170, (T₂)
136.66 y (T₃) 3.33 lo que da como resultado que el tratamiento con enzima para
la tercera semana a dado buenos resultados.
38
4.4. Tabla de resultados la semana 4
Tabla 11: Pruebas de la enzima en aguas de camaroneras: semana 4
Muestras pH Oxigeno
(mg/l)
Salinidad
(ppm)
Conductividad
(mg/cm)
Temperatura
(ºC)
Cd1
Cd2
Cd3
Cd4
Cd5
T₁d1
T₁d2
T₁d3
T₁d4
T₁d5
T₂d1
T₂d2
T₂d3
T₂d4
T₂d5
T₃d1
T₃d2
T₃d3
T₃d4
T₃d5
Promedio
8.34
8.49
8.47
8.44
8.50
8.33
8.44
8.42
8.41
8.49
8.33
8.47
8.45
8.45
8.50
8.41
8.52
8.48
8.47
8.53
8.44
8.17
8.27
8.46
8.60
8.51
8.16
8.26
8.34
8.53
8.41
8.18
8.30
8.41
8.56
8.42
8.18
8.30
8.41
8.53
8.41
8.37
29.8
29.8
29.8
29.8
31.0
29.8
29.8
29.8
29.8
30.3
29.8
29.8
29.8
29.8
30.7
29.8
29.8
29.8
29.8
31.5
30
46.7
46.7
46.7
46.7
47.1
46.7
46.7
46.7
46.7
46.6
46.7
46.7
46.7
46.7
47.1
46.7
46.7
46.7
46.7
48.2
46.81
26
25
25
25
25
26
25
25
25
25
26
25
25
25
25
26
25
25
25
25
25.20
Fuente: Coronel & Yupa
39
4.4.1. Tabla de resultados DQO semana 4
Tabla 12: Tabla de resultados DQO semana 4
FUENTE: Coronel & Yupa
Semana
1
TRATAMIENTOS
Días C T₁ T₂ T₃
1
1036.66
1036.66
1036.66
1036.66
3
- 536.66 203.33 36.66
5 - 160 130 3.33
40
4.4.2. Grafica de diferencia en la disminución del DQO con las diferentes
concentraciones en estanques de camarones
Figura 16: Grafica de diferencia del DQO con las diferentes concentraciones
Fuente: Coronel & Yupa
4.4.3. Discusión de análisis
Los análisis del DQO para la cuarta semana que se muestra en la figura 16 está
en 1036.66 al inicio sin la enzima en la que queda una como control ( C ) , ya
con la enzima con las diferentes concentraciones, para el primer análisis en el
tercer día en comparación del tratamiento (T₁) con la de control es de 536.66 la
del tratamiento (T₂) 203.33 y la del tratamiento (T₃) 36.66 hay una diferencia
entre la inicial según las concentraciones aplicadas y en el último día, (T₁) no se
le hizo análisis, (T₂) no se le hizo análisis (T₃) 3.33 lo que da como resultado que
el tratamiento con enzima para la cuarta semana a dado buenos resultados.
1036.66 1036.66 1036.661036.66
536.66
160
1036.66
203.33130
1036.66
36.66 3.330
200
400
600
800
1000
1200
DQ
O
MUESTRAS
DIFERENCIA DE DISMINUCION CON LASA DIFERENTES CONCENTRACIONES
C₀ T₁ T₂ T₃
Día 3 Día 5Día 1
41
4.5. DISCUSIÓN Y ANÁLISIS DE RESULTADOS
4.5.1. Análisis y resultados de DQO
Tabla 13: resultados de los análisis de DQO
SEMANAS DQO(o) DQO(f) % remoción
SEMANA 1 1836.66 3.33 99.81
SEMANA 2 1170 3.33 99.71
SEMANA 3 2103.33 3.33 99.84
SEMANA 4 1036.66 3.33 99.67
Fuente: Coronel & Yupa
4.6. Análisis en las columnas de agua
4.6.1. pH
El pH es un parámetro muy importante en el agua de camaronera, los análisis
que se hicieron en el laboratorio de agua en comparación con la figura de las
normativas del N₀ 0.97-A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para la
preservación de la vida acuática y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios,
nos dice que los rangos son de 6.5-9.5, los valores que se anotaron durante el
control de este parámetros en la semana 1, semana 2, semana 3, semana 4 está
entre 8.00 a 8.85, lo que significa que se encuentran en los rango establecido en
la normativa, no afecta la enzima en el pH durante el tratamiento.
La siguiente tabla muestra el efecto del pH en el camarón:
Tabla 14: Efecto del pH en el camarón
pH Efecto
4 PH acido letal
4-6 Crecimiento lento
6-9 Condición optimo
9-11 Crecimiento lento
11 pH básico letal
Fuente: Coronel & Yupa
42
4.7. Oxígeno
El oxígeno es un factor crítico en los estanques, los análisis que se hicieron en el
laboratorio de agua en comparación con la figura de las normativas del N₀ 0.97-
A-Tabla 2: criterios de calidad admisibles para la preservación de la vida acuática
y silvestre en aguas dulces, marinas y estuarios, los rangos son de porcentaje de
saturación mayor a 60%
Los datos que se anotaron en el control de estos parámetros son de 6.15 a 8.5
mg/l en la semana 1, semana 2, semana 3 y semana 4, lo que está en rango
normales según la tabla siguiente de parámetros de calidad de agua y sus valores
estándar que dice que deben ser mayor a 4.0 mg/l lo que significa que durante el
tratamiento con la enzima no fue afectado este parámetro.
A continuación, observaremos en la figura 17, los parámetros del agua y sus
valores:
Figura 17: Parámetros de calidad de agua y sus valores estándar
Fuente: (Mayer, 2012)
43
4.8. Temperatura
La temperatura es un factor crítico ya que si se encuentra en rango menor a 21ºC
afecta el metabolismo de los camarones y no crecen, los análisis que se hicieron
para este parámetro durante el tratamiento fueron de 24 ºC a 27 ºC en la semana
1, semana 2, semana 3, y semana 4, lo que es normal para los estanques de
estos crustáceos según la tabla de condiciones de temperatura para especies
acuáticas y la enzima a evaluar no afecto durante la experimentación.
A continuación, se puedes observar en la figura 18 los rangos de temperatura
para las especies acuáticas:
Figura 18:Condiciones de temperatura para especies acuáticas.
Fuente: (Mayer, 2012)
4.9. Salinidad
La salinidad también es un parámetro a controlar en los estanques de camarones
ya que si se encuentra en salinidad menores a 5ppt afecta el crecimiento del
camarón, los análisis durante el tratamiento fueron de 6-30 ppt que es un rango
normal para estos crustáceos, los datos a que se obtuvieron en la semana 1,
44
semana 2, semana 3, semana 4, fueron estable desde el inicio al final durante
cada experimentación.
4.10. Conductividad
La conductividad está en rango de 10-46 mg/cm para la semana 1, semana 2,
semana 3, semana 4 lo que significa que se mantiene en los estándares de limites
permisibles para aguas de camaroneras, dando buenos resultados con la enzima
aplicada ya que no artera este parámetro.
45
4.11. Tabla de promedios de variables usadas en la experimentación
Fuente: Coronel & Yupa
4.12. Grafica promedios de variables
4.13. Análisis de resultados
La grafica nos muestra que en las variables usadas no hay una afectación de la enzima
ya que se mantiene con sus valores iniciales y un rango permisibles para las industrias
camaroneras.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
ph oxigeno (mg/l) salinidad(ppm) conductividad (mg/cm) temperatura (ºC)
Promedios de variables
Promedio semana 1 Promedio semana 2 Promedio semana 3 Promedio semana 4 promedio total
promedios ph oxigeno (mg/l) salinidad(ppm)
conductividad (mg/cm) temperatura (ºC)
Promedio semana 1 8,71 8,61 7,65 12,41 26
Promedio semana 2 8,69 8,15 6,35 10,87 24,4
Promedio semana 3 8,46 8,39 30 46,82 25,1
Promedio semana 4 8,44 8,37 30 46,81 25,2
promedio total 8,575 8,38 18,5 29,2275 25,175
46
CAPÍTULO V
CONCLUSIONES
Se redujo la concentración de materia orgánica del agua, en términos de
DQO de más de 2000 mg/l a 3.33mg/l en un tiempo de residencia de 28 días,
mediante la utilización del activador enzimático.
Los parámetros físicos-químicos analizados (salinidad 18.5 (ppm),
conductividad 29.23 (mg/cm), temperatura 25.18 (ºC) , pH), se mantuvieron
constantes a pesar de la aplicación de la enzima; lo que demuestra que la
enzima, solo influye en la materia orgánica.
Se realizó 4 muestras con diferentes dosificaciones enzimáticas,
concluyendo que los resultados de tratamiento 3 es la más óptima para la
reducción de DQO con una concentración de 2.4 𝛍lha.
El uso de enzima demostró ser una alternativa muy favorable para la
disminución de materia orgánica en estanques de camarones, mejorándose
significativamente la calidad de agua para los crustáceos.
Se alcanzó la tasa de remoción de 99.6% de DQO.
47
RECOMENDACIONES
Extender los análisis de los parámetros físicos-químicos( nitritos, nitratos,
nitrógeno, nitrógeno total etc) al suelo de los estanques, dado que la mayor
concentración de materia orgánica, reside en el fondo de los estanques.
Incorporar el análisis de turbiedad del agua, entre los parámetros de estudios;
dado que el mismo puede afectar a la fotosíntesis de las algas, limitando la
generación de oxígeno para la vida acuática.
Utilizar en la medida posible, aireadores mecánicos para proveer de oxigeno
suficiente a los camarones, el mismo que es consumido rápidamente a través de
los procesos químico y la degradación de la materia orgánica.
Investigar el impacto de la utilización de la enzima, en la reducción de la tasa de
recambio del agua de los estanques y el ahorro económico que representa
(análisis económico).
48
Bibliografía
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DESCOMPOSICIÓN DE MATERIA ORGÁNICA EN LOS ESTANQUES DE. Nicovita
, 01.
51
Anexos A
Ficha técnica
Figura 19: ficha técnica de enzima a utilizar
Fuente: Naturelsa s.a
52
ANEXO B
CALCULO DE DOSIFICACION DE LA ENZIMA PARA LOS REACTORES
De 400 ml 800 ml por HA
A= 300 = 3.10ˆ-6 cmˆ2
Media = 800+400 = 1200
1200/2= 600
Control tratamiento sin enzima
Control (C)= 0 enzima
Tratamiento uno con enzima para 400 mililitro por hectárea
400 ml∗3.10−6Ha
1 HA= 1.2𝑒10−3 𝑚𝑙
Conversión a micro litro
1.2 ∗ 10−3 𝑚𝑙 =1000 μl
1 ml= 1.2 𝛍l
Tratamiento 1 (T₁) = 1.2 𝛍l enzima
Tratamiento dos con enzima para 600 mililitro por hectárea
600 ml∗3.10−6Ha
1 HA= 1.8𝑒10−3 𝑚𝑙
Conversión a micro litro
1.8𝑒10−3 𝑚𝑙 =1000 μl
1 ml= 1.8 𝛍l
Tratamiento 2 (T₂) = 1.8 𝛍l enzima
Tratamiento tres con enzima para 800 mililitro por hectárea
800 ml∗3.10−6Ha
1 HA= 2.4𝑒10−3𝑚𝑙
53
Conversión a micro litro
2.4𝑒10−3𝑚𝑙 =1000 μl
1 ml= 2.4 𝛍l
Tratamiento 3 (T₃) = 2.4 𝛍l enzima
CÁLCULOS PARA OBTENER EL DQO POR EL MÉTODO DE ABSORBANCIA SEMANA 1
Y=0.0006X+0.0249 𝑿 =𝒀−𝟎.𝟎𝟐𝟒𝟗
𝟎.𝟎𝟎𝟎𝟔
Calculo para el día 1 sin enzima
Disolución 20 ml/1 ml= 20 ml
𝐶 =0.060 − 0.0249
0.0006= 58.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 1170
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 3 con enzima
𝑇₁ =0.056 − 0.0249
0.0006= 51.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 1036.6
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.054 − 0.0249
0.0006= 48.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 970
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.034 − 0.0249
0.0006= 13.17
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 303.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 5 con enzima
𝑇₁ =0.046 − 0.0249
0.0006= 35.17
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 703.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.038 − 0.0249
0.0006= 21.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 436.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
54
𝑇₃ =0.025 − 0.0249
0.0006= 0.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 3.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
CÁLCULOS PARA OBTENER EL DQO POR EL MÉTODO DE ABSORBANCIA SEMANA 2
Y=0.0006X+0.0249 𝑿 =𝒀−𝟎.𝟎𝟐𝟒𝟗
𝟎.𝟎𝟎𝟎𝟔
Calculo para el día 1 sin enzima
Disolución 20 ml/1 ml= 20 ml
𝐶 =0.060 − 0.0249
0.0006= 58.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 1170
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 3 con enzima
𝑇₁ =0.056 − 0.0249
0.0006= 51.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 1036.6
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.054 − 0.0249
0.0006= 48.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 970
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.034 − 0.0249
0.0006= 13.17
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 303.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 5 con enzima
𝑇₁ =0.046 − 0.0249
0.0006= 35.17
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 703.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.038 − 0.0249
0.0006= 21.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 436.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.025 − 0.0249
0.0006= 0.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 3.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
55
CÁLCULOS PARA OBTENER EL DQO POR EL MÉTODO DE ABSORBANCIA SEMANA 3
Calculo para el día 1 sin enzima
Disolución 20 ml/1 ml= 20 ml
𝐶 =0.088 − 0.0249
0.0006= 105.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 2103.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 3 con enzima
𝑇₁ =0.043 − 0.0249
0.0006= 30.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 603.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.036 − 0.0249
0.0006= 18.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 370
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇3 =0.029 − 0.0249
0.0006= 6.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 136.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 5 con enzima
𝑇₁ =0.030 − 0.0249
0.0006= 8.5
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 170
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.029 − 0.0249
0.0006= 6.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 136.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.025 − 0.0249
0.0006= 0.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 3.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
56
CÁLCULOS PARA OBTENER EL DQO POR EL MÉTODO DE ABSORBANCIA SEMANA 4
Calculo para el día 1 sin enzima
Disolución 20 ml/1 ml= 20 ml
𝐶 =0.056 − 0.0249
0.0006= 51.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 1036.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 3 con enzima
𝑇₁ =0.041 − 0.0249
0.0006= 26.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 536.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =0.031 − 0.0249
0.0006= 10.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 203.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.026 − 0.0249
0.0006= 1.83
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 36.66
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
Calculo para el día 5 con enzima
𝑇₁ =Y − 0.0249
0.0006=
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 =
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₂ =Y − 0.0249
0.0006=
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 =
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
𝑇₃ =0.025 − 0.0249
0.0006= 0.16
𝑚𝑙
𝑙∗ 20 = 3.33
𝑚𝑙
𝑙𝐷𝑄𝑂
57
ANEXO C
Evidencia Fotográfica
Colocación de la muestra en los reactores, como podemos observar en la figura 20:
Figura 20: colocación de muestras reactores
Fuente: Coronel & Yupa
Figura 21: Pesaje de la enzima Fuente: Coronel & Yupa
58
Este fue nuestro modelo de reactor donde 3 reactores y uno era de control, como
podemos observar en la figura 22:
Figura 22: Reactores Listos Fuente: Coronel & Yupa
Como se puede observar el color de agua de la camaronera previo de la dosificación
de la enzima, como podemos observar en la figura 23:
Figura 23: visualización de una agua oscura antes de la enzima
Fuente: Coronel & Yupa
59
Equipo en el cual se colocaba para el análisis de DQO, como podemos observar en la
figura 24:
Figura 24: Reactor de calentamiento con muestras
Fuente: Coronel & Yupa
Los resultados que nos dio después de calcular el DQO, como podemos observar en la
figura 25:
Figura 25: Espectrofotómetro
Fuente: Coronel & Yupa
60
Este equipo con el que mediamos pH, la cantidad de oxigeno como podemos observar
en la figura 26:
Figura 26: Medidor de pH
Fuente: Coronel & Yupa
El equipo completo con bulbo, como podemos observar en la figura 27:
Figura 27: Medidor de Oxigeno
Fuente: Coronel & Yupa
61
Nuestros reactores ya con la dosificación y con aireación como podemos observar en
la figura 28:
Figura 28: Reactores ya con la dosificación Fuente: Coronel & Yupa
La aireación es importante la que le ayuda a la remoción de la enzima como podemos
observar la parte superior de la figura 29:
Figura 29 :Reactores ya puesta la enzima
Fuente: Coronel & Yupa
62
Ubicaciones de las camaroneras que se adquirió la muestras como lo mostramos en la
figura 30 y 31:
Figura 30: Ubicación de camaronera
Fuente: (googgle maps, 2019)
Figura 31 Ubicación camaronera
(google maps, 2019)
63
Muestra de la recoleccion de las muestras podemos observar en a figura 32:
Figura 32: Recolección de muestras en la camaronera
Fuente: Coronel & Yupa
Se observa los sedimentos y el agua con un tono opaco, para nuestro análisis como se
observa en la figura 33:
Figura 33: Estanque Camaronera
Fuente: Coronel & Yupa
64
Análisis de DQO con su temperatura, como podemos observar en la figura 34:
Figura 34: Reactor de DQO
Fuente: Coronel & Yupa
Prueba de evidencia de la solución A y B como se observa en la figura 35:
Figura 35: Solución A y Solución B con la muestra
Fuente: Coronel & Yupa
65
Equipo espectrómetro que es fundamental para los análisis:
Figura 36: Espectrofotómetro
Fuente: Coronel & Yupa
Vista panorámica de la camaronera como podemos observar en la figura 37:
Figura 37: Estanques acuático
Fuente: Coronel & Yupa
66
Una de las piscinas que se recolecto las muestra podemos, observar en la figura 38:
Figura 38: Estanques para la recolección de la Muestras
Fuente: Coronel & Yupa
67
ANEXO D
Tabla 15: tabla de control semana 1
AGUA SIN ENZIMA
MIERCOLES 7 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (1) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.39 8.75 7.8 13.03 26
TRATAMIENTO
1
8.44 8.80 7.5 12.98 26
TRATAMIENTO
2
8.45 8.76 7.5 12.92 26
TRATAMIENTO
3
8.44 8.76 7.8 13.30 26
AGUA CON ENZIMA
JUEVES 8 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (2) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.54 8.67 7.8 13.03 26
TRATAMIENTO
1
8.60 8.70 7.5 12.98 26
TRATAMIENTO
2
8.59 8.67 7.5 12.92 26
TRATAMIENTO
3
8.64 8.67 7.8 13.30 26
AGUA CON ENZIMA
VIERNES 9 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (3) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.70 8.60 7.8 13.03 26
TRATAMIENTO
1
8.69 8.65 7.5 12.98 26
TRATAMIENTO
2
8.72 8.64 7.5 12.92 26
TRATAMIENTO
3
8.72 8.67 7.8 13.30 26
AGUA CON ENZIMA
SABADO 10 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (4) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.58 8.71 7.8 13.03 26
TRATAMIENTO
1
8.61 8.75 7.5 12.98 26
TRATAMIENTO
2
8.69 8.76 7.5 12.92 26
68
Fuente: Coronel & Yupa
TRATAMIENTO
3
8.60 8.75 7.8 13.30 26
AGUA CON ENZIMA
DOMINGO 11 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (5) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.70 8.70 7.8 13.03 26
TRATAMIENTO
1
8.68 8.73 7.5 12.98 26
TRATAMIENTO
2
8.72 8.74 7.5 12.92 26
TRATAMIENTO
3
8.72 8.72 7.8 13.30 26
69
Tabla 16: tabla de control semana 2
AGUA SIN ENZIMA
MARTES 20 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (1) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 7.29 8.28 6.3 10.84 26
TRATAMIENTO 1 6.15 8.21 6.3 10.76 26
TRATAMIENTO 2 6.68 8.25 6.4 10.89 26
TRATAMIENTO 3 6.74 8.27 6.4 11.00 26
AGUA CON ENZIMA
MIERCOLES 21 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (2) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.62 8.84 6.3 10.84 24
TRATAMIENTO 1 8.45 8.79 6.3 10.76 24
TRATAMIENTO 2 8.50 8.83 6.4 10.89 24
TRATAMIENTO 3 8.47 8.84 6.4 11.00 24
AGUA CON ENZIMA
JUEVES 22 DE NOVIEMBRE 2018
DIA . (3) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.58 8.70 6.3 10.84 24
TRATAMIENTO 1 8.43 8.70 6.3 10.76 24
TRATAMIENTO 2 8.53 8.80 6.4 10.89 24
TRATAMIENTO 3 8.48 8.83 6.4 11.00 24
AGUA CON ENZIMA
VIERNES 23 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (4) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.63 8.75 6.3 10.84 24
TRATAMIENTO 1 8.49 8.72 6.3 10.76 24
TRATAMIENTO 2 8.59 8.75 6.4 10.89 24
TRATAMIENTO 3 8.52 8.77 6.4 11.00 24
AGUA CON ENZIMA
SABADO 24 DE NOVIEMBRE 2018
DIA (5) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
70
Fuente: Coronel & Yupa
CONTROL 6.3 10.84 24
TRATAMIENTO 1 6.3 10.76 24
TRATAMIENTO 2 6.4 10.89 24
TRATAMIENTO 3 6.4 11.00 24
71
Tabla 17: tabla de control semana 3
AGUA SIN ENZIMA
VIERNES 14 DE DICIEMBRE 2018
DIA (1) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.17 8.34 29.8 46.7 27
TRATAMIENTO
1
8.16 8.33 29.8 46.7 27
TRATAMIENTO
2
8.18 8.33 29.8 46.7 27
TRATAMIENTO
3
8.18 8.41 29.8 46.7 27
AGUA CON ENZIMA
SABADO 15 DE DICIEMBRE 2018
DIA (2) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.34 8.55 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
1
8.24 8.46 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
2
8.29 8.49 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
3
8.27 8.53 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
DOMINGO 16 DE DICIEMBRE 2018
DIA . (3) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.38 8.55 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
1
8.30 8.42 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
2
8.36 8.50 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
3
8.36 8.52 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
LUNES 17 DE DICICIEMBRE 2018
DIA (4) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.46 8.51 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
1
8.43 8.41 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
2
8.46 8.45 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
3
8.50 8.50 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
MARTES 18 DE DICIEMBRE 2018
DIA (5) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
72
Fuente: Coronel & Yupa
CONTROL 8.63 8.49 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
1
8.74 8.43 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
2
8.53 8.45 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO
3
8.52 8.47 29.8 46.7 25
73
Tabla 18: tabla de control semana 4
AGUA SIN ENZIMA
MARTES 18 DE DICIEMBRE 2018
DIA (1) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.17 8.34 29.8 46.7 26
TRATAMIENTO 1 8.16 8.33 29.8 46.7 26
TRATAMIENTO 2 8.18 8.33 29.8 46.7 26
TRATAMIENTO 3 8.18 8.41 29.8 46.7 26
AGUA CON ENZIMA
MIERCOLES 19 DE DICIEMBRE 2018
DIA (2) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.27 8.49 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 1 8.26 8.44 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 2 8.30 8.47 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 3 8.30 8.52 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
JUEVES 20 DE DICIEMBRE 2018
DIA . (3) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.46 8.47 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 1 8.34 8.42 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 2 8.41 8.45 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 3 8.41 8.48 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
VIERNES 21 DE DICIEMBRE 2018
DIA (4) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
CONTROL 8.60 8.44 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 1 8.53 8.41 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 2 8.56 8.45 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 3 8.53 8.47 29.8 46.7 25
AGUA CON ENZIMA
SABADO 22 DE DICIEMBRE 2018
DIA (5) O2(mg/l) PH SALINIDAD(ppm) CONDUCTIVIDAD(mg/cm) TEMPERATURA(ºC)
74
Fuente: Coronel & Yupa
CONTROL 8.51 8.50 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 1 8.41 8.49 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 2 8.42 8.50 29.8 46.7 25
TRATAMIENTO 3 8.41 8.53 29.8 46.7 25
75
ANEXO E Norma Técnica Ecuatoriana aplicada para nuestro proyecto
Figura 39: Norma Técnica Ecuatoriana
Fuente: (Ecuador Patente nº primera revision, 2013)
76
Los parámetros que utilizamos como base de DQO a partir de la norma técnica como
vemos en la figura 40:
Figura 40: Parámetros de DQO
Fuente: (Ecuador Patente nº primera revision, 2013)
77
Criterios de calidad de acuerdo a la norma ecuatoriana NTE- INEN 2169-2013 como se
muestra en la figura 41:
Figura 41: Criterios a partir de los parámetros de DQO
Fuente: (Ecuador Patente nº primera revision, 2013)
78
Hoja técnica de las soluciones A y B para los análisis de DQO mostrados en la figura
42:
Fuente: DQO para análisis
Figura 42: Soluciones A+B para DQO
79
Los reactivos que se utilizo para los análisis como se muestra en la figura 43:
Figura 43: Reactivos aplicados para los análisis de DQO
Fuente: (Coronel & Yupa, 2018)
80