1
Ponencia
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Autores:Laura Pastor AlcañizJose Antonio Pascual Valero[ ]
VII JORNADAS TÉCNICAS DE SANEAMIENTO Y DEPURACIÓN
Producción y Aprovechamiento de Biogás en la Depuración de las Aguas Residuales Urbanas
2
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófilaDepuración de Aguas del Mediterráneo
1. Antecedentes
2. Objetivos
3. Descripción planta piloto
4. Sistema TAnD
5. Monitorización de patógenos
Índice
3
AntecedentesExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
• Evolución tecnología aprovechamiento energético de biogás
Optimización de la digestión anaerobia:
– Incremento producción de biogás y su calidad
– Obtener un lodo con valor agronómico• Legislación vigente:
– Directiva 86/278 (relativa a la protección del medio ambiente y en
particular, de los suelos en la utilización de lodos de depuradora en
agricultura)
CUARTO BORRADOR: que modifica la Directiva 86/278
– Real Decreto 1310/1990 (por el que se regula la utilización de los lodos
de depuración en el sector agrario)
4
Antecedentes
• Borrador Directiva de lodos de la Unión Europea
– Metales pesados (Cd, Hg, Pb, Cu, Cr, Ni y Zn)
– Compuestos orgánicos (PBC, dioxinas, furanos…)
– Microorganismos patógenos• Escherichia coli < 1x103 ufc/g (peso seco)• Clostridium perfringens: máximo 3x103 esporas/g (peso seco)• Ausencia de Salmonella sp. en 50 gramos (peso fresco)
• Proceso clasificado como tratamiento avanzado en el Anexo I del cuarto borrador:
“Estabilización aerobia o anaerobia a temperatura mínima de 55ºC durante un periodocontinuo de tiempo de al menos 4 horas. Las plantas deben de ser diseñadas para manteneruna temperatura de al menos 55ºC con un tiempo de retención medio suficiente como paraestabilizar el fango”
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
5
Antecedentes
• Digestión Anaerobia Termófila (TAnD):
• Digestión anaerobia termófila• Rango de temperatura 50 – 65 ºC
• Características Sistema TAnD:
• Elevadas velocidades de reacción• Menor tiempo retención • Elevada producción de biogás• Mayor resistencia a la formación de espumas• Mejor deshidratabilidad del fango obtenido• Eliminación de patógenos
• Proceso menos estable (controversia en la literatura)• Elevada concentración de AGV en estado estacionario• Arranque del proceso
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
6
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófilaDepuración de Aguas del Mediterráneo
1. Antecedentes
2. Objetivos
3. Descripción planta piloto
4. Sistema TAnD
5. Monitorización de patógenos
Índice
7
Objetivos
• Diseño y construcción de una planta piloto TAnD
• Resultados de la planta piloto TAnD instalada en la EDAR de Molina de Segura
– Rendimientos de eliminación de materia volátil y de patógenos – Producción de biogás– Viabilidad del fango como enmienda orgánica al suelo
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
8
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófilaDepuración de Aguas del Mediterráneo
1. Antecedentes
2. Objetivos
3. Descripción planta piloto
4. Sistema TAnD
5. Monitorización de patógenos
Índice
9
Descripción planta piloto
• Caudal de diseño: 25.000 m3/día• Población: 290.000 habitantes.
• Decantación• Fangos activos• Coagulación, floculación, filtración • Ultravioletas • Espesador de gravedad• Espesador mecánico • Estabilización anaerobia
TAnD
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
10
Descripción planta piloto
• Elementos planta piloto:
• Reactor-digestor (15 m3)
• Bomba de alimentación de fangos
• Electroválvula de descarga del
fango
• Sistema de agitación
• Sistema de calefacción
• Línea de gas: caudalímetro de gas
y válvula de sobrepresión
• Sondas de proceso
• SCADA de control
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
11
Descripción planta piloto
BOMBA DE ALIMENTACIÓN DE FANGO
VACIADO DE LA PLANTA
VÁLVULA AUTOMÁTICA DE VACIADO
SONDA Tª y CONDUCTIVIDAD RECIRCULACIÓN
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
12
Descripción planta piloto
CAUDALÍMETRO DE ENTRADA
ENTRADA FANGO SONDA Tª Y COND
INTERCAMBIADOR DE CALOR
CAUDALÍMETRO DE GAS
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
13
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófilaDepuración de Aguas del Mediterráneo
1. Antecedentes
2. Objetivos
3. Descripción planta piloto
4. Sistema TAnD
5. Monitorización de patógenos
Índice
14
Operación planta piloto
ESTRATEGIA DE ARRANQUE DEL DIGESTOR:
• Siembra con fango mesófilo de la EDAR Molina de Segura
• Subida de temperatura a 55ºC directamente
• Sin alimentar durante 20 días
• Velocidad de carga orgánica inicial = 0,7 kg SV/m3·d
• Incremento progresivo de la velocidad de carga orgánica hasta 1.0 - 1.6 kg SV/m3·d
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
15
Sistema TAnD
PERIODO A: Arranque digestor
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
16
Sistema TAnDExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Período A Período DPeríodo CPeríodo B
17
Sistema TAnDExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Período A Período DPeríodo CPeríodo B
Entrada mayor proporción fango primario
18
Sistema TAnD
Resultados concordantes con la bibliografía:
“El aumento de la concentración de ácidos grasos volátiles está relacionado con la
disminución en la producción de biogás”
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
19
Sistema TAnD
FECHA CH4 (%)
10/10/2011 52,4
20/10/2011 63,3
21/10/2011 61,6
22/10/2011 61,5
24/10/2011 62,4
% CH4:
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Parámetro DA Mesófila Período B Período C Período D
Qdiario (m3/d) 130,9 0,3 0,4 0,6
% MS 5,9 5,7 5,1 4,4
% MV 75,0 74,0 73,4 74,0
Carga (kg SV/m3/d) 0,8 1,0 1,1 1,6
% MS 3,3 3,0 2,8 2,8
% MV 61,8 63,6 63,1 62,3
Rendimiento EV (%) 45,9 38,6 38,1 42,0
Tiempo retención (d) 59,3 40,8 34,7 20,3
Tª (ºC) 38,1 54,6 52,5 53,9
pH 7,7 7,8 7,6 7,9
Conductividad (mS/cm) ---- 10,1 10,6 10,9
Redox ---- -18,7 -14,6 -38,7
AGV (mg/l) 226,0 2850,8 2627,0 2.031,9
ALC (mg CaCO3/l) 3.245,0 5.066,6 3.974,4 3.973,8
AGV/ALC 0,1 0,5 0,6 0,5
Nm3/kgMValim 0,48 0,38 0,47 0,53
Nm3/kgMVelim 1,09 1,05 1,40 1,30
ENTR
AD
A
SALI
DA
BIO
GÁ
S
20
Sistema TAnD
1. Test de jarreo: se determina tipo y dosis mínima de floculante
2. Test de drenaje: se valora la velocidad y cantidad de agua drenada
ESTUDIO COMPARATIVO DESHIDRATABILIDAD
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
21
Sistema TAnD
• Dosis óptima: 3 veces menor para fango mesófilo. A escala real esta diferencia no debe ser tan elevada.
• Mezclado de fango (TF) con el polímero es más costoso en el termófilo que mesófilo
• El flóculo con fango termófilo es más resistente que el mesófilo (TR)
• Proceso de refloculación: el mezclado de ambos fangos con el polímero es del mismo orden, mejorandotambién en este caso la resistencia a la rotura en el fango termófilo
Test de jarreo
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
22
Sistema TAnD
Test de drenaje:
Se observa que la velocidad de drenaje de agua, asícomo el volumen drenado, es mayor para el caso delfango termófilo
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
23
Sistema TAnD
Conclusiones deshidratabilidad:
• Demandad de floculante (dosis):
• La dosis a nivel de laboratorio para la correcta floculación del fango termófilo, es casi 3 veces superior ala dosis necesaria con fango mesófilo.
• No obstante se espera que esta diferencia no sea tan elevada a escala real.
• Resistencia de la rotura de los flóculos:
• Tanto en la resistencia a la rotura de la floculación, como en la resistencia a la rotura de la re floculación,los flóculos formados con el fango termófilo, son mucho más resistentes que los del fango mesófilo.
• Esto indica que se puede alcanzar una mayor sequedad a la salida.
• Agua drenada:
• El fango termófilo ofrece una mayor velocidad de drenaje de agua, así como un mayor volumen de aguaescurrida. Ventaja para la deshidratación ya que la cantidad de agua retenida por el fango termófilo esmenor, separándose de él más fácilmente.
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
24
Sistema TAnD
Tamaño de partícula
Fango termófilo: menor cantidad de partículas grandes
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
25
Sistema TAnDExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Considerando:
Poder calorífico biogás: 5000 Kcal/m3
Rend. Combustión en calderas: 80%
Pérdidas en intercambio: 5%
Producción EE en Motogeneración: 1,8 kwh/m3
Precio medio EE: 8,73 c€/kwh
Balance energético:
Unidades Mesófilo Termófilo
Incremento
generación€/año
BALANCE EE €/año
Producción
específicaNm3/kg Mva
20.992
-34.394
0,47 0,53
Capacidad
Generaciónkwh/día 5.149 5.806
Coste
calentamiento€/año 76.621 132.007
Sobrecoste
calentamiento€/año 55.386
Caudal de gas en
calderasNm3/h 56 96
EE eq. kwh/h 100 173
Necesidad calor
en calderasKcal/h 208.732 359.616
BALANCE NETO: Considerando <TRH
TAnD: Permite trabajar a menor TRHReducción Volumen Digestor: 33 %
Sobrecoste
calentamiento€/año 18.823
Incremento
generación€/año 20.992
BALANCE EE €/año 2.170
26
Conclusiones Sistema TAnDExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Del estudio realizado se deprenden las siguientes conclusiones:
Las diferencias de un digestor termófilo con respecto a un mesófilo son:
- Se puede trabajar a menores tiempo de retención y mayores velocidades de carga orgánica sin que suponga una desestabilización del sistema
- Se obtienen elevadas producciones de biogás e incluso superiores
- La concentración de ácidos grasos volátiles en el digestor es superior
- Se necesita una mayor dosis de polielectrolito para deshidratar el fango
- Se obtiene un fango más resistente y además es posible alcanzar mayores sequedades tras la deshidratación del fango
- Las necesidades energéticas para calentar el fango son superiores aunque se podría compensar por la mayor calidad del fango obtenido y la disminución en el volumen necesario de digestor
27
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófilaDepuración de Aguas del Mediterráneo
1. Antecedentes
2. Objetivos
3. Descripción planta piloto
4. Sistema TAnD
5. Monitorización de patógenos
Índice
28
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
ENSAYO COMPARATIVO DE MONITORIZACION DEMICROORGANISMOS PATÓGENOS EN EL SISTEMATanD implantado en comparación con un sistemaanaerobio mesófilo
29
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
ENTRADA TAnD MESÓFILO
Tiempo(días)
ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.
1 1,3.106 1,9.10 5 5,7.10 6 Presencia < 1 < 1 3,0.10 5 Ausencia 1,5.10 2 8,3.10 1 3,1.10 5 Presencia
6 2,2.10 2 1,8.10 3 3,9.10 6 Presencia < 1 < 1 1,0.10 5 Ausencia 1,3.10 3 4,7.10 2 3,8.10 5 Presencia
13 1,1.107 2,3.10 6 7,5.10 5 Presencia < 1 < 1 1,1.10 5 Ausencia 8,0.10 5 7,3.10 4 6,3.10 5 Ausencia
20 6,8.10 4 5,7.10 3 1,7.10 5 Presencia < 1 < 1 5,3.10 4 Ausencia 1,5.10 1 1 6,6.10 5 Presencia
28 5,0.10 5 1,7.10 5 5,4.10 5 Presencia < 1 < 1 6,8.10 4 Ausencia 2,3.10 2 1,1.10 2 3,6.10 6 Presencia
34 6,6.10 5 3,6.10 4 1,0.10 5 Presencia < 1 < 1 2,7.10 4 Ausencia 6,5.10 2 4,9.10 2 1,1.10 5 Ausencia
41 2,3.10 5 3,5.10 4 5,6.10 5 Presencia < 1 < 1 5,1.10 4 Ausencia 2,1.10 1 2,1.10 1 5,0.10 5 Presencia
49 1,4.10 6 1,7.10 5 1,3.10 5 Presencia < 1 < 1 1,0.10 5 Ausencia 7,0.10 1 6,0.10 1 1,5.10 5 Presencia
55 1,8.10 6 1,4.10 5 1,5.10 5 Presencia < 1 < 1 5,5.10 4 Ausencia 3,1.10 7 5,3.10 6 2,3.10 5 Presencia
61 2,9.10 6 1,4.10 5 1,5.10 5 Presencia < 1 < 1 5,4.10 4 Ausencia 1,0.10 1 < 1 1,4.10 5 Ausencia
69 6,4.10 2 4,9.10 2 6,1.10 4 Presencia < 1 < 1 9,1.10 4 Ausencia * * * *
74 8,1.10 5 9,0.10 4 1,8.10 5 Presencia 9,0 < 1 3,6.10 4 Ausencia * * * *
81 1,8.10 6 1,9.10 5 2,7.10 6 Presencia < 1 < 1 4,6.10 4 Ausencia * * * *
88 4,0.10 6 5,5.10 5 3,7.10 5 Presencia < 1 < 1 1,6.10 4 Ausencia * * * *
95 3,3.10 6 2,8.10 5 1,9.10 5 Presencia < 1 < 1 1,3.10 4 Ausencia * * * *
112 2,2.10 7 1,3.10 5 6,1.10 5 Presencia < 1 < 1 1,1.10 4 Ausencia 2,0.10 5 1,5.10 4 4,3.10 5 Ausencia
116 2,1.10 7 2,1.10 6 1,2.10 5 Presencia < 1 < 1 4,3.10 4 Ausencia 3,3.10 6 2,0.10 3 1,1.10 5 Presencia
126 1,5.10 7 1,6.10 6 6,9.10 5 Presencia < 1 < 1 5,8.10 4 Ausencia 8,8.10 4 8,5.10 3 8,6.10 4 Presencia
131 3,2.10 6 1,7.10 5 9,2.10 4 Presencia < 1 < 1 2,8.10 4 Ausencia 1,7.10 5 1,1.10 4 6,0.10 5 Presencia
138 1,7.10 8 6,0.10 6 1,1.10 5 Ausencia < 1 < 1 7,4.10 4 Ausencia 2 ,0.10 5 1,9.10 4 9,3.10 4 Ausencia
30
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Tiempo(días)
ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.ColiformesTotales
E. coli C. perfringens Salmonella spp.
145 4,2.10 7 8,0.10 5 1,7.10 5 Presencia < 1 < 1 3,9.10 4 Ausencia 8,6.10 3 4,0.10 2 3,7.10 5 Ausencia
157 1,7.10 6 1,6.10 5 6,0.10 5 Presencia < 1 < 1 4,6.10 4 Ausencia 8,0.10 2 3,0.10 2 2,8.10 5 Ausencia
164 1,9.10 7 2,7.10 5 5,3.10 5 Presencia < 1 < 1 8,1.10 4 Ausencia 3,7.10 3 3,5.10 2 1,6.10 5 Presencia
186 5,3.10 7 7,0.10 5 2,9.10 5 Presencia 4,3.10 1 4,0.10 1 8,1.10 3 Ausencia 1,5.10 5 1,9.10 4 3,4.10 5 Presencia
193 1,2.10 8 3,3.10 6 7,1.10 5 Presencia < 1 < 1 4,3.10 3 Ausencia 1,3.10 6 3,4.10 5 6,6.10 5 Presencia
199 1,4.10 7 1,7.10 6 4,9.10 5 Presencia < 1 < 1 2,6.10 4 Ausencia 8,2.10 4 4,6.10 4 2,7.10 5 Ausencia
206 2,0.10 8 2,0.10 6 4,5.10 5 Presencia < 1 < 1 3,7.10 4 Ausencia 1,3.10 4 1,4.10 3 8,5.10 4 Ausencia
213 2,1.10 7 3,6.10 6 1,7.10 5 Presencia < 1 < 1 1,6.10 4 Ausencia 2,4.10 5 2,3.10 4 2,0.10 5 Presencia
222 3,0.10 7 1,8.10 6 1,5.10 5 Presencia < 1 < 1 3,3.10 4 Ausencia 7,2.10 3 5,1.10 2 3,4.10 5 Ausencia
228 7,4.10 5 2,4.10 5 1,3.10 5 Presencia < 1 < 1 1,3.10 4 Ausencia 1,0.10 1 1,0.10 1 3,8.10 3 Ausencia
235 1,4.10 5 5,0.10 4 8,2.10 4 Presencia < 1 < 1 1,0.10 4 Ausencia 1,3.10 3 4,8.10 2 1,2.10 5 Ausencia
241 1,2.10 7 5,2.10 5 2,0.10 5 Presencia < 1 < 1 2,6.10 4 Ausencia 2,8.10 4 9,7.10 2 5,9.10 4 Presencia
250 1,5.10 7 1,0.10 6 1,4.10 5 Presencia < 1 < 1 1,2.10 4 Ausencia 9,1.10 3 4,4.10 3 1,5.10 5 Ausencia
262 5,7.10 7 6,5.10 5 3,4.10 5 Presencia < 1 < 1 4,0.10 4 Ausencia 1,5.10 4 4,1.10 3 2,8.10 5 Presencia
279 * * * * < 1 < 1 6,8.10 3 Ausencia * * * *
294 8,6.10 5 2,0.10 5 1,7.10 5 Presencia < 1 < 1 6,3.10 4 Ausencia 1,4.10 2 2,5.10 1 1,6 .10 5 Ausencia
31
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
La velocidad de las reacciones enzimáticas aumenta rápidamente
ÓPTIMOLa velocidad de las reacciones enzimáticas es
máxima
MÁXIMODesnaturalización de las proteínas
Temperatura
MÍNIMOLos procesos de transporte
son muy lentos
Rango de crecimiento
Curva de crecimiento de microorganismos en función de la temperatura
32
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Contenido medio en microorganismos patógenos
La digestión anaerobia termófila permite una higienización de los lodos en cuanto a Salmonella spp y E. coli,reduciendo también los niveles de Clostridium perfringens, aunque en este último caso estos sobrepasan los exigidospor el borrador de la Directiva Europea, por lo que es necesario el incrementar de algún modo su reducción. El estudiocomparativo con la digestión mesófila, muestra cómo la digestión anaerobia termófila es más efectiva que la primeraen cuanto a la eliminación de patógenos, por lo que parece plausible el empleo de este tratamiento en detrimento de la
digestión mesófila.
33
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Parámetro TAnD Mesófilo EntradaValores límite
pH 7,3 7,7 6,2 -
C. E. (µS/cm) 13.530 13.683 7.150 -
Mat. org. total % 67,1 60,3 88,3 -
Nitrógeno total % 8,11 8,77 10,99 -
Fósforo %P2O5 3,12 2,91 2,36 -
Potasio %K2O 0,59 0,63 0,52 -
Cobre (mg /kg) 163 293 117 1000
Hierro (mg /kg) 30.101 42.887 19.023 -
Zinc (mg /kg) 449 649 343 2500
Níquel (mg /kg) 18 45 16 300
Plomo (mg /kg) 24 43 23 750
Cadmio (mg /kg) < 0,5 < 0,5 < 0,5 10
Cromo (mg /kg) 27 35 22 1000
CromoVI (mg /kg) < 1,0 < 1,0 < 1,0 400
Mercurio (mg /kg) < 0,01 < 0,01 < 0,01 10
Nutrientes y Metales Pesados (sobre materia seca)
34
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
ELIMINACIÓN DE Clostridium perfringens MEDIANTE CAMBIOS DE TEMPERATURA
-0,5
0,5
1,5
2,5
3,5
4,5
5,5
0 1 2 3 5
tiempo (días)
log (ufc
/mL)
Incubación 65-40-65ºC Aerobia Incubación 40-55ºC Aerobia
Incubación 40-65ºC Aerobia Incubación 40-65ºC Anaerobia
Incubación 40-55ºC Anaerobia
35
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
ELIMINACIÓN DE Clostridium perfringens MEDIANTE CAMBIOS DE TEMPERATURA
El caso de mayor reducción es la incubación de 40 ºC-65 ºC aerobia y podría adaptarse a una EDAR mediante lainstalación de dos reactores continuos y agitados (CSTR) en serie, a continuación del digestor anaerobio termófilo. Enel primer reactor se bajaría la temperatura del lodo (procedente de la TAnD) desde 55 ºC a 40 ºC mediante unintercambiador de calor colocado en su interior, por el circularía agua fría o cualquier otro fluido refrigerante. Para untiempo de retención fijo de 24 h y un caudal de lodo dado, se determinará el volumen que debe tener el reactor encuestión.
En serie con el mismo, se colocaría el segundo reactor, dónde la temperatura será elevada hasta 65 ºC, con un tiempode retención de 5 días. En este caso, el sistema de calefacción podría ser semejante al anterior, mediante unintercambiador de calor colocado en su interior pero por el que, en este caso, circulará un fluido calefactor, o medianteun serpentín. Por último, y con el objetivo de obtener aire y pasar de condiciones anaerobias a aerobias, únicamentesería necesaria la colocación de un Venturi, de modo que la presión que contiene el lodo permita tomar el airenecesario. Este proceso ha sido previamente ensayado para el mantenimiento de un sistema ATAD en la misma plantahabiéndose obtenido resultados positivos (datos no mostrados).
Otra posible forma de llevar a cabo esta incubación, para el lodo procedente de la TAnD, consistiría en colocar en seriecon el anterior un sistema ATAD (Autoheated Thermophilic Aerobic Digestion) unidos por un intercambiador de calor,que baje la temperatura de 55 ºC a 40 ºC y lo mantenga así durante 24 h.
36
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
ENSAYO DE APLICACIÓN DE LOS LODOS AL SUELO PARA ELCULTIVO DE PLANTAS DE MELÓN
Imagen de cada uno de los tratamientos a mitad del tiempo de cultivo. De izquierda a derecha: Control,
Control Fertilizado, TAnD, TAnD higienizado y Mesófilo.
15 30 45 60
ControlControl Fer
TAnD higTAnD
Mesófi lo
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
Lo
g (
ufc
/m
l)
tiempo (días)
Control Control Fer TAnD hig TAnD Mesófi lo
37
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
15 30 4560
ControlControl Fer
TAnD higTAnD
Mesófilo
0,00
1,00
2,00
3,00
4,00
5,00
Lo
g (
ufc
/m
l)
tiempo (días)
Control Control Fer TAnD hig TAnD Mesófi lo
0,00
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
4,00
4,50
5,00
0 15 30 45 60 75tiempo (días)
Lo
g (
ufc
/m
l)
Control Control Fer TAnD hig TAnD Mesófilo
Evolución de microorganismospatógenos en el suelo enmendadocon diferentes tipos de lodo:
Coliformes totales
E coli
Clostridium perfringens
0
50
100
150
200
250
300
peso
(g)
Control Control
Fer.
TAnD hig. TAnD Mesófilo
Tratamientos
aa
a
b b
38
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
(a) Control (b) Control (c) TAnD higienizado (d) TAnD higienizado
ENSAYO DE APLICACIÓN DE LOSLODOS AL SUELO PARA EL CULTIVODE PLANTAS DE MELÓN
39
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
0,000
0,020
0,040
0,060
0,080
0,100
0,120
0,140
% N
Control Control
Fer.
TAnD hig. TAnD Mesófilo
Tratamiento
a
bb
bb
0
50
100
150
200
250
300
peso
(g)
Control Control
Fer.
TAnD hig. TAnD Mesófilo
Tratamientos
aa
a
b b
0,000
0,020
0,040
0,060
0,080
0,100
0,120
% P
Control Control
Fer.
TAnD hig. TAnD Mesófilo
Tratamiento
b
a
b b
b
ENSAYO DE APLICACIÓN DE LOSLODOS AL SUELO PARA EL CULTIVODE PLANTAS DE MELÓN
40
Monitorización patógenosExperiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Los distintos tratamientos orgánicos muestran un efecto positivo en cuanto a
su respuesta en planta, siendo este significativamente superior en el caso del
suelo enmendado con lodo TAnD tanto higienizado como no.
En cuanto a la evolución o potencial reinfección por parte de microorganismos
patógenos humanos debido a los aportes que los tratamientos orgánicos
puedan proporcionar, el tratamiento TAnD higienizado es el que muestra
valores similares a los tratamientos químicos, y por tanto exentos de riesgos
sanitarios, seguido del lodo TAnD, siendo el tratamiento con lodo mesófilo el
que muestra los mayores valores durante el crecimiento de plantas de melón
en el suelo.
ENSAYO DE APLICACIÓN DE LOS LODOS AL SUELO PARA ELCULTIVO DE PLANTAS DE MELÓN
41
Ponencia
Experiencia piloto: digestión anaerobia termófila
Autores:Laura Pastor AlcañizJose Antonio Pascual Valero[ ]
VII JORNADAS TÉCNICAS DE SANEAMIENTO Y DEPURACIÓN
Producción y Aprovechamiento de Biogás en la Depuración de las Aguas Residuales Urbanas
Top Related