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Producto 3

ANÁLISIS DE RIESGO DE PLAGAS (ARP) PARA LA IMPORTACIÓN DE MATERIAL PROPAGATIVO (TROZOS Y/O VÁSTAGOS) DE CAÑA DE AZÚCAR (SACCHARUM OFFICINARUM) ORIGINARIOS Y PROCEDENTES DE LA REPÚBLICA DE COSTA

RICA, PARA EVALUACIÓN EN CAMPO.

Etapa I.

1

Info

rme

2009

Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria

Identificación de plagas cuarentenarias potenciales.

A. Metodología.

Inicialmente se integro una lista lo más completa posible mediante la búsqueda en diferentes fuentes informativas que refieren directa ò indirectamente a la República de Costa Rica, de donde se pretenden importar los Trozos (Vastagos) de Caña de Azúcar. La lista inicial (Cuadro 1) se integro por 124 organismos considerados como plagas, enfermedades y malezas asociadas a la especie a importar, Saccharum officinarum.

Se ordenaron las diferentes plagas de acuerdo al tipo de organismo (insectos, ácaros, hongos, nematodos, bacterias, virus, malezas, etc.), reportadas en distintas fuentes informativas para el cultivo y lugar de origen referido.

Posteriormente se revisó cada una de las plagas para ubicar la familia a la que pertenecen, así como para determinar su presencia y/o ausencia en México, así como su situación reglamentaria en el país, lo anterior para establecer su estatus cuarentenario en apego a los lineamientos nacionales e internacionales para la elaboración del ARP.

Para identificar su presencia y/o ausencia tanto en la República de Costa Rica, así como en México, se utilizaron las siguientes Bases de Datos:

Etapa Il.

Bases de Datos.

CABI. 2007. Crop Protection Compendium. Global Module. CAB International. United Kingdom.

Data Base European and Mediterranean Quarantines Pest Data Sheet. UK (PQR) Global Plant Quarantine Information System. Versión 2.1. Food and Agriculture Organization

of the United Nations (FAO). Evaluación del Riesgo de Plagas El proceso para la evaluación del riesgo de plagas puede dividirse en tres pasos relacionados

entre sí: - categorización de las plagas - evaluación de las probabilidades de introducción y dispersión - evaluación de las consecuencias económicas potenciales (incluidas los impactos

ambientales).

Con las fuentes de información anteriormente referidas se requisito la matriz de análisis de datos “Cuadro 1” para identificar y determinar las posibles plagas potenciales de importancia cuarentenaria, de acuerdo a los criterios geográficos y regulatorios.

Posteriormente se analizó el “Cuadro 2” si alguna de estas plagas está asociada al producto a importar “Trozos (Vástagos) de Caña de Azúcar” para siembra experimental (Evaluación) y su importancia económica.

Analisis de cuadro 1 y 2Primero: Derivado del análisis de la matriz de datos (Cuadro 1), para identificar y determinar las posibles plagas potenciales de importancia cuarentenaria para México asociadas a la especie Saccharum officinarum originarias de la República de Costa Rica, de acuerdo a los criterios geográficos y regulatorios, se hacen las siguientes consideraciones:

2

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Producto 3

De los 124 organismos considerados en el cuadro 1, se han determinado 19 asociadas a la especie Saccharum officinarum para siembra experimental (Evaluación), no presentes en México o si presentes se encuentran bajo alguna regulación oficial.

De los 19 organismos antes referidos se documento su posible asociación al producto a importar “Trozos (Vastagos)”, así como su impacto económico a fin de cumplir con la definición de plaga cuarentenaria, identificando 4 potenciales plagas de importancia cuarentenaria, para las cuales se elaboró una ficha técnica para cada plaga. De estos 4 organismos, es un insecto: Metamasius hemipterus serceus, un hongo: Ligniera vascularum y 2 bacterias: Erwina chrysanthemi y Erwinia chrsanhemi pv. zeae, los que se enumeran a continuación

Insecto:

1. Metamasius hemipterus sericeus

Hongo:

1. Ligniera vascularum

Bacterias:

1. Erwinia chrysanthemi

2. Erwinia chrysanthemi pv. Zeae

Cuadro 1. Plagas asociadas al cultivo de Caña de Azúcar (Saccharum officinarum) presentes en Costa Rica y su situación fitosanitaria en México

No. Tipo de plaga

Identidad de la plaga Presencia o ausencia en el origen-Costa Rica

Presencia o ausencia en el área de ARP- México

Nombre científico

Ubicación taxónomica Orden:Familia

CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes

Inf. del país de origen

CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

1 Bacteria Acidovorax avenae subsp. avenae, Pseudomonas rubrilineans

Burkholderiales: Comamonadaceae

P ND

ND

A-1 P ND

ND

7,8

2 Bacteria Erwinia carotovora subsp. Atroseptica

Enterobacteriales: Enterobacteriaceae

P ND

ND

P ND

ND

46, 49

3 Bacteria Erwinia chrysanthemi


P ND

A A ND

A 7,8,11 NOM-07, NOM-12

4 Bacteria Erwinia chrysanthemi pv. zeae


P ND

ND

A ND

ND

29 H.R

3

Info

rme

2009


No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

5 Bacteria Leifsonia xyli subsp. xyli

Actinomycetales: Microbacteriaceae

A ND

ND

A-1 P ND

ND

67,68

6 Bacteria Pantoea agglomerans


P ND

ND

P ND

ND

27, 28

7 Bacteria Xanthomonas albilineans

Xanthomonadales: Xanthomonadaceae

A ND

A A-1 P ND

P 3, 9, 10

8 Hongo Aspergillus niger Hongo anomorfico A ND

ND

A ND

ND

7,8,15

9 Hongo Bipolaris sacchari Hongo anomorfico P ND

ND

A-1 P ND

ND

8, 62, 66

10 Hongo Ceratocystis paradoxa

Microascales: Ceratocystiaceae

P ND

ND

A-1 P ND

ND

14, 63

11 Hongo Cercospora koepkei Pseudocercospora miscanthi

Hypocreales: Nectriaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

12 Hongo Cercospora longipes Hypocreales: Nectriaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

8

13 Hongo Chalara elegans Hongo anomorfico P ND

ND

A ND

ND

4, 14, 23

14 Hongo Cochliobolus sativus

Pleosporales: Pleosporaceae

P ND

ND

P ND

ND

7,8,14,16

15 Hongo Corticium rolfsii Polyporales: Corticiaceae

P ND

ND

P ND

ND

8,9,22 H.R.

16 Hongo Cochliobolus lunatus, (asexual Curvularia lunata)


A ND

ND

A-1 P ND

ND

7,8

17 Hongo Cytospora sacchari

Diaporthales: Valsaceae ND

ND

ND

A-1 ND

ND

ND

8, 77

18 Hongo Dimeriella sacchari

Dothideomycetidae: Paradiopsidaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

19 Hongo Drechslera sacchari, Bipolaris sacchari


P ND

ND

A-1 P ND

ND

8, 62, 66

20 Hongo Fusarium monilforme

Ascomycetes: Hypocreales

P ND

A A-1 P ND

A 8, 70

21 Hongo Gibberella fujikuroi, Fusarium moniliforme

Hypocreales: Nectriaceae P ND

A P ND

A 7,8,9,14,18

H.R

22 Hongo Gloeocercospora sorghi

Ascomycetes: Glomerellaceae

A ND

ND

A-1 P ND

ND

7, 8, 62

23 Hongo Glomerella tucumanensis, Physalospora tucumanensis

Ascomycetes: Glomerellaceae

P ND

ND

A-1 A ND

ND

8, 14

24 Hongo Lasiodiplodia theobromae

Hongo anomorfico P ND

ND

P ND

ND

8,12, 34

25 Hongo Leptosphaeria sacchari Phyllosticta sorghina

Ascomycetes: Magnaporthaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

8, 14

26 Hongo Ligniera vasculorum

Plasmidiophorales: Plasmodiohoraceae

A A A A-1 A A A

4

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No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

Plasmodiophora vasculorum

27 Hongo Macrophoma sacchari

Acarosporaceae: Lecanorales

ND

ND

ND

A-1 ND

ND

ND

28 Hongo Marasmius sacchari

Agaricales: Marasmiaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

8, 71

29 Hongo Nigrospora sacchari

Hongo anomorfico A ND

ND

A-1 A ND

ND

30 Hongo Phyllosticta sacchari Leptosphaeria sacchari

Pleosporales: Leptosphaeriaceae

A ND

ND

A-1 A ND

ND

8, 14

31 Hongo Puccinia melanocephala

Uredinales: Pucciniaceae P P A A-1 P P P 61, 69

32 Hongo Puccinia kuehnii Uredinales: Pucciniaceae A ND

A A-1 A ND

A

33 Hongo Pythium debaryanum

Oomycetes: Saprolegniales

P ND

ND

P ND

ND

7, 14

34 Hongo Rhizoctonia solani

Ceratobasidiales: Ceratobasidiaceae

P ND

ND

A-1 P ND

ND

14,42

35 Hongo Sclerotium rolfsii Poliporales: Corticiaceae P ND

ND

A-1 P ND

ND

4, 42 H. R

36 Hongo Sclerotinia sclerotiorum

Helotiales: Sclerotiniaceae

P ND

ND

P ND

ND

7, 9, 10, 14

37 Hongo Ustilago scitaminea

Ustilaginales:Ustilaginaceae

P ND

P A-1 P ND

P 7, 8, 14

38 Insecto Acromyrmex octospinosus

Hymenoptera: Formicidae P ND

ND

A ND

ND

83, 84

39 Insecto Aphis gossypii Hemiptera: Aphididae P ND

ND

P ND

ND

1,2,3

40 Insecto Aphis spiraecola Hemiptera: Aphididae P ND

ND

P ND

ND

1,2,6

41 Insecto Araecerus fasciculatus

Coleoptera: Anthribidae P ND

ND

P ND

ND

1,2,3

42 Insecto Aspidiotus destructor

Hemiptera: Diaspididae P ND

ND

P ND

ND

72, 73

43 Insecto Atta cephalotes Hymenoptera: Formicidae P ND

ND

P ND

ND

87, 88

44 Insecto Diatraea lineolata Lepidoptera: Crambidae P ND

ND

P ND

ND

80, 81

45 Insecto Diatraea saccharalis

Lepidoptera: Crambidae P A A P P P 1,2,3,24

46 Insecto Dysmicoccus brevipes

Hemiptera: Pseudococcidae

P ND

ND

P ND

ND

1, 20, 21

47 Insecto Elasmopalpus lignosellus

Lepidoptera: Pyralidae P ND

ND

P ND

ND

1, 2, 3, 39

48 Insecto Ferrisia virgata Hemiptera: Pseudococcidae

P ND

ND

P ND

ND

1,3

49 Insecto Hyperomyzus lactucae

Hemiptera: Aphididae P ND

ND

P ND

ND

85, 86

50 Insecto Metamasius Coleoptera: P P N P P N 36

5

Info

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2009


No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

hemipterus sericeu

Curculionidae D D

51 Insecto Mocis latipes Lepidoptera: Noctuidae P ND

ND

P ND

ND

89, 90

52 Insecto Mythimna unipuncta

Lepidoptera: Noctuidae P ND

ND

P ND

ND

1, 6, 16

53 Insecto Myzus persicae Hemiptera: Aphididae P ND

ND

P ND

ND

2, 3, 49

54 Insecto Orthezia insignis Hemiptera: Ortheziidae P ND

ND

P ND

ND

55 Insecto Peregrinus maidis

Hemiptera: Delphacidae P ND

ND

P ND

ND

1, 60

56 Insecto Phyllophaga spp. Coleoptera: Scarabaeidae

P ND

ND

P ND

ND

1,2,24

57 Insecto Planococcus citri Hemiptera: Pseudococcidae

P ND

ND

P ND

ND

6, 47 NOM-009

58 Insecto Podischnus agenor

Coleoptera: Scarabaeidae

P ND

ND

A ND

ND

54, 55

59 Insecto Rhynchophorus palmarum

Coleoptera: Curculionidae

P P P P P P 1, 3, 6

60 Insecto Saccharicoccus sacchari

Hemiptera: Pseudococcidae

P ND

ND

P ND

ND

1, 3

61 Insecto Selenaspidus articulatus

Hemiptera: Diaspididae P ND

ND

P ND

ND

1, 3

62 Insecto Spodoptera frugiperda

Lepidoptera: Noctuidae P P ND

P P ND

1, 2, 3

63 Insecto Xyleborus volvulus

Coleoptera: Scolytidae P ND

ND

P ND

ND

91, 92

64 Maleza Acanthospermum hispidum

Asterales: Asteraceae P ND

ND

A ND

ND

NOM-43

65 Maleza Ageratum conyzoides


ND

P ND

ND

5, 75

66 Maleza Bidens pilosa Asterales: Asteraceae P ND

ND

P ND

ND

5, 24

67 Maleza Borreria latifolia Gentianales: Rubiaceae P P P P P P 5, 33, 44

68 Maleza Cenchrus echinatus

Cyperales: Poaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 32, 33

69 Maleza Chromolaena odorata


ND

P ND

ND

5, 79

70 Maleza Commelina diffusa

Commelinales: Commelinaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 30

71 Maleza Conyza canadensis


ND

P ND

ND

5, 30

72 Maleza Cynodon dactylon


ND

P ND

ND

5, 24

73 Maleza Cyperus compressus

Cyperales: Cyperaceae P ND

ND

A ND

ND

5, 78

6

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Producto 3

No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

74 Maleza Cyperus rotundus Cyperales: Cyperaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 15

75 Maleza Dactyloctenium aegyptium


ND

A ND

ND

5, 76

76 Maleza Datura stramonium

Solanales: Solanaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 79

77 Maleza Echinochloa colona


ND

P ND

ND

5, 24

78 Maleza Echinochloa crus-galli


ND

P ND

ND

5,16

79 Maleza Eleusine indica Cyperales: Poaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 15

80 Maleza Emilia sonchifolia Asterales: Asteraceae P ND

ND

P ND

ND

5, 79

81 Maleza Euphorbia heterophylla

Euphorbiales: Euphorbiaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 43

82 Maleza Heliotropium indicum

Boraginales: Boraginaceae

P ND

ND

P ND

ND

5. 30

83 Maleza Ipomoea triloba Solanales: Convolvulaceae

P P ND

P À ND

5, 33, 37

84 Maleza Kyllinga brevifolia, Cyperus brevifolius

Monocotyledonae: Cyperaceae

P ND

ND

A ND

ND

5, 48

85 Maleza Lantana camara Lamiales: Verbenaceae P ND

ND

A ND

ND

5, 17

86 Maleza Leersia hexandra Cyperales: Poaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 76

87 Maleza Mimosa diplotricha

Fabales: Fabaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 50, 52

88 Maleza Mimosa pudica Fabales: Fabaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 79

89 Maleza Momordica charantia

Violales: Cucurbitaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 78

90 Maleza Oxalis corniculata Geraniales: Oxalidaceae P ND

ND

A ND

ND

5, 79

91 Maleza Panicum maximum


ND

P ND

ND

5, 33, 43

92 Maleza Parthenium hysterophorus


A P ND

P 5, 78

93 Maleza Passiflora foetida Violales: Passifloraceae P ND

ND

P ND

ND

5, 45, 78

94 Maleza Pennisetum clandestinum

Cyperales: Poaceae P P P A A A 5, 79

95 Maleza Poa annua Cyperales: Poaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 79

96 Maleza Portulaca oleracea

Caryophyllales: Portulacaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 78

97 Maleza Rottboellia cochinchinensis


ND

A ND

ND

NOM-43

7

Info

rme

2009


No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

98 Maleza Rumex crispus Polygonales: Polygonaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 79

99 Maleza Setaria parviflora Cyperales: Poaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 79

100 Maleza Setaria pumila, S. glauca, S. lutescens


ND

P ND

ND

5, 76

101 Maleza Solanum nigrum Solanales: Solanaceae P ND

ND

P ND

ND

5, 33, 53

102 Maleza Trianthema portulacastrum

Caryophyllales: Aizoaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 33, 79

103 Maleza Tribulus terrestris Geraniales: Zygophyllaceae

P ND

ND

P ND

ND

5, 79

104 Maleza Tridax procumbens


P P ND

P 5, 79

105 Maleza Urochloa plantaginea


ND

P ND

ND

5, 19

106 Nematodo Belonolaimus longicaudatus

Belonolaimidae P ND

ND

P ND

ND

8, 57

107 Nematodo Criconemella sp. Criconematidae P ND

ND

P ND

ND

8, 57

108 Nematodo Helicotylenchus dihystera

Hoplolaimidae P ND

ND

P ND

ND

8,13

109 Nematodo Helicotylenchus multicinctus

Hoplolaimidae P ND

ND

P ND

ND

13, 51

110 Nematodo Hemicriconemoides mangferae

Criconematidae P ND

ND

P ND

ND

111 Nematodo Hirschmanniella oryzae

Pratylenchidae P P A A A A 8 NOM-013

112 Nematodo Longidorus sp. Longidoridae P ND

ND

P ND

ND

25, 26

113 Nematodo Meloidogyne arenaria

Meloidogynidae P ND

ND

P ND

ND

13, 56, 57

H.R.

114 Nematodo Meloidogyne exigua

Meloidogynidae P P P A A A 58 NOM-012

115 Nematodo Meloidogyne javanica

Meloidogynidae P ND

ND

P ND

ND

13, 35 NOM-012

116 Nematodo Pratylenchus brachyurus

Pratylenchidae P ND

ND

P ND

ND

13, 38

117 Nematodo Pratylenchus zeae

Pratylenchidae P ND

ND

A ND

ND

118 Nematodo Pratylenchus penetrans

Pratylenchidae P P ND

P P ND

13, 24 H.R.

119 Nematodo Radopholus similis

Pratylenchidae P P P P P A 8, 52, 53

H.R.

8

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Producto 3

No. Tipo de plaga



Nombre científico


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes


CPC

EPPO

FAO

Otras fuentes SR

PAM y/o

REG.

120 Nematodo Scutellonema brachyurus

Hoplolaimidae P ND

ND

A ND

ND

13 H.R.

121 Nematodo Trichodorus sp Trichodoridae P ND

ND

A ND

ND

41, 59 H.R

122 Nematodo Tylenchorhynchus annulatus

Dolichodoridae P ND

ND

A ND

ND

123 Virus Maize stripe virus Tenuivirus P P A A A A 64, 65

124 Virus Sugarcane Mosaic Virus

Potyviridae P ND

A P ND

A 60, 82

P= Presente A=Ausente ND= No Disponible SR= Situación ReglamentariaPAM o REG= Plaga Ausente de México o Regulada

P DR= Presente con distribución restringida

CPC= CABI. 2007. Crop Protection Compendium. CAB International (CABI). Wallingford, United Kingdom.

FAO= FAO. 1994. Global Plant Quarantine Information System. Versión 2.1. Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO).

EPPO= EPPO. 2007. Plant Quarantine information Retrieval System (PQR). Ver 4.6. European and Mediterranean Plant Protection Organization (EPPO).

A-1. Ministerio de Agricultura y Ganadería de Costa Rica. 2008. LISTA DE ENFERMEDADES DE LOS CULTIVOS AGRÍCOLAS DE COSTA RICA. http://www.protecnet.go.cr/laboratorios/LISTA%20ENFERMEDADES%20ACTUALIZADA.htm

Literatura consultada en el Cuadro 1

1. García Martell C. 1981. Lista de Insectos y Ácaros Perjudiciales a los Cultivos en México. FITOFILO. Núm. 86. Secretaría de Agricultura y Recursos Hidráulicos. Dirección General de Sanidad Vegetal. México, D.F. 196 p.

2. Deloya L., J. C. y Valenzuela G. J. E. 1999. Catálogo de Insectos y Ácaros Plaga de los Cultivos Agrícolas de México. Sociedad Mexicana de Entomología, A. C. México.

3. MacGregor R. y Gutiérrez O. 1983. Guía de Insectos nocivos para la Agricultura en México. Ed. Alhambra Mexicana, S. A. Instituto de Biología. UNAM. México.

4. Romero C., S. 1996. Plagas y enfermedades de ornamentales. Universidad Autónoma de Chapingo. Departamento de Parasitología Agrícola. Chapingo, Texcoco, Edo. Méx.

5. Villaseñor R., J. L. y Espinosa G., F. J. 1998. Catálogo de malezas de México. UNAM. CONACOFI. FCE. 449 pp.

6. Pacheco M., F. 1994. Plagas de los cultivos oleaginosos en México. SARH-INIFAP. Cd. Obregón, Sonora, México. 600 pp.

9

Info

rme

2009


7. Hernández P., D.1998. Enfermedades de Maíz (Zea mays L.), Trigo (Triticum aestivum L.) y Cebada (Hordeum vulgare L.) presentes en México. Tesis de Licenciatura. Parasitología Agrícola. Chapingo, Edo. Méx. México.

8. SARH. 1976. FITOFILO Núm. 71. Primer Catálogo de Enfermedades de Plantas Mexicanas. Secretaria de Agricultura y Recursos Hidráulicos. Dirección General de Sanidad Vegetal. México, D.F. 169 p.

9. Mendoza, Z.C. y Pinto, C.B. 1985. Principios de Fitopatología y Enfermedades causadas por Hongos. Universidad Autónoma Chapingo. Departamento de Parasitología Agrícola. 311 p.

10. Anaya, R. S.; Bautista, M. N. y Domínguez, R. B. 1992. Manejo Fitosanitario de las Hortalizas en México. Chapingo, México.

11. Ayvar S. S., Sosa M. C., Rosas R. M y Villareal G., L A. 1994. Compendio de enfermedades de algunos cultivos de México. Vol 1. SARH. México, D. F. 229 pp.

12. Téliz D. 2000. El Aguacate y su Manejo Integrado. Ed. Mundi-Prensa. México, D.F.

13. Montes B. R. 2000. Nematología vegetal en México. Sociedad Mexicana de Fitopatología. 98 pp.

14. Romero, C. S. 1993. Hongos Fitopatógenos. Universidad Autónoma Chapingo. 347 p.

15. Pérez R. C., García C. E., Sánchez H. G., Moreno L.J., Moreno M. E., y Quezada V., M. 2005. Actividad inhibitoria de diferentes aceites esenciales sobre el crecimiento de especies de Aspergillus aisladas de nuez pecanera (Carya illinoensis) (WANGENH) KOCH). In: memorias del XXXIII Congreso Nacional de Fitopatología, Manzanillo, Colima México.

16. SARH. 1992. Guía Fitosanitaria para el cultivo del trigo. SARH-DGSV.

17. Herbario del Instituto Nacional de Biodiversidad (INBIO). Consulta 2010. Disponible en: http://www.conabio.gob.mx/remib/doctos/checklist/55-16.html

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Norma Oficial Mexicana NOM-007-FITO-1995, Por la que se establecen los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de material vegetal propagativo.

Norma Oficial Mexicana NOM-008-FITO-1995, por la que se establecen los requisitos y especificaciones fitosanitarios para la importación de frutas y hortalizas frescas.

Norma Oficial Mexicana NOM-009-FITO-1995, Por la que se establecen los requisitos y especificaciones fitosanitarios para la importación de flor cortada y follaje fresco.

Norma Oficial Mexicana NOM-011-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas de los cítricos.

Norma Oficial Mexicana NOM-012-FITO-1996, por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas de la papa.

Norma Oficial Mexicana NOM-014-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del algodonero.

Norma Oficial Mexicana NOM-018-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del maíz.

Norma Oficial Mexicana NOM-019-FITO-1995, Por la que se establece la cuarentena exterior para prevenir la introducción de plagas del café.

Norma Oficial Mexicana NOM-029-FITO-1995, Por la que se establece los requisitos fitosanitarios y especificaciones para la importación de semillas para siembra.

Norma Oficial Mexicana NOM-043-FITO-1999, Especificaciones para prevenir la introducción de malezas cuarentenarias a México.

Cuadro 2. Listado de plagas asociadas al cultivo de Caña de Azucar proveniente de Costa Rica, ausentes y/o reguladas en México, así como su daño económico.

No. Plaga

Asociación con

VastagosSustento

Hospederos asociados presentes en el área de

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Económico

1 Acanthospermum hispidum No

Es una hierba anual erecta de hasta 90 cm. de altura. Las semillas de esta maleza pueden contaminar los granos al momento de la cosecha. Los aquenios miden 6 mm de largo y están cubiertos con numerosas y cortas espinas (CABI, 2007).

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No. Plaga

Asociación con

VastagosSustento


ARPDaño

Económico

2

Cercospora koepkei Pseudocercospora miscanthi

No

El hongo se observó sobre hojas de Saccharum sp, variedades Diversa Agripaca 2, CP5659, PR980, PR62258 y V64-10 donde ocasiona manchas anfígenas, irregulares, de 1 a 5 mm, dispersas o coalescentes hasta formar lesiones alargadas de 1-1,5 cm x 1-3 mm, amarillentas, algunas veces con tono rojizo (Pons y Ordosgoitti, 1983).

3 Cercospora longipes No

Se presentan como manchas alargadas de color pajizo a rojo pardo, aparecen principalmente desde el ápice hasta la mitad de la lámina foliar, donde se desarrollan los conidióforos de color marrón. En ocasiones pueden ocasionar la muerte prematura de la planta (Ramírez y Nass, 2005)

4 Erwinia chrysanthemi Si

E. chrysanthemi puede afectar a cualquier órgano de la planta como: raíces, vástagos, hojas y órganos almacenados, dependiendo de la especie de la planta y de las condiciones ambientales. La bacteria afecta el tejido parenquimatoso y paquetes vasculares, induciendo una putrefacción suave y el marchitamiento de toda la planta y partes afectadas. (CABI, 2007).

Tomate (Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.), tabaco (Nicotiana tabacum), arroz (Oryza sativa), petunia (Petunia hybrida), prímula (Primula spp.), hierba santa o manzanilla (Tanacetum parthenium). Otros hospedantes de forma secundaria o esporádica son: endivia o escarola (Cichorium endivia), achicoria (Cichorium intybus), papa

(Solanum tuberosum) (CABI, 2007).

E. chrysanthemi causa pérdidas en crisantemos cultivados en invernadero, todas las plantas jóvenes pueden ser destruidas en las camas de propagación bajo condiciones ambientales favorables. Sin embargo, los daños en los crisantemos al aire libre suele estar restringida a un número limitado de tallos (CABI, 2007).

5Erwinia chrysanthemi pv. zeae

SI

Los tallos caídos y torcidos son una buena señal de que está presente la enfermedad. Uno a varios entrenudos se torna de color marrón oscuro, con textura suave y húmeda. Estos síntomas se pueden presentar sobre vastagos, yemas, brotes, tallos, etc. Tanto de manera interna como externa, síntomas visibles a ojo (CABI, 2007).

Los principales hospedantes son el maíz (Zea mays), sorgo (Sorghum bicolor), piña (Ananas comosus), aráceas, ciclamen, zanahoria (Daucus carota), camote (Ipomoea batatas), tomate (Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.), arroz (Oryza sativa), orquídea alevilla (Phalaenopsis spp.),, caña de azúcar (Saccharum officinarum), ETC.

Es una de las cuatro principales enfermedades del tallo de maíz en la India y se ha observado en la naturaleza hasta con un 80 a 85% de incidencia (CABI, 2007).

6 Hemicriconemoides mangiferae No

Se mueve internamente por las raíces y se alimenta del contenido celular, afectando principalmente el cortex (CABI, 2007).

7 Hirschmanniella oryzae No

Es un nematodo endoparásito migratorio de la raíz (CABI, 2007).

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Económico

8 Dimeriella sacchari No

La enfermedad aparece en forma de pequeñas lesiones de color rojizo con un borde amarillento, las que coalecen cuando hay condiciones ambientales adecuadas, dañando bastante área foliar. Las lesiones son de .5 a 2 mm de largo, son de forma elíptica, redondeadas o irregulares, se presentan principalmente en el primero y segundo tercio foliar (Jorge et. al. S/F).

9

Ligniera vasculorum Plasmodiophora vasculorum

Si

Esta enfermedad es dispersada por dos vías principalmente, la primera es por movilización de vastagos de caña, como material propagativo para el establecimiento de nuevas plantaciones (CABI, 2007)

Saccharum , Saccharum officinarum (sugarcane)

Desde 1920 en Puerto Rico, no se reportan pérdidas ocasionadas por ste patógeno. A la fecha no hay registro de daños causados por esta enfermedad

10 Macrophoma sacchari

No se encontró reporte alguno sobre esta plaga o sus daños, por lo que no se considera de importancia económica, no cumpliendo con ello la definición de plaga cuarentenaria

11 Meloidogyne exigua No

Es un ecoparasito de las raíces. Sólo se reporta su dispersión a través de rizomas, tubérculos y Suelo. (CABI, 2007).

12

Metamasius hemipterus sericeus, Sphenophorus sericeus

Si

Estos cucurculionides se alimentan de frutos y tallos en descomposición principalmente, sin embargo también se les ha encontrado atacando tallos verdes, haciendo pequeñas galerías (Coto y Sauders, 2004)

Infesta principalmente plátano (Musa spp.), y los híbridos interespecíficos de caña de azúcar (Saccharum spp.). También varias palmas ornamentales (CABI, 2007)

En la Florida infesta del 8 al 32% de os tallos. Las pérdidas estimadas en caña de azúcar en la Florida han alcanzado los $ 402.40 dl/ha, o casi 6 millones de dólares en toda la industria (Weissling y Giblin, 1998).

13 Nigrospora sacchari No

ES conocido como un hongo del follaje, principalmente en banano, pero se le considera predominantemente como hongos saprofíticos y endofíticos. Las especies más comunes incluyen (en orden de predominancia) Nigrospora sacchari (Surridge, et. al. 2003).

14 Orthezia insignis No

Las colonias se establecen principalmente en las hojas donde se alimentas de la savia mediante la extracción de savia (Zurhilma, 2003). O. insignis secreta una mielecilla que en ocasiones atrae hormigas.(CABI, 2007). Esta plaga no es considerada como una plaga de importancia cuarentenaria por el CABI.

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15 Pratylenchus zea No

Causan lesiones en la raíz y son endoparásitos migratorios, que producen necrosis en las raíces, reduciendo como consecuencia la altura de las plantas y el número de hijos. http://www.infoagro.com/herbaceos/cereales/arroz.htm

16 Puccinia kuehnii No

La roya anaranjada es una enfermedad que históricamente ha causado pocos daños, rara vez causa pérdidas económicas. La diseminación de este patógeno es básicamente por esporas en el viento (hasta 2000 Km.) o bien por lluvia, únicos mecanismos de dispersión. O bien se reporta su dispersión por movilización de hojas con esporas (CABI, 2007).

17 Rottboellia cochinchinensis No

Se reporta que las semillas de esta maleza pueden contaminar principalmente grano pequeño, como es el arroz, donde se reportan pérdidas importantes por la competencia de esta maleza (CABI, 2007).

18 Scutellonema brachyurus No

Se desarrolla en la rizosfera de las plantas (CABI, 2007).

19 Tylenchorhynchus annulatus No

Es un ectoparásito de la raíz (CABI, 2007).

Literatura citada en el Cuadro 2

CPC= CABI. 2007. Crop Protection Compendium. CAB International (CABI). Wallingford, United Kingdom.Coto D. y Saunders J. 2004. Insectos Plagas de Cultivos Perenes con Énfasis en Frutales en América Central. Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE)

Ninoska Pons y Alfonso Ordosgoitti. 1983. Mycovellosiella koepkei (Krüger) Deighton SOBRE CAÑA DE AZUCAR (Saccharum sp) EN VENEZUELA. FONAIAP Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias

Ramírez P. E. Y Nass H. 2005. Presencia de Patógenos Fúngicos en el Cultivo de Caña de Azúcar de Venezuela (2002-2004). Estación Local Yaritagua. INIA Yaracuyi, Yaracuy, Venezuela. Vol 23. No 1-2. (2005).

Jorge I. Victoria., Maria L. Guzma´n y Juan C. Angel. S/F. Enfermedades de la Caña de Azúcar en Colombia. Centro de Investigación de la Caña de Azucar en Colombia CICAÑA

Surridge A.K.J., A. Viljoen and F.C.Wehner. 2003.Fungi associated with banana foliage in South Africa. Pretoria University. Sudáfrrica

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Ficha Técnica

Nombre científico: Erwinia chrysanthemi

(Burkholder et al. 1953) Dye 1969.

Sinónimos: Pectobacterium chrysanthemi

Erwinia carotovora subsp. chrysanthemi

Pectobacterium carotovorum var. chrysanthemi

Nombre común: Tizón Bacteriano del Crisantemo

Marchitamiento bacteriano del clavel,

Podredumbre blanda del clavel,

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A. Clasificación TaxonómicaA.1. Ubicación Taxonómica

Dominio: Bacteria

Phylum: Proteobacteria

Clase: Gammaproteobacteria

Orden: Enterobacteriales

Familia: Enterobacteriaceae

Género: Erwinia

Especie: E. chrysanthemi

(CABI, 2007).

A.2. Características Morfológicas

E. chrysanthemi pv. chrysanthemi es una

bacteria Gram-negativa, anaeróbica facultativa,

forma de varilla y tamaño de 1.05-3.85 x 0.46-

1.06 µ. Es móvil, con un número variable de

flagelos peritricosos (CABI, 2007).

B. Rango de hospedantesE. chrysanthemi pv. chrysanthemi es una de las

bacterias que más daño causan al follaje y flores

de plantas ornamentales, sus hospedantes son

de gran importancia económica; los principales

hospedantes son:

Crisantemo (Chrysanthemum coronarium, Ch.

frutescens, Ch. máximum, Ch. morifolium),

clavel (Dianthus caryophyllus), noche buena

(Euphorbia pulcherrima), begonia (Begonia

spp.), violeta africana (Saintpaulia ionantha),

dalia (Dahlia spp.) (Bautista et al, 2002); cebolla

(Allium cepa), Col (Brassica oleracea var.

capitata), chile (Capsicum annuum), taro o ñame

(Colocasia esculenta), Espuelas de caballero

(Consolida ambigua), cucurbitáceas, Lirio

leopardo (Dieffenbachia maculata), calankoe

(Kalanchoe blossfeldiana), lechuga (Lactuca

sativa), margarita (Leucanthemum vulgare),

tomate (Lycopersicon esculentum), plátano

(Musa spp.), tabaco (Nicotiana tabacum), arroz

(Oryza sativa), petunia (Petunia hybrida),

prímula (Primula spp.), hierba santa o

manzanilla (Tanacetum parthenium). Otros

hospedantes de forma secundaria o esporádica

son: endivia o escarola (Cichorium endivia),

achicoria (Cichorium intybus), papa (Solanum

tuberosum) (CABI, 2007).

C. Distribución GeográficaEste patógeno se encuentra distribuido en tres

continentes, donde su distribución es restringida

y vigilada. En Europa se reporta en: Austria,

Bélgica, Yugoslavia, Francia, Italia y Reino

Unido; en Asia: Bangladesh, China (Jilin) y

Japón (Honshu); en América se reporta en:

Canadá (Ontario), EUA (Connecticut, Florida,

Nueva York, Ohio y Pensilvania) y Brasil (CABI,

2007).

C.1. Distribución de hospederos en México

La distribución de hospederos en el territorio

nacional es amplia ya que se reportan muchos

de ellos en diversos estados a lo largo de todo el

territorio, dentro de los hospederos de mayor

importancia se reportan los siguientes en los

cuadros 1, 2 y 3.

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Cuadro 1. Crisantemo (Chrysanthemum spp.):

con una superficie sembrada a nivel nacional de

2, 581. 75 has. y un valor de la producción de $

1, 359, 703. 27 (SIAP, 2008).

EstadoSuperficie sembrada

(ha)

Valor de producción

($)

Participación en Sup. Sem.

(%)

México 2, 308. 5 11, 412, 700 1, 265, 631. 85

Morelos 270. 5 447, 260 93, 686. 48

Cuadro 2. Melón (Cucumis melo): con una

superficie sembrada a nivel nacional de 24, 911.

68 has. y un valor de la producción de $ 1, 704,

397. 55 (SIAP, 2008).


(ha)


($)


(%)

Coahuila 4, 652 104, 507. 45 306, 030. 92

Guerrero 3,867 77, 218 129,666.3

Sonora 3,114 84,004.37 312,002.96

Cuadro 3. Nochebuena (Euphorbia

pulcherryma): con una superficie sembrada a

nivel nacional de 218. 52 has. y un valor de la

producción de $ 291, 279. 10 (SIAP, 2008).

Estado Superficie sembrada



(ha) ($) (%)

Morelos 74. 6 4, 743, 500 83, 516. 40

Puebla 54. 7 1, 254, 700 52, 774. 50

Michoacán 48 2, 400, 000 43, 200

D. BiologíaDurante el desarrollo de la enfermedad son

esenciales las condiciones de alta temperatura y

humedad; generalmente se manifiesta debajo de

los 27 ºC y menos del 80% de humedad relativa.

Además, el patógeno es afectado por las

condiciones del hospedante, ya que el tejido

suculento es más fácilmente afectado; mientras

que las plantas menos suculentas son menos

susceptibles (Bautista et al, 2002).

Linares (2005) menciona que Erwinia

chrysanthemi es causante del tizón bacteriano y

que se presenta en condiciones de elevada

temperatura (de 27 a 32 ºC) y alta humedad

relativa. Se disemina de forma mecánica; por

medio de las manos y herramientas

principalmente.

E. SíntomasEl tizón bacteriano, causado por Erwinia

chrysanthemi, es una enfermedad relativamente

nueva (Romero, 1996). Los primeros síntomas

se caracterizan por la aparición de un color gris

en las hojas, al que le sigue el marchitamiento

durante los días de intensa iluminación. La

médula se vuelve gelatinosa y el tallo se aplasta

fácilmente o puede cuartearse. También

21

Info

rme

2009


aparecen lesiones por hidrólisis del tejido

(Linares, 2005).

Bajo condiciones favorables, la pudrición avanza

hasta la base del tallo. Los tejidos internos son

completamente podridos y convertidos en una

masa gelatinosa. En algunos casos el tallo se

agrieta y a través de las grietas salen gotas de

un líquido café rojizo y pegajoso. La pudrición de

las raíces no es severa, aunque en algunos

casos, es extensa. El grado de daño que causa

el tizón depende de la variedad cultivada y de

las condiciones del medio ambiente.

En ornamentales frecuentemente se encuentran

plantas con una sola rama enferma, mientras las

otras permanecen aparentemente sanas y dan

flores de calidad satisfactoria. En otros casos, la

pudrición queda confinada a la parte superior del

tallo y de la base salen brotes nuevos que llegan

a producir flor. Cuando los esquejes son

infectados en su base se desarrolla una

pudrición de color café a negro. La médula, con

frecuencia es totalmente disuelta, en cuyo caso,

la base del tallo queda vacía. Los esquejes

infectados ocasionalmente enraízan, lo más

común es que se marchitan y mueren (Romero,

1996). El síntoma predominante es ocasionado

por la producción de enzimas pectinoliticas que

afectan gran cantidad de tejido en las plantas

(hojas, tallo y raíces) (Bautista et al, 2002).

F. Importancia económicaE. chrysanthemi causa pérdidas en crisantemos

cultivados en invernadero, todas las plantas

jóvenes pueden ser destruidas en las camas de

propagación bajo condiciones ambientales

favorables. Sin embargo, los daños en los

crisantemos al aire libre suele estar restringida a

un número limitado de tallos.

Aunque E. chrysanthemi ataca una amplia de la

identificación del agente patógeno, que puede

confundirse con otros del mismo género (Erwinia

spp.) (CABI, 2007). gama de plantas, la

importancia económica de este agente patógeno

no está claro, esto es en parte, debido a la

incertidumbre

G. Control Deben destruirse las plantas tan pronto como

aparezcan los síntomas (Linares, 2005).

Puesto que algunas plantas pueden estar

enfermas y no mostrar síntomas, existe la

posibilidad de diseminar la bacteria por medio

de material vegetativo. Entonces, para el control

lo más importante es el uso de esquejes sanos,

la esterilización del suelo, y si se van a obtener

esquejes o cosechar flores, los tallos deben

romperse y no cortar con navaja o tijeras. Y, si

para el enraizamiento de los esquejes se usa

enraizador, la suspensión que de éste se

prepare debe ser completada con un bactericida

efectivo, como estreptomicina. Por otro lado,

como el tizón bacteriano es muy sensible al

medio ambiente, mucho puede hacerse

regulando temperatura y humedad (Romero,

1996).

H. Literatura ConsultadaCAB International, 2007. Crop Protection

Compendium. Wallingford, UK: CAB

International.

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SIAP. 2008. Anuarios Estadístico de la

Producción Agrícola en México.

Secretaria de Agricultura, Ganadera,

Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación.

Versión Electrónica.

Romero, S. C., 1996. Plagas y enfermedades de

ornamentales. UACH-SAGAR. pp. 244.

Ficha Técnica

Nombre científico: Erwinia chrysanthemi pv. zeae

(Sabet 1954) Victoria et al. 1975.

Sinónimos: Erwinia carotovora

Erwinia carotovora f.sp. zeae

Erwinia maydis

Pectobacterium chrysanthemi pv. zeae

Nombre común: Pudrición Bacteriana del Tallo,

Pudrición Acuosa del Tallo.

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Info

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A. Clasificación TaxonómicaA.1. Ubicación Taxonómica

Dominio: Bacteria

Phylum: Proteobacteria

Clase: Gammaproteobacteria

Orden: Enterobacteriales

Familia: Enterobacteriaceae

Género: Erwinia

Especie: E. chrysanthemi

pv. Zeae

Fuente:

(Sabet 1954) Victoria et al. 1975 (CABI, 2007).

A.2. Características Morfológicas

Erwinia chrysanthemi pv. zeae (Sabet) Victoria

et al. (Sin. E. carotovora f. sp. zeae Sabet)

causa podredumbre bacteriana del tallo. La

bacteria es en forma de un pequeño bastón de

entre 0.6 a 0.9 x 1.0 a 1.7 micras, de ancho y

largo, respectivamente. Es gram negativo,

anaerobio facultativo, oxidasa negativo, catalasa

positivo, arginina e hidrolasa negativo; es móvil

ya que presenta flagelos peritricos y una

capsula. En agar las colonias son de color

blanco grisáceo, saliente, brillante y liso, con

márgenes enteros. Después de entre 3 y 6 días

de crecimiento en agar papa-glucosa (pH 6.5),

las colonias tienen una forma característica

prominente, con márgenes ondulados a

coracoides (es decir, tienen una apariencia de

huevo frito). Se han notificado numerosos

serovares, lo cual revela la heterogeneidad del

organismo. El tipo de huéspedes es muy amplio

e incluye tanto monocotiledóneas como

dicotiledóneas (White, 2004).

B. Rango de hospedantes

Los hospedantes de este patógeno se

encuentran ampliamente distribuidos en todo el

país. Los principales hospedantes son el maíz

(Zea mays), sorgo (Sorghum bicolor), pasto de

Sudán (Sorghum sudanense); no obstante,

también puede afectar a la piñuela o lengua de

suegra (Aechmea fasciata), cebolleta (Allium

fistulosum), piña (Ananas comosus), aráceas,

ciclamen, zanahoria (Daucus carota), dracena

de hoja fina (Dracaena marginata), noche buena

(Euphorbia pulcherrima), sisca (Imperata

cylindrica), camote (Ipomoea batatas), tomate

(Lycopersicon esculentum), plátano (Musa spp.),

arroz (Oryza sativa), pasto de Guinea (Panicum

maximum), pasto bahía (Paspalum spp.), pasto

elefante (Pennisetum purpureum), petunia

(Petunia hybrida), orquídea alevilla

(Phalaenopsis spp.), árbol del amor o filodendro

(Philodendron spp.), caña de azúcar

(Saccharum officinarum), violeta africana

(Saintpaulia ionantha), papa (Solanum

tuberosum), pasto alto (Urochloa mutica) (CABI,

2007).

C. Distribución Geográfica

Su distribución es amplia, ya que se encuentra

en cinco continentes. En Europa: Francia,

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Producto 3

Alemania, Grecia, Italia, Países Bajos, Portugal,

Rusia, España, Suiza y Reino Unido; en Asia:

China (Jiangsu y Taiwán), India, Irán, Japón

(Hokkaido), Corea del Sur, Corea del Norte,

Malasia y Filipinas; en África: Comoras, Egipto,

Mauricio, Reunión, Sudáfrica, Sudán y

Zimbabwe; en América: Brasil, Colombia, Costa

Rica, Cuba, EUA (Arkansas, California, Florida,

Georgia, Illinois, Nueva York, Carolina del Norte,

Pennsylvania, Dakota del Sur y Wisconsin),

Guyana, Honduras, Jamaica, Panamá y Puerto

Rico; y en Oceanía: Australia (Nueva Gales del

Sur), Islas Cook y Nueva Zelanda (CABI, 2007).

C.1. Distribución de hospederos en México

La distribución de hospederos en el territorio

nacional es amplia ya que se reportan en

diversos estados a lo largo de todo el territorio,

dentro de los hospederos de mayor importancia

se reportan los siguientes en los cuadros 1, 2 y

3.

Cuadro 1. Crisantemo (Chrysanthemum spp.):

con una superficie sembrada a nivel nacional de

2, 581. 75 has. y un valor de la producción de $

1, 359, 703. 27 (SIAP, 2008).


(ha)


($)


(%)

México 2, 308. 5 11, 412, 700 1, 265, 631. 85

Morelos 270. 5 447, 260 93, 686. 48

Cuadro 2. Melón (Cucumis melo): con una

superficie sembrada a nivel nacional de 24, 911.

68 has. y un valor de la producción de $ 1, 704,

397. 55 (SIAP, 2008).


(ha)


($)


(%)

Coahuila 4, 652 104, 507. 45 306, 030. 92

Guerrero 3,867 77, 218 129,666.3

Sonora 3,114 84,004.37 312,002.96

Cuadro 3. Noche buena (Euphorbia

pulcherryma): con una superficie sembrada a

nivel nacional de 218. 52 has. y un valor de la

producción de $ 291, 279. 10 (SIAP, 2008).


(ha)


($)


(%)

Morelos 74. 6 4, 743, 500 83, 516. 40

Puebla 54. 7 1, 254, 700 52, 774. 50

Michoacán 48 2, 400, 000 43, 200

D. BiologíaEste patógeno se encuentra en climas cálidos y

húmedos (CIMMYT, 2004). Se presenta en

forma aislada en aéreas con alta cantidad de

lluvia y en terrenos sujetos a inundación, es

favorecida por altas temperaturas de entre los

30 y 35 ºC y pobre circulación del aire (SARH,

1992).

La bacteria pasa el invierno solo en el tejido del

tallo por encima de la superficie del suelo. Los

estomas, hidatodos o heridas en las hojas o

25

Info

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2009


tallos son los lugares lógicos de entrada. No se

ha informado que esta bacteria sea transportada

por las semillas. Las larvas del taladrador del

maíz (Chilo partellus (Fig. 1)) han sido

implicadas en la transmisión de la bacteria

(White, 2004).

Figura 1. Asociación de Ch. partellus conE. ch. pv. zeae en maíz.

La permanencia de plantas enfermas en el

campo contribuye a la diseminación rápida de la

enfermedad, por insectos y el salpique de agua

por lluvia o riego (EMM, 2010). Esta se propaga

rápidamente en la planta hospedante y la

destruye (CIMMYT, 2004). La infección es

favorecida por días muy calurosos,

generalmente después de una lluvia o un riego

(EMM, 2010).

E. Síntomas

Los síntomas primarios aparecen generalmente

a mediados de la estación, cuando las plantas

se encaman de repente (White, 2004). Los

síntomas se presentan en los nudos cercanos a

la línea del suelo y son caracterizados por una

pudrición blanda de dichos tejidos (Fig. 2), los

cuales adquieren una coloración café, las

plantas atacadas pueden mostrar marchitez y

debilitamiento (Fig. 3); los haces vasculares

permanecen intactos (SARH, 1992).

Figura 2. Pudrición en tallo.

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Producto 3

Figura 3. Plantas marchitas.

Las plantas infectadas son de color oscuro,

tienen un aspecto acuoso en la base del tallo, se

acaman y mueren poco después de la floración,

la descomposición bacteriana produce un olor

característico desagradable (CIMMYT, 2004).

Los cogollos se vuelven amarillos (Fig. 4), los

cuales pueden ser fácilmente desprendidos del

tallo; el tejido de la base del cogollo es blando,

de color crema (EMM, 2010).

Figura 4. Cogollo amarillento.

En plantas adultas de maíz, la hoja adyacente a

la mazorca se presenta seca y erecta, el tallo

muestra síntomas de pudrición suave. Las

mazorcas de plantas infectadas presentan

pudrición acuosa del olote y los granos toman

color blanco perla, son acuosos y con mal olor

(EMM, 2010).

Durante periodos de rápido crecimiento

vegetativo aparece una podredumbre de la parte

superior de las plantas de maíz que son regadas

por aspersión con agua de rio, lago o estancada.

Las puntas de las hojas más altas se marchitan,

y aparece una pudrición blanda viscosa en la

base del verticilo. La pudrición se extiende

rápidamente hacia abajo hasta que las plantas

colapsan.

Los síntomas pueden ser similares a los de la

podredumbre del tallo por Pythium (White,

2004).

F. Importancia económica

27

Info

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2009


La podredumbre bacteriana del tallo ha sido

notificada en todo el mundo (White, 2004), es

causada por Erwinia chrysanthemi pv. Zeae

(Sabet, 1954) Victoria 1975, es un problema

difícil y la enfermedad más destructiva del maíz

en el exterior de Shivaliks al noroeste de los

Himalayas; en el sur de muchos países de Asia

Oriental la enfermedad causa importantes

pérdidas de producción (Kalia, (consulta) 2010).

Es una de las cuatro principales enfermedades

del tallo de maíz en la India y se ha observado

en la naturaleza hasta con un 80 a 85% de

incidencia (thind y Payak, 1985; CABI, 2007).

En los países tropicales y subtropicales, es una

enfermedad grave de maíz, particularmente en

condiciones de alta temperatura y humedad

(Reifschneider y Lopes, 1982; Saxena y Lal,

1984; Sah, 1991; CABI, 2007). En las regiones

templadas, como los EUA, la enfermedad es

sólo problema cuando el riego es por aspersión

(Kelman et al., 1957; Hartman y Kelman, 1973;

Otta y Wood, 1977; Lopes et al., 1986; CABI,

2007).

Durante el verano de 1985, en Puerto Rico se

observó de la parte superior del tallo y hojas de

sorgo una pudrición blanda con mal olor; el

probable agente causal fue E. chrysanthemi pv.

zeae (Hepperly y Ramos-Dávila, 1987; CABI,

2007).

G. ControlG.1. Cultural

Se recomienda arar en otoño, para incorporar al

suelo los residuos (White, 2004).

Evitar la acumulación excesiva de agua en el

terreno (Almodóvar, 2008).

Prevención de las altas tasas de fertilizantes

nitrogenados e incrementar las dosis de fósforo

y potasio, ya que esto disminuyen la incidencia

(Saxena y Lal, 1981; CABI, 2007).

G.2. Genético

Las variedades resistentes son necesarias como

la solución más aceptable para evitar

importantes pérdidas en el rendimiento (Kalia,

(consulta) 2010).

Las diferencias en la susceptibilidad se han

detectado entre líneas de maíz en la India

después de la inoculación artificial. La

resistencia ha sido identificada en los híbridos

que tienen cantidades más altas de fenoles

totales presentes (Lal et al., 1970; thind y Payak,

1978; CABI, 2007).

G.3. Químico

La cloración del agua de riego reduce la

infección por E. chrysanthemi pv. zeae

(Thompson, 1965; Lal et al., 1970; CABI, 2007).

El hipoclorito de calcio es eficaz cuando se

aplica al suelo (thind y Soni, 1983; CABI, 2007).

El Hidróxido de calcio (Lal y Saxena, 1978;

CABI, 2007) y estreptomicina (thind et al., 1984;

CABI, 2007) son eficientes controladores de este

patógeno..

H. Literatura Consultada

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ca

Producto 3

Almodóvar, W., 2008. Enfermedades del maíz.

Clínica al día. Universidad de Puerto

Rico. Consulta marzo de 2010 en:

http://academic.uprm.edu/walmodovar/H

TMLobj-256/Enfermed_Maiz.pdf

CAB International, 2007. Crop Protection

Compendium. Wallingford, UK: CAB

International.

Enfermedades del Maíz y su Manejo (EMM),

(Consulta) 2010. Enfermedades

causadas por bacterias. Consulta marzo

de 2010 en:

http://www.encolombia.com/economia/E

nfermedadesdelmaiz/Enfermedadescaus

adasporbacterias.htm

INFONET, (consulta) 2010. Spotted stemborer.

Infonet-biovision/Plant. Consulta marzo

de 2010 en: http://www.infonet-

biovision.org/default/ct/92/pests

Kalia, V., et al., s/f. Identification of sources of

resistance against Erwinia stalk rot

(Erwinia chrysanthemi pv. Zeae) among

medium maturing inbred lines of maize.

Himachal Pradesh Agricultural

University. Dhaulakuan, Indian. Consulta

marzo de 2010 en:

http://www.agron.missouri.edu/mnl/80/pd

f80/04kalia.pdf

Programa de Maíz del CIMMYT. 2004.

Enfermedades del maíz: una guía para

su identificación en el campo. Cuarta

edición. México, D.F.: CIMMYT.

Secretaria de Agricultura y Recursos Hidráulicos

(SARH), 1992. Guía fitosanitaria para el

cultivo del maíz. Serie Sanidad Vegetal

– Sistema Producto Maíz. México. pp.

23-1.

SIAP. 2008. Anuarios Estadístico de la

Producción Agrícola en México.

Secretaria de Agricultura, Ganadera,

Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación.

Versión Electrónica.

White, D. G., 2004. Plagas y enfermedades del

maíz. The American Phytopathlogical

Society (MP)- Ediciones Mundi-Prensa.

Madrid, España. pp. 34. Consulta marzo

de 2010 en:

http://books.google.com.mx/books?

id=4jkucQ0OXp8C&pg=PA6&lpg=PA6&

dq=erwinia+chrysanthemi+pv.

+zeae&source=bl&ots=SXEmw-

QSQy&sig=Cgp02aoDhi0MiWnyUF9uV7

_fPGw&hl=es&ei=mReoS9rfE4mwsgP0z

OX5Dw&sa=X&oi=book_result&ct=result

&resnum=6&ved=0CCAQ6AEwBTgU#v

=onepage&q=erwinia%20chrysanthemi

%20pv.%20zeae&f=fa

Etapa lll.

29

Info

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2009


Manejo del Riesgo para la importación de material propagativo (Trozos y/o vástagos) de caña de azúcar (Saccharum officinarum) originarios y procedentes de la República de Costa Rica, para

evaluación en campo.

Como resultado del Análisis de los cuadros 1 y 2 fueron identificadas 4 plagas con potencial

cuarentenario, las cuales representan un riesgo fitosanitario para México. Por lo que se proponen las

siguientes medidas de manejo.

1 El Certificado Fitosanitario Internacional debe especificar que el material propagativo (Trozos y/o

Vastagos) son originarios y procedentes de la República de Costa Rica

2 El Certificado Fitosanitario Internacional debe señalar que el material propagativo (Trozos y/o

Vastagos) se encuentra libre del Hongo: Ligniera vascularum. De las Bacterias: Erwinia

chrysantemi, Erwinia chrysantemi pv. zeae, del Insecto: Metamasius hemipterus sericeus

3 Los empaques utilizados deberán ser nuevos y limpios

4 El cargamento deberá estar libre de partículas de suelo o cualquier residuo vegetal.

5 Los vástagos serán sometidos a un tratamiento con agua caliente por 20 minutos a 50 °C, con el

fin de eliminar las plagas que pudieran estar presentes (Flores, 1994).

6 Aplicar Carboxin (20 %) + Captan (20 %) 3 gr/L de agua y Clorpirifos a una dosis de 2 g de i.

a. /L. La aplicación de los tratamientos deberá ser anotada en el apartado correspondiente del

CFI.

7 La semilla vegetativa de caña de azúcar deberá estar empacada en envases nuevos que

garanticen la exclusión de insectos y ácaros.

8 En el punto de ingreso se verificará que se cumplió con los puntos anteriores, además se

realizara una toma de muestra para inspección visual y en caso de no detectar algún agente

extraño, síntoma o signo de alguna plaga, el embarque se liberara.

9 En caso de detectar algún síntoma o signo de una potencial plaga de importancia

cuarentenaria, se tomará una muestra y será enviada a un laboratorio aprobado por la

Dirección General de Sanidad Vegetal.

10 La semilla vegetativa de caña de azúcar será liberada con acta de guarda cuarentena

custodia y responsabilidad a fin de asegurar que todo el material experimental sea

transportado a las Estaciones de Investigación de la Cámara Nacional de las Industrias

30

Aná

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Producto 3

Azucarera y Alcoholera ubicadas en Tizimín, Yucatán y/o Tapachula. Chiapas, México en

espera del diagnóstico de la DGSV.

11 El jefe de Programa de Sanidad Vegetal de la entidad donde se siembre la semilla para

evaluación, verificará que el producto y volumen importado se encuentra en los campos y

laboratorios del importador

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