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Micología médica

Capítulo 45

MICOLOGÍA

SECCIÓN V

SECCIÓN V. MICOLOGÍA Capítulo 45. Micología médica

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Figura 45-1 Artroconidios formados

por la fragmentación de hifas, que se transforman en

conidios compactos. 400×.

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Figura 45-2 Rhizopus. El esporangio de dicho

moho ha liberado sus esporangiosporas, pero

permanece unido a éste que forma un apoyo, y se

advierten rizoides en la base del esporangióforo.

200×.

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Figura 45-3 Cunninghamella bertholletiae. Sus esporangiosporas son producidas en el

interior de los esporangios que están unidos a una vesícula y sostenidos por un

esporangióforo. 400×.

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Figura 45-4 Penicillium. Las cadenas de conidios

son generadas por fiálides, sostenidas por

un conidióforo ramificado. El conidio basal es nuevo. 400×.

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Figura 45-5 Scopulariopsis. Esta cadena de conidios fue

producida por un anélide, otro tipo de célula conidiógena.

400×.

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Figura 45-6 Aspergillus fumigatus. Las fiálides se forman por encima

de la vesícula compacta en el extremo de un conidióforo largo. Los conidios basales son los más

nuevos. Los conidios maduros tienen paredes rugosas. 400×.

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Figura 45-7 Bipolaris. Hongo dematiáceo que produce macroconidios de pared

gruesa, característicos. 400×.

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Figura 45-8 Curvularia. Es un hongo dematiáceo que

produce los característicos macroconidios curvos que

tienen grandes células centrales peculiares. 400×.

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Figura 45-9 Piedra. A: Cabello con piedra blanca y un nódulo

causado por la proliferación de Trichosporon. 200×.

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Figura 45-9 Piedra. B: Cabello con piedra negra y

un nódulo duro y negro causado por proliferación

del moho dematiáceo Piedraia hortae. 200×.

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Figura 45-10 Ejemplos de tres géneros de dermatofitos. A: Trichophyton tonsurans se

caracteriza por la generación de microconidios alargados, unidos a una hifa

de sostén. B: Microsporum gypseum produce macroconidios individuales de

paredes finas y también ásperas.

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Figura 45-10 Ejemplos de tres géneros de dermatofitos. C: Epidermophyton

floccosum tiene macroconidios en forma de clava y paredes finas y lisas

que se disponen típicamente en pequeños cúmulos.

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Figura 45-11 Dermatofitosis. Preparación de raspaduras de una lesión tiñosa sin teñir, a la que se ha agregado hidróxido de potasio para estudio microscópico. EL hidróxido ocasiona lisis de las células epidérmicas y quedan al descubierto las hifas hialinas ramificadas y tabicadas. 100×.

(Reproducida con autorización de Ryan KJ, Ray CG [editors]: Sherris Medical Microbiology, 5th ed. McGraw-Hill, 2010, Figura 41-6, p 700. © The McGraw-Hill Companies, Inc.)

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Figura 45-12 Esporotricosis. En el

tejido cutáneo se observan levaduras

esféricas pequeñas y alargadas gemantes (3 a

5 µm) de Sporothrix schenckii que captaron

el color negro mediante el colorante de

metenamina argéntica de Gomori (GMS). 400×.

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Figura 45-13 Cromomicosis. Se advierten en la biopsia de piel, con tinción de hematoxilina y eosina, las células escleróticas diagnósticas y

melanizadas (4 a 12 µm de diámetro). 400×.

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Figura 45-14 Conidios característicos

producidos en cultivo, de los dos agentes más

comunes de la cromomicosis. A: Phialophora

verrucosa produce conidios de estas fiálides

en forma de vasija con collaretes. 1 000×.

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Figura 45-14 Conidios característicos producidos en

cultivo, de los dos agentes más comunes de la

cromomicosis. B: Fonsecaea pedrosoi por lo común

presenta cadenas de blastoconidios de ramas

cortas y otros tipos de conidiogénesis. 1 000×.

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Figura 45-15 Feohifomicosis. En el tejido se observan hifas

melanizadas. 400×.

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Figura 45-16 Radiografía de tórax de un enfermo

de coccidioidomicosis, en que se observan linfadenomegalia

hiliar y una cavidad en el pulmón izquierdo.

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Figura 45-17 Especies de Coccidioides e imagen de la coccidioidomicosis. A: En el cultivo a temperatura ambiental, Coccidioides posadasii produce

hifas tabicadas hialinas y artroconidios. 400×.

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Figura 45-17 Especies de Coccidioides e imagen de la coccidioidomicosis. B: En este corte del pulmón se advierten grandes

esférulas que contienen endosporas. Hematoxilina y eosina. 200×.

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Figura 45-18 En personas que no tienen SIDA los títulos de anticuerpos de inmunoglobulina G (IgG) contra coccidioidina guardan relación inversa con la intensidad de la coccidioidomicosis.

Abreviaturas: IgM, inmunoglobulina M. Reproducida con autorización de Ryan KJ, Ray CG [editors]: Sherris Medical Microbiology, 5th ed. McGraw-Hill, 2010, Figura 46-10 p 753. © The

McGraw-Hill Companies, Inc.)

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Figura 45-19 Histoplasmosis e Histoplasma capsulatum.

A: Levaduras pequeñas ovales (2 a 4 µm), en forma

compacta dentro de macrófagos. Tinción de Giemsa. 1 000×.

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Figura 45-19 Histoplasmosis e

Histoplasma capsulatum. B: En el

cultivo a temperatura ambiental Histoplasma

capsulatum produce hifas tabicadas hialinas

que llevan microconidios y grandes macroconidios esféricos.

400×.

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Figura 45-20 Blastomicosis y Blastomyces dermatitidis. A: Son

notables las levaduras grandes, esféricas y de pared gruesa (8 a 15

µm de diámetro) en este corte de un absceso cutáneo. Hematoxilina y

eosina. 400×. B: En cultivo a temperatura ambiental Blastomyces dermatitidis produce hifas tabicadas

hialinas y conidios únicos. 400×.

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Figura 45-21 Paracoccidioidomicosis.

Grandes levaduras multigemantes

(15-30 µm) se observan en una lesión cutánea.

Preparación con hidróxido de potasio.

400×.

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Figura 45-22 Candida albicans. Se observan levaduras gemantes

(blastoconidios), hifas y seudohifas. 400×.

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Figura 45-23 Tubo germinativo. A diferencia de otras especies de

Candida, Candida albicans produce hifas verdaderas, levaduras gemantes y seudohifas. Después de incubación en

suero a 37°C durante 60 a 90 min en el laboratorio, Candida albicans obtenidas

de personas, son estimuladas para formar hifas, proceso iniciado con la

generación de tubos germinativos con estructuras más finas y más uniformes

que las seudohifas. (Consúltese la figura 45-20.) 1 000×.

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Figura 45-24 Candidosis. Levaduras y seudohifas en tejidos, teñidas con ácido

peryódico de Schiff. 1 000×.

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Figura 45-25 Criptococosis. En esta muestra obtenida por lavado pulmonar se advierte netamente la cápsula de Cryptococus

neoformans. Tinción de Giemsa. 1 000×.

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Figura 45-26 Evolución natural de la criptococosis.

(Reproducida con autorización de Heitman J. Kozel TR; Kwon-

Chung KJ, Perfect JR, Casadevall A [editors]:

Cyptococcus. From Human Pathogen to Model Yeast.

Washington, DC, ASM Press, 2011, Figura 1, p. 238.)

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Figura 45-27 Aspergilosis invasora. A: Hifas uniformes,

tabicadas y ramificadas (anchura cercana a 4 µm) de

Aspergillus fumigatus en tejido pulmonar teñido con

metenamina argéntica de Gomori. 400×.

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Figura 45-27 Aspergilosis invasora. B: Preparación similar con colorante de

Grocott. 1 000×.

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Figura 45-28 Mucormicosis. A: Hifas poco tabicadas, anchas,

similares a cintas (10 a 15 µm de ancho) de Rhizopus orizae en

tejido pulmonar. Hematoxilina y eosina, 400×. B: Muestra

histopatológica similar tomada con metenamina argéntica de

Gomori. 1 000×.

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Figura 45-29 Estructuras de azólicos antimicóticos. (Con autorización de Katzung BG [ed.]: Basic and Clinical Pharmacology, 11th ed. McGraw Hill, 2009. © The McGraw-Hill Companies, Inc.)

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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. A: Posaconazol.

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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. B: Caspofungina.

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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. C: Micafungina.

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Figura 45-30 Nuevos antimicóticos. D: Terbinafina.

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Diagnóstico serológico de la esporotricosis

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