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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
BIOLOGÍA DE SÍRFIDOS (Díptera – Syrphidae) Y SU
CAPACIDAD DE DEPREDACIÓN SOBRE POBLACIONES DE
ÁFIDOS (Hemíptero - Aphididae) EN CAÑA DE AZÚCAR.
AUTOR: NELSON GABRIEL MARTINEZ MONSERRATE
TUTOR: ING. AGR. ÁNGEL JÍNES CARRASCO, MSc.
GUAYAQUIL – MARZO 2019
ii
DEDICATORIA
Esta Tesis quiero dedicarla A Dios, por iluminarme y guiarme todos los días de
mi vida y darme sabiduría para efectuar esta investigación con certeza y
optimismo en cada uno de los pasos realizados.
A las personas más importantes de mi vida, por sus palabras de apoyo,
esfuerzos realizados y consejos brindados día a día para impulsarme a seguir
adelante y alcanzar hoy lo que un día me propuse.
Por ello este logro va dedicado principalmente a:
Mis padres
Sr. Roberto Martínez
Sra. Dora Monserrate
Mi esposa e Hijo
Jenny Morante
Gael Martínez
Mis hermanos
Noé, Ángel, Carlos, Carmen, Noemí, Celia
Sus nombres quedan plasmados en esta memoria como muestra de gratitud.
iii
AGRADECIMIENTO
• El autor de este trabajo investigativo extiende un agradecimiento infinito a la
Facultad de Ciencias Agrarias de la Universidad de Guayaquil, principalmente
a la Dra. Q.F Martha Mora - Decana de esta noble Facultad, quien siempre
desde mis inicios universitarios me brindo su amistad y sus conocimientos
profesionales para forjar mis estudios con excelencia, calidad y competividad
en el amplio campo de esta carrera.
• Al Ing. Agr. Carlos Becilla Justillo. Mg. Ed. Ex. Decano de esta Facultad, por
brindarme siempre su apoyo incondicional, gracias al cual pude culminar mis
estudios superiores a pesar del tiempo transcurrido.
• Al Ing. Agr. Carlos Ramírez Aguirre – Docente de la facultad, quien desde los
primeros días de asistencia a clases me brindo su amistad y conocimientos
profesionales de una forma gratificante que jamás olvidare. Como no
mencionar también que tuve el grato honor de poder trabajar junto a él en las
instalaciones del laboratorio de Entomología de la Unión Nacional de
Cañicultores del Ecuador (UNCE) en donde compartimos conocimientos del
campo investigativo que fueron útiles para el mantenimiento y desarrollo de
esta querida institución.
• Al Dr. Ing. Agr. Fulton López Bermúdez MSc. Por invitarme en reiteradas
ocasiones a compartir con la comunidad y compañeros universitarios los
conocimientos que adquirí en el centro investigativo, los cuales sin duda
alguna sirvieron para motivar a muchos a interesarse en la investigación
entomológica.
• A los docentes, personal administrativo y compañeros que me brindaron su
confianza en el transcurso de mi carrera universitaria, que aún continúan con
el reto de mantener en alto el nombre de la universidad y facultad a nivel
nacional.
• A mi tutor de Tesis el Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc. Que con su
amplia trayectoria en la investigación entomológica supo guiarme para sacar
adelante este trabajo investigativo, el cual no es del todo completo, pero sin
iv
duda alguna servirá como referencia para próximos trabajos que se realicen
sobre este OCB.
• En particular quiero extender un profundo agradecimiento al ING. JORGE
MENDOZA MORA – Entomólogo del Centro de Investigación Nacional de la
Caña de Azúcar del Ecuador (CINCAE), por sus conocimientos compartidos
en reiteradas ocasiones, los cuales fueron fundamentales para la ejecución de
este trabajo realizado y básico para el desarrollo profesional.
• A todos quienes conforman el CINCAE, por permitirme acceder a las
instalaciones de esta gran institución y poder consultar con certeza las
inquietudes desconocidas y obtenidas en los trabajos realizados.
• Al laboratorio de Entomología de la Agencia Ecuatoriana de Aseguramiento
de la Calidad del Agro (AGROCALIDAD) por el análisis de identificación de
dos especies de Sírfidos encontrados en cultivos de caña de azúcar.
• A quienes conforman el laboratorio de Entomología de la UNCE por haberme
permitido laborar varios años en sus instalaciones, pues sin duda alguna
gracias a ello surgió la motivación de realizar este trabajo enfocado al control
biológico.
• A compañeros agricultores que aportaron de una u otra forma con datos e
información de campo, oportuna para el desarrollo de esta Tesis.
• En especial para mis padres, pues sin duda alguna gracias a ellos pude
llegar a esta meta, que tuvo varios sacrificios pero hoy puedo decir que
valieron la pena. A toda mi familia, le manifiesto mis sinceros agradecimientos
por toda una vida de oportunidades que me brindaron.
• Gracias a todos por su apoyo efectuado en los momentos más difíciles
atravesados en el camino recorrido hacia la excelencia profesional. GRACIAS.
v
Guayaquil, 12 de marzo del 2019
SRA. Q.F. NELKA TANDAZO FALQUÉZ, MSc
VICEDECANA (E) FACULTAD CIENCIAS AGRARIAS
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
Ciudad.-
De mis consideraciones:
Envío a Ud. el Informe correspondiente a la REVISIÓN FINAL del Trabajo de Titulación BIOLOGÍA DE SÍRFIDOS (Díptera – Syrphidae) Y SU CAPACIDAD DE DEPREDACIÓN SOBRE POBLACIONES DE ÁFIDOS (Hemíptero - Aphididae) EN CAÑA DE AZÚCAR, del estudiante NELSON GABRIEL MARTÍNEZ MONSERRATE. Las gestiones realizadas me permiten indicar que el trabajo fue revisado considerando todos los parámetros establecidos en las normativas vigentes, en el cumplimento de los siguientes aspectos:
Cumplimiento de requisitos de forma:
• El título tiene un máximo de 12 palabras.
• La memoria escrita se ajusta a la estructura establecida.
• El documento se ajusta a las normas de escritura científica seleccionadas por
la Facultad.
• La investigación es pertinente con la línea y sublíneas de investigación de la
carrera.
• Los soportes teóricos son de máximo 5 años.
• La propuesta presentada es pertinente.
Cumplimiento con el Reglamento de Régimen Académico:
• El trabajo es el resultado de una investigación.
• El estudiante demuestra conocimiento profesional integral.
• El trabajo presenta una propuesta en el área de conocimiento.
• El nivel de argumentación es coherente con el campo de conocimiento.
Adicionalmente, se indica que fue revisado, el certificado de porcentaje de similitud,
la valoración del tutor, así como de las páginas preliminares solicitadas, lo cual
indica el que el trabajo de investigación cumple con los requisitos exigidos.
Una vez concluida esta revisión, considero que el estudiante NELSON GABRIEL MARTÍNEZ MONSERRATE está apto para continuar el proceso de titulación.
Particular que comunicamos a usted para los fines pertinentes.
Atentamente,
__________________________
DOCENTE TUTOR REVISOR
Ing. VICENTE ALVAREZ POZO, MS.c
C.I. 0906073226
CC: Unidad de Titulación
vi
CERTIFICADO PORCENTAJE DE SIMILITUD
Habiendo sido nombrado Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc, tutor del
trabajo de titulación certifico que el presente trabajo de titulación ha sido
elaborado por MARTÍNEZ MONSERRATE NELSON GABRIEL, CI
0921107181 con mi respectiva supervisión como requerimiento parcial
para la obtención del título de Ingeniero Agrónomo.
Se informa que el trabajo de titulación: “BIOLOGÍA DE SIRFIDOS
(DíPTERA-SYRPHIDAE) Y SU CAPACIDAD DE DEPREDACIÓN
SOBRE POBLACIONES DE ÁFIDOS (HEMíPTERO-APHIDAE) EN
CAÑA DE AZÚCAR.-1-” ha sido orientado durante todo el periodo de
ejecución en el programa antiplagio URKUND, quedando el 1 % de
coincidencia.
CC: Unidad de Titulación
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REPOSITORIO NACIONAL EN CIENCIA Y TECNOLOGÍA
FICHA DE REGISTRO DE TESIS/TRABAJO DE GRADUACIÓN
TÍTULO Y SUBTÍTULO: “Biología de Sírfidos (Díptera – Syrphidae) y su capacidad de depredación sobre poblaciones de áfidos (Hemíptero - Aphididae) en caña de azúcar”
AUTOR Nelson Gabriel Martínez Monserrate
REVISOR(ES)/TUTOR(ES) (apellidos/nombres): Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc.
Ing. Agr. Vicente Álvarez Pozo, MSc.
INSTITUCIÓN: Universidad de Guayaquil
UNIDAD/FACULTAD: Ciencias Agrarias
MAESTRÍA/ESPECIALIDAD:
GRADO OBTENIDO:
FECHA DE PUBLICACIÓN: Marzo de 2019 No. DE PÁGINAS: 62
ÁREAS TEMÁTICAS:
PALABRAS CLAVES/ KEYWORDS:
Caña de azúcar, Sírfidos, áfidos, mortalidad, ciclo biológico.
RESUMEN/ABSTRACT (241-250 palabras):
Esta investigación tuvo lugar en un laboratorio artesanal creado en el Cantón el Triunfo - provincia del Guayas. En campo se colectaron larvas y pupas de algunas especies de moscas Syrphidas, se llevaron al laboratorio donde se mantuvieron para la cría y reproducción. El objetivo de este trabajo fue determinar el ciclo biológico y la capacidad depredadora de especies de moscas Syrphidas sobre poblaciones de áfido amarillo (Sipha flava). Para la cría de adultos se utilizaron jaulas forradas con tela tul, para las larvas se acondicionaron pomos de vidrio, las pupas fueron colocadas en envases plásticos y los huevecillos en tubos de ensayo, todos bajo temperatura y humedad controlada. Para alimentar a los adultos de moscas Syrphidas se utilizó polen, miel y azúcar. Las hembras iniciaron la cópula cuatro días después de su emergencia, iniciaron la ovoposición después de 3 días con un promedio de 3 a 4 huevecillos/día. El tiempo de eclosión de huevecillos fue de 2.6 días y tuvo una fertilidad del 98%. El estado de larva y pupa fue de siete días, los adultos tuvieron una longevidad de 14 días las hembras y 16 días los machos. Se identificaron 2 especies de moscas Sírfidos presentes en el cultivo Melanostoma sp y Pseudodoros clavatus. El promedio de depredación de áfidos para Melanostoma sp fue de 752,5 y de 829,8 para Pseudodoros clavatus. El ciclo de vida desde huevo hasta la emergencia del adulto fue entre 16 y 17 días.
ADJUNTO PDF: x SI NO
CONTACTO CON AUTOR/ES: Teléfono:
0998654647
E-mail: [email protected]
CONTACTO CON LA INSTITUCIÓN:
Nombre: Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc.
Teléfono: 0984998976 – 042-288040
E-mail: [email protected]
viii
Guayaquil, 12 de marzo del 2019
CERTIFICACIÓN DEL TUTOR REVISOR
Habiendo sido nombrado ING. ÁNGEL JINES CARRASCO, tutor del
trabajo de titulación BIOLOGÍA DE SÍRFIDOS (Díptera – Syrphidae) Y
SU CAPACIDAD DE DEPREDACIÓN SOBRE POBLACIONES DE
ÁFIDOS (Hemíptero - Aphididae) EN CAÑA DE AZÚCAR, CANTÓN
EL TRIUNFO certifico que el presente trabajo de titulación, elaborado
por NELSON GABRIEL MARTÍNEZ MONSERRATE, con C.I. No.
0921107181, con mi respectiva supervisión como requerimiento parcial
para la obtención del título de INGENIERO AGRÓNOMO, en la Carrera
Ingeniería Agronómica de la Facultad de Ciencias Agrarias, ha sido
REVISADO Y APROBADO en todas sus partes, encontrándose apto
para su sustentación.
_______________________________
DOCENTE TUTOR REVISOR
ING. ÁNGEL JINES CARRASCO
C.I. No.1801265347
ix
LICENCIA GRATUITA INTRANSFERIBLE Y NO EXCLUSIVA PARA EL USO
NO COMERCIAL DE LA OBRA CON FINES NO ACADÉMICOS
Yo, Nelson Gabriel Martínez Monserrate con C.I. No.0921107181, certifico
que los contenidos desarrollados en este trabajo de titulación, cuyo título es
“BIOLOGÍA DE SÍRFIDOS (Díptera – Syrphidae) Y SU CAPACIDAD DE
DEPREDACIÓN SOBRE POBLACIONES DE ÁFIDOS (Hemíptero -
Aphididae) EN CAÑA DE AZÚCAR” son de mi absoluta propiedad y
responsabilidad Y SEGÚN EL Art. 114 del CÓDIGO ORGÁNICO DE LA
ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS, CREATIVIDAD E
INNOVACIÓN*, autorizo el uso de una licencia gratuita intransferible y no
exclusiva para el uso no comercial de la presente obra con fines no
académicos, en favor de la Universidad de Guayaquil, para que haga uso del
mismo, como fuera pertinente
__________________________________________
Nelson Gabriel Martínez Monserrate
C.I. No. 0921107181
*CÓDIGO ORGÁNICO DE LA ECONOMÍA SOCIAL DE LOS CONOCIMIENTOS,
CREATIVIDAD E INNOVACIÓN (Registro Oficial n. 899 - Dic./2016) Artículo 114.- De los
titulares de derechos de obras creadas en las instituciones de educación superior y centros
educativos.- En el caso de las obras creadas en centros educativos, universidades, escuelas
politécnicas, institutos superiores técnicos, tecnológicos, pedagógicos, de artes y los
conservatorios superiores, e institutos públicos de investigación como resultado de su
actividad académica o de investigación tales como trabajos de titulación, proyectos de
investigación o innovación, artículos académicos, u otros análogos, sin perjuicio de que
pueda existir relación de dependencia, la titularidad de los derechos patrimoniales
corresponderá a los autores. Sin embargo, el establecimiento tendrá una licencia gratuita,
intransferible y no exclusiva para el uso no comercial de la obra con fines académicos.
x
“BIOLOGÍA DE SÍRFIDOS (Díptera – Syrphidae) Y SU CAPACIDAD DE
DEPREDACIÓN SOBRE POBLACIONES DE ÁFIDOS (Hemíptera:
Aphididae) EN CAÑA DE AZÚCAR”
Autor: Nelson Gabriel Martínez Monserrate
Tutor: Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc.
Resumen
Esta investigación tuvo lugar en un laboratorio artesanal creado en el Cantón el
Triunfo - provincia del Guayas. En campo se colectaron larvas y pupas de
algunas especies de moscas Sirphydas, se llevaron al laboratorio donde se
mantuvieron para la cría y reproducción. El objetivo de este trabajo fue
determinar el ciclo biológico y la capacidad depredadora de especies de
moscas Sirphydas sobre poblaciones de áfido amarillo (Sipha flava). Para la
cría de adultos se utilizaron jaulas forradas con tela tul, para las larvas se
acondicionaron pomos de vidrio, las pupas fueron colocadas en envases
plásticos y los huevecillos en tubos de ensayo, todos bajo temperatura y
humedad controlada. Para alimentar a los adultos de moscas Sirphydas se
utilizó polen, miel y azúcar. Las hembras iniciaron la cópula cuatro días
después de su emergencia, iniciaron la ovoposición después de 3 días con un
promedio de 3 a 4 huevecillos/día. El tiempo de eclosión de huevecillos fue de
2.6 días y tuvo una fertilidad del 98%. El estado de larva y pupa fue de siete
días, los adultos tuvieron una longevidad de 14 días las hembras y 16 días los
machos. Se evaluaron 2 especies de moscas Sírfidos presentes en el cultivo
Melanostoma sp y Pseudodoros clavatus. El promedio de depredación de
áfidos para Melanostoma sp fue de 752,5 y de 829,8 para Pseudodoros
clavatus. El ciclo de vida desde huevo hasta la emergencia del adulto fue entre
16 y 17 días.
Palabras claves: caña de azúcar, sírfidos, áfidos, mortalidad, ciclo biológico.
xi
"BIOLOGY OF SYRFIDES (Díptera - Syrphidae) AND ITS CAPACITY OF
DEPREDATION ON POPULATIONS OF AFFIDS (Hemíptera: Aphididae) IN
SUGAR CANE"
Author: Nelson Gabriel Martinez Monserrate
Advisor: Ing. Agr. Ángel Jines Carrasco, MSc.
Abstract
This investigation took place in an artisan laboratory created in the Canton el
Triunfo - province of Guayas. In the field, larvae and pupae of some species of
Syrphida flies were collected and taken to the laboratory where they were kept
for breeding and reproduction. The objective of this work was to determine the
biological cycle and the predatory capacity of Syrphid fly species on yellow
aphid populations (Sipha flava). For the breeding of adults, cages lined with
tulle cloth were used, glass knobs were conditioned for the larvae, the pupae
were placed in plastic containers and the eggs in test tubes, all under controlled
temperature and humidity. To feed the adults of Syrphidas flies pollen, honey
and sugar were used. The females began copulation four days after their
emergence, they started the oviposition after 3 days with an average of 3 to 4
eggs / day. Egg hatching time was 2.6 days and had a 98% fertility. The state of
larva and pupa was seven days, the adults had a longevity of 14 days for
females and 16 days for males. Two species of Syphid flies present in the
culture Melanostoma sp and Pseudodoros clavatus were identified. The
average aphid predation for Melanostoma sp was 752.5 and 829.8 for
Pseudodoros clavatus. The life cycle from egg to adult emergence was between
16 and 17 days.
Key Words: sugar cane, syrphids, aphids, mortality, biological cycle.
xii
Tabla de contenido I. INTRODUCCIÓN ............................................................................................................... 2
1.1. PROBLEMA ....................................................................................................................... 3
1.1.1. Planteamiento del Problema ......................................................................... 3
1.1.2. Formulación del Problema ............................................................................ 3
1.2. Justificación ............................................................................................................. 4
1.3. Factibilidad................................................................................................................ 5
1.4. . OBJETIVOS ............................................................................................................. 5
1.4.1. Objetivo general ............................................................................................... 5
1.4.2. Objetivos específicos ..................................................................................... 5
II. MARCO TEÓRICO ............................................................................................................ 6
III. MATERIALES Y MÉTODOS ...................................................................................... 16
3.1. Localización del estudio ...................................................................................... 16
3.2. Características del clima ..................................................................................... 16
3.3 . Materiales ............................................................................................................. 17
3.4. Factores estudiados ............................................................................................. 18
3.5. Metodología ............................................................................................................ 19
3.5.1. Unidad de estudio.......................................................................................... 19
3.5.2. Análisis estadístico ....................................................................................... 19
3.5.3. Variables evaluadas ...................................................................................... 19
3.6. MANEJO DEL EXPERIMENTO ............................................................................ 20
3.6.3. Método de cría y estudio del ciclo biológico de Syrphidos sp. .............. 23
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................. 29
V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .......................................................... 38
Anexos ................................................................................................................................. 46
xiii
INDICE DE CUADROS DEL TEXTO
Cuadro 1. Ciclo biológico de Melanostoma sp (Díptera – Syrphidae). El
Triunfo, 2018…………………………………………………….……29
Cuadro 2. Porcentaje de depredación de larvas de Melanostoma sp sobre
poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava). El Triunfo, 2018……..30
Cuadro 3. Ciclo biológico de Pseudodoros clavatus (Díptera–Syrphidae). El
Triunfo, 2018……………………………………...…………………..31
Cuadro 4. Porcentaje de depredación de larvas de Pseudodoros clavatus
sobre poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava). El Triunfo,
2018…………….……………………………………………………...32
Cuadro 5. Mortalidad de adultos de syrphidos sp por día, con los porcentajes
más altos determinados durante la longevidad. El Triunfo, 2018
………………………………………………………………………..34
xiv
INDICE DE TABLAS DEL TEXTO
Tabla 1. Poblaciones de especies de moscas Syrphidas prevalentes en los
cañaverales. El Triunfo, 2018…………………………………..…35
Tabla 2. Poblaciones de larvas Sírfidos durante el ciclo fenológico del cultivo
de caña de azúcar. El Triunfo, 2018………...………………………...36
Tabla 3. Densidad poblacional de sírfidos representados en niveles altos,
medios y bajos durante los meses del año……..…………………..37
xv
INDICE DE FIGURAS DEL TEXTO
Figura 1. Colecta de larvas y pupas de Sirphydos en canteros de caña de
azúcar………………….………………………………………………………………20
Figura 2. Acondicionamiento de larvas en campo para el traslado al
laboratorio………………….………………………………………………………….21
Figura 3. Acondicionamiento de pupas en campo para el traslado al
laboratorio……………………………………………………………………………..21
Figura 4. Trampas para adultos de sirfidos ubicadas en cultivos de caña de
azucar………………………………………………………………………………….22
Figura 5. Moscas Sírfidas sobrevolando cultivo de caña de azúcar – El Triunfo,
2018……………………………………………………………………………………22
Figura 6. Distribución de pomos con larvas de Sírfidos y áfido amarillo………23
Figura 7. Puparios obtenidos en laboratorio a través de muestras de campo. 24
Figura 8. Distribución de puparios para determinar periodo de incubación…..24
Figura 9. Jaulas de cría de moscas para determinar comportamiento y
longevidad………………………………………………………...…………..25
Figura 10. Distribución de adultos de Sírfidos para determinar longevidad…..26
Figura 11. Huevecillo de mosca Syrphida con densidad de áfido amarillo……27
Figura 12. Distribución de tubos con especímenes de Sírfidos y áfidos………27
xvi
INDICE DE CUADROS DE ANEXOS
CUADRO 1. A Ciclo larval de Melanostoma sp. El Triunfo, 2018…………….47
CUADRO 2. A Ciclo larval de Pseudodoros clavatus. El Triunfo, 2018…...…47
xvii
INDICE DE TABLAS DE ANEXOS
TABLA 1. A Datos de recolección de campo – Sector 1……………………....48
TABLA 2. A Datos de recolección de campo – Sector 2………………………49
xviii
INDICE DE FIGURAS DE ANEXOS
Figura 1.A. Informe de análisis de Identificación de Melanostoma sp.
Agrocalidad, 2019……………………………………………………………………50
Figura 2.A. Informe de análisis de Identificación de Pseudodoros clavatus.
Agrocalidad, 2019……………………………………………………………………51
Figura 3.A. Recoleccion de especimenes de Sírfidos y afidos en caña de
azúcar………………………………………………………………………………….52
Figura 4.A. Pupas de moscas sirfidas colectadas en cultivo de caña de
azúcar………………………………………………………………………………….52
Figura 5.A. Moscas sirfidas sobrevolando cultivo de caña de azúcar……..….53
Figura 6.A. Trampas utilizadas para obtener muestras de moscas
Syrphidas……………………………………………………………………………...53
Figura 7.A. Pomos para cría de larvas Syrphidas en laboratorio Artesanal. El
Triunfo, 2018………………………………………………………………………….54
Figura 8.A. Puparios evaluados durante la investigación para la obtención de
datos……………………………………………………...……………………………54
Figura 9.A. Distribucion de Puparios de Sirfidos en laboratorio Artesanal. El
Triunfo, 2018………………………………………………………………………….55
Figura 10.A. Jaulas con moscas Syrphidas bajo condiciones
semicontroladas………………………………………………………………………55
Figura 11.A. Evaluacion del ultimo estadio larval en laboratorio Artesanal. El
Triunfo, 2018………………………………………………………………………….56
Figura 12.A. Observacion de especimenes en laboratorio de Entomologia del
CINCAE. El Triunfo, 2018……………………………………………………...……56
Figura 13.A. Larva de Mesogramma sp en II estadio larvario………………....57
Figura 14.A. Larva de Melanostoma sp en III estadio larvario………...………57
xix
Figura 15.A. Larva y adulto de Psedodoros clavatus………………………….58
Figura 16.A. Larva y adulto de Ocyptamus dimidiatus………………………...58
Figura 17.A. Larva y adulto de Ocyptamus gastrostactus………..…..………59
Figura 18.A. Larvas de Ocyptamus dimidiatus y Ocyptamus gastrostactus...59
Figura 19.A. Larva de Ocyptamus dimidiatus con afidos amarillo y blanco...60
Figura 20.A. Puparios de Ocyptamus eclosionados por microavispas y adulto
parasitoide…………………………………………...………………………………..60
Figura 21.A. Diferencia entre macho y hembra de Pseudodoros clavatus….61
Figura 22.A. Visita a canteros de caña de azúcar y análisis de los especimenes
obtenidos………………………………………..…………………………………….61
I. INTRODUCCIÓN
La producción de azúcar a nivel mundial está dada en primera instancia por el
cultivo de caña de azúcar, con un porcentaje actual de producción de 1450
millones de toneladas de azúcar, de 22 millones de hectáreas alrededor del
mundo. De los 121 países que cultivan caña de azúcar, los líderes a nivel
mundial son Brasil, India y China, los cuales abarcan aproximadamente el 60%
de la producción mundial. Se reporta que del total de azúcar blanca cristalizada
un 70% se deriva de la caña de azúcar y el 30% restante de la remolacha
azucarera.
La caña de azúcar es uno de los principales cultivos que se producen en
América latina, en Ecuador constituye uno de los cultivos más importantes en la
cuenca baja del Guayas; con una extensión aproximada de 94.835.00
hectáreas a nivel nacional destinadas para la producción (en 2011) según
datos del INEC. Lo que genera fuentes de trabajos e ingresos para miles de
habitantes.
Reportes del Banco Central informan que se generan más de 30.000 empleos
directos y 80.000 indirectos principalmente en la época seca, ya que en este
periodo se realiza la cosecha (de julio a diciembre). Así mismo que la
producción de la caña de azúcar contribuye con el 1,4% al PIB nacional.
Ecuador cuenta con varios ingenios procesadores de caña de azúcar
distribuidos en diferentes sectores del país, entre los que destacan
principalmente los más grandes y tradicionales que son: el Ingenio San Carlos,
Valdez y la Troncal, los cuales cuentan con el abastecimiento de sus propios
cultivos y de pequeños y grandes cañicultores de la región. La superficie
estimada para la producción de caña de azúcar en nuestro país está distribuida
parcialmente en las siguientes provincias: el 72.4% en el Guayas, 19.60% en el
Cañar, el 4.20% en el Carchi e Imbabura, el 2.4% en Los Ríos, y el 1.40% en
Loja.
En el cultivo de la caña de azúcar del Ecuador se han registrado alrededor de
38 especies de insectos perjudiciales para el cultivo, muchas de las cuales son
2
combatidas naturalmente por organismos benéficos que ejercen un buen
control biológico sobre ellas, dejándolas en niveles muy bajos que no causan
mayor interés para el productor. Algunas de las plagas registradas en nuestro
país son eventuales y causan daño en cierta edad del cultivo y se tornan
agresivas si no hay un control adecuado, lo que puede variar dependiendo del
lugar o época del año (Mendoza et al., 2013) .
Tal es el caso de los áfidos o pulgones conocidos comúnmente, que se han
convertido en una de las principales plagas de la caña de azúcar, son
pequeños insectos chupadores que pertenecen al orden Hemíptera de la
familia Aphididae. Se reportan en Ecuador dos especies: áfidos blanco
(Melanaphis sacchari) y áfidos amarillo (Sipha flava), este último considerado
plaga importante de la caña de azúcar en la cuenca baja del Guayas, principal
zona productora del país, viven en colonias en el envés de las hojas. Son
insectos chupadores, se alimentan de la savia de las hojas, excretan
carbohidratos (sustancias azucaradas) que inducen a la aparición de hongos
(fumagína) sobre el follaje que limitan la fotosíntesis y desarrollo adecuado de
las plantas (Mendoza et al., 2013).
Existen diferentes métodos de control que ayudan a regular poblaciones altas
de esta plaga, uno de los más efectivos y prolongados es el uso de enemigos
naturales. Son organismos benéficos que actúan sobre esta plaga, uno de ellos
que se ha visto ejercer buena acción de control son los Sírfidos (Díptera,
Syrphidae), cuyas larvas depredadoras son voraces principalmente de áfidos,
reduciendo significativamente las poblaciones altas de la plaga hasta un nivel
que no resulta perjudicial para el cultivo.
En Ecuador se conoce muy poco sobre la biología y capacidad de
depredación de las larvas Sírfidos sobre los áfidos. Por tal motivo la presente
Tesis tiene como objetivo fundamental proporcionar información cuantificada
sobre el ciclo biológico de especies de Sírfidos presentes en el cultivo de caña
de azúcar, como también conocer su capacidad depredativa, para atribuir datos
de su efectividad ejercida sobre las grandes poblaciones de áfidos que se
originan en el cultivo cuando las condiciones agroambientales los favorece para
su desarrollo y multiplicación.
3
1.1. PROBLEMA
1.1.1. Planteamiento del Problema
Los áfidos en los últimos años han generado pérdidas significativas en la
producción de la caña de azúcar, en el Ecuador se han reportado dos especies
de áfidos (Sipha flava y Melanaphis sacchari), esto genera preocupación; pues
con el pasar de los años una de las especies se ha convertido en plaga
principal en este rubro agrícola de importancia económica del Ecuador. Por lo
cual se debe tener varias alternativas de control para el manejo y control ante
un eventual ataque masivo de estos fitófagos.
Para el manejo ecológico de este insecto plaga, una de las alternativas es la
utilización de enemigos naturales como en este caso las moscas Sírfidas
(Díptera, Syrphidae) conocidas también como falsa avispa, en estado adulto se
constituye excelentes polinizadores, tanto así que en ciertos hábitats algunas
especies se las ubica en segundo lugar en la polinización después de las
abejas y en estado larval son voraces depredadores y su presa principal son
los pulgones.
Los Sírfidos están presentes en los cultivos, ejerciendo de manera natural un
control importante en la reducción de insectos plaga, en caña de azúcar no es
la excepción, junto a otros organismos benéficos han sido citados realizando un
control mutuo de la plaga, pero no se ha reportado su biología y su capacidad
de depredación sobre las poblaciones de los áfidos durante sus estadios
larvarios.
1.1.2. Formulación del Problema
Los Sírfidos la mayoría de las especies depredadoras son enemigos naturales
de áfidos que ayudan a regular las poblaciones de esta plaga, su conservación
en los mismos nos asegura un control permanente durante la instancia de la
plaga en la plantación, manteniéndose de esta forma un equilibrio de la
población entre el insecto plaga y enemigo natural.
Esto es posible sin duda alguna realizando buenas prácticas agrícolas (BPA),
pero la falta de conocimiento de muchos agricultores que al ver sus cultivos
4
atacados por los áfidos (pulgones), se ven obligados a recurrir al control
químico; que en algunos casos terminan parcialmente con la plaga, la cual
puede surgir nuevamente a los pocos días por su alta tasa de reproductividad,
llevándose de esta forma la peor parte los organismos benéficos.
1.2. Justificación
Los áfidos de manera general son plagas potencialmente perjudiciales para los
cultivos, en la caña de azúcar del Ecuador no han pasado desapercibidos, el
áfido amarillo (Sipha flava) considerado plaga importante de este cultivo ha
llegado afectar considerablemente la producción y si no hay un control
oportuno podría arruinar en su totalidad la plantación.
A pesar de que existen numerosos enemigos naturales para esta plaga, su
control es bastante complejo ya que es un insecto altamente reproductivo y su
ciclo biológico es relativamente corto, lo que origina que se produzcan hasta 2
generaciones por mes (dependiendo de la especie). El control químico no es
recomendado, puesto que destruye de manera general múltiples organismos
vivientes; produciéndose un desequilibrio en la entomofauna natural, lo que
origina que más adelante surja una nueva plaga. Además es costoso y
perjudicial para el hombre y el medio ambiente.
Por esta razón y en base a observaciones en los cultivos, se propuso realizar
este trabajo que nos permite conocer el ciclo biológico y capacidad de
depredación que tienen los Sírfidos sobre poblaciones de áfidos. Con la
ejecución de esta investigación se buscó el mecanismo más sencillo y
eficiente, para que las instituciones o personas interesadas puedan reproducir y
multiplicar bajo condiciones semicontroladas sus propias crías masivas de
Sírfidos a bajos costos, y puedan liberarlos estratégicamente en los puntos
críticos del cultivo obteniendo de esta forma un control satisfactorio de los
áfidos a corto y largo plazo en sus plantaciones, se contribuiría también a
mejorar la polinización en ciertos cultivos mediante esta estrategia bioamigable.
Además, las entidades interesadas se encargarían de capacitar y ayudar a los
agricultores para que tengan un mejor manejo de los áfidos a través del control
5
biológico y de esta manera contribuir para el desarrollo de una agricultura
sostenible, sana y eficiente no solo para las personas sino también para el
medio ambiente en general.
1.3. Factibilidad
Los conocimientos adquiridos durante 10 años de experiencia sobre el manejo
y control de insectos plaga en este rubro agrícola como asistente del
laboratorio de entomología de la Unión Nacional de Cañicultores del Ecuador
(UNCE) y prácticas realizadas en los laboratorios de Entomología del Ingenio
La Troncal y del Centro de Investigación de la Caña de azúcar del Ecuador
(CINCAE).
Además, se cuenta con el apoyo de organizaciones públicas y privadas
vinculadas al cultivo de la caña de azúcar y a la agricultura en general,
contando de esta manera con las plantaciones necesarias para la ejecución del
trabajo y laboratorios de entomología debidamente equipados para la
investigación. Además de áreas (abiertas y cerradas), materiales de laboratorio
y herramientas entomológicas propias que se utilizaran para la cría y
reproducción de los insectos bajo condiciones controladas, para obtener
resultados confiables en la investigación.
También se cuenta con el apoyo de ingenieros, técnicos y agricultores
conocedores de una u otra forma del tema a investigar y como no decir también
del tutor destinado para la guía de este trabajo el Docente Ing. Ángel Jínes
Carrasco con una amplia experiencia en la investigación entomológica.
1.4. . OBJETIVOS
1.4.1. Objetivo general
• Determinar el ciclo biológico de los Sírfidos y su capacidad de
depredación sobre poblaciones de áfidos en caña de azúcar.
1.4.2. Objetivos específicos
6
• Identificar los géneros y/o especies de Sírfidos presentes en el cultivo de
caña de azúcar.
• Evaluar en días los diferentes estados de desarrollo de este insecto
benéfico.
• Estudiar el comportamiento de los adultos de moscas Sírfidas bajo
condiciones de cautiverio.
• Determinar la capacidad depredadora de larvas de Sírfidos en
poblaciones de áfidos.
II. MARCO TEÓRICO
2.1. Importancia de los áfidos en la caña de azúcar del Ecuador.
2.1.1. ÁFIDO BLANCO (Melanaphis sacchari Zehntner, 1897)
Especie ampliamente distribuida en nuestro país. Son insectos que succionan
la savia y predominan en colonias en el envés de las hojas, reproduciéndose
por partenogénesis, es decir sin necesidad del macho. Presentan un cuerpo
suave y delicado, de coloración gris o blanco ceniciento, en estado adulto
miden aproximadamente 1.5 mm de largo. En las poblaciones de este insecto
existen individuos ápteros y alados. Los alados poseen alas transparentes y
por lo general son más pequeños que los ápteros. Su ciclo de vida es
relativamente corto tardan de 5 a 8 días desde el nacimiento de la ninfa hasta
convertirse en adulto, el cual tiene una longevidad promedio de 15 días. Lo que
atribuye de 1 a 2 generaciones por mes.
Tanto ninfas y adultos de este insecto plaga, generan una secreción azucarada
que permite el desarrollo del hongo Capnodium sp, responsable de la fumagína
que se manifiesta como una sustancia negruzca, aceitosa y carbonosa que
cubre el follaje reduciendo la capacidad fotosintética y respiración de las
plantas. Son transmisores del virus de la hoja amarilla, esta enfermedad redujo
la producción en 24% en la variedad B76-78.
Su mayor incidencia se presenta en la época seca (Mendoza et al., 2013).
7
2.1.2. ÁFIDO AMARILLO (Sipha flava Forbes, 1888).
Especie ampliamente distribuida en el litoral Ecuatoriano. Predominan en
colonias en el envés de las hojas, su reproducción es por partenogénesis. No
existen machos, todos los adultos dan origen a hembras ápteras o aladas, que
pueden medir aproximadamente de 1.5 a 2.0 mm de longitud. Ninfas y adultos
son de coloración amarillos. En el transcurso de su ciclo biológico pasan por
cuatro instares nínfales, madurando sexualmente en un periodo 13 ± 5 días.
Durante su fase reproductiva pueden originar de 50 a 90 crías, con un
promedio de una a tres crías por días.
Este áfido es ocasionalmente plaga importante en la caña de azúcar del
Ecuador. Se presenta en otros cultivos como arroz y sorgo. Tanto ninfas como
adultos cuando se alimentan produce puntuaciones de coloración marrón en
los sitios de alimentación. Posteriormente las hojas se tornan amarillas o rojo
oscuro y finalmente se secan desde las puntas. Tiene preferencia por plantas
de dos a cinco meses de edad. Su mayor incidencia se presenta en época
seca, cañas plantas, variedades susceptibles y edad del cultivo.
Este áfido no produce fumagína, ha llegado a causar pérdidas a nivel de campo
de hasta el 17% en la producción; en invernadero ha causado reducciones de
45% en altura de planta y 67% en la producción de materia seca, luego de siete
semanas de infestación (Mendoza et al., 2013)
2.2. Organismos de control biológico (OCB) de los áfidos.
Entre los más importantes están varias especies de coccinélidos, Sírfidos,
crisopas y arañas. El áfido blanco a más de estos es combatido por la avispita
Lysiphlebus testaceipes y el hongo Lecanicillum lecanii. En particular a estos
OCB, las lluvias también contribuyen al control de esta plaga (Mendoza et al.,
2013) .
8
2.3. Clasificación taxonómica de moscas Sírfidas (Díptera - Syrphidae).
2.3.1. Importancia de los Syrphidos sp.
La familia Syrphidae (Díptera), se divide en tres subfamilias: Syrphinae,
Microdontinae y Eristalinae. Las especies depredadoras están incluidas en la
primera división. Con dos grupos diferentes, el antiguo depreda larvas de
himenópteros sociales (abejas, avispas y hormigas), el actual depreda
hemípteros de cuerpo blando (áfidos). Sus larvas es fáciles diferenciar en los
Taxonomía
Reino: Animalia
Filo: Arthropoda
Clase: Insecta
Orden: Díptera
Familia: Syrphidae
Subfamilia: Syrphinae
Tribu: • Bacchini
• Paragini
• Syrphini
• Toxomerini
Subfamilias están clasificadas en 200 géneros y 5000
especies:
• Eristalinae
• Microdontinae
• Syrphinae
NOMBRES COMUNES: Mosca de las flores, moscas
helicóptero, moscas cernidoras, falsa avispa, falsa abeja.
9
cultivos, porque tienen aspecto de babosas o limacos y a menudo están cerca
de colonias de áfidos.
Las hembras fértiles ovipositan donde hay pulgones, las larvas al nacer
depredan con gran voracidad, succionando el contenido del pulgón sin destruir
su exoesqueleto. La melaza emitida por estos estimula la oviposicion,
discriminan pulgones momificados; mas no distinguen los parasitados en
estadios tempranos de aquellos que no lo están. Algunas llegan a comer un
áfido por minuto hasta saciarse.
Luego de tres estadios larvarios empupan en zonas menos expuestas. Los
segmentos caudales son cementados a una hoja, rama u otro soporte para
sujetar la pupa. De la cual emerge el adulto por rotura dorsal y se cierra el ciclo.
Los imagos (adultos) de coloración llamativa son florícolas, el color de sus
cuerpos mimetiza con partes de las plantas para evitar su depredación.
Los imagos de Sirphydos son conocidos como “moscas cernidoras” o “moscas
helicóptero” por su característico vuelo que les permite mantenerse fijos en el
aire sin desplazamiento aparente. También son denominados “moscas de las
flores” por sus hábitos florícolas de la gran mayoría de las especies.
Los Sírfidos poseen uno de los más amplios modos de vida de todos los
dípteros disponiendo de un variado conjunto de adaptaciones durante su
estadio larvario. De esta diversidad deriva una enorme variedad de funciones
ecológicas. Así, existen especies con larvas de hábitos depredadores, otras
fitófagas o micófagas e incluso comensales de insectos sociales. Finalmente
existe un amplio grupo de especies saprófagas, presentes en un sinfín de
medios con materia en descomposición tanto en estado sólido o semisólido
como en una amplia variedad de medios acuáticos. Por todo ello, es de
destacar el importante papel ecológico de este grupo de insectos en una gran
cantidad de ecosistemas y cadenas tróficas (Arcaya Sanchez , 2012)
Según Vockeroth y Thompson (1987), los Sírfidos se encuentran presentes en
todas las grandes regiones biogeográficas, conociéndose aproximadamente
180 géneros y más de 6.000 especies descritas.
10
El tamaño del cuerpo es muy variable aproximadamente 4 mm las especies
más pequeñas y más de 25 mm las más grandes, con patrones de coloración
que incluyen el amarillo, anaranjado, negro, marrón, verde metálico y azul en la
zona del abdomen (Vockeroth y Thompson (1987), las alas poseen una
venación característica, con celdas basales alargadas, y la presencia de una
vena longitudinal falsa denominada espuria, que se dispone entre dos venas
(la vena radial y media) y cruza la vena transversal r-m (Borror et al.,1976). No
obstante la presencia de esta vena no es exclusiva de la familia y no es
observable en algunas especies de Syrphidae (Thompson, 1999).
A pesar de la diversidad de estrategias biológicas, existen varios caracteres
diagnósticos de las larvas de Syrphidae. Entre ellos, con la posible única
excepción Taxomerus politus (Say, 1823) Sommaggio (1999) indico que, los
dos tubos respiratorios están fusionados en un filamento que se eleva en los
espiráculos posteriores del tercer estadio larvario. El tamaño de estos tubos
respiratorios puede variar mucho, siendo generalmente reducido en las
especies depredadoras, pero extremadamente largo en otros grupos de
Syrphinae como los Eristalini acuáticos (larvas cola de ratón).
2.3.2. Importancia como depredadores.
Las presas más habituales de las larvas de Syrphinae son los áfidos
(Aphidoidea) y otros grupos de hemípteros como Fulgoroidea, Cercopoidea,
Cicadelloidea, Aleyrodoidea, Aphidoidea, Coccoidea (Thompson, 1982).
Aunque también se alimentan de Trisp, Ácaros, larvas de Lepidópteros y
Coleópteros entre otras presas (ver recopilación en Rojo et al., 2003). No
obstante, a pesar de esta diversidad de presas, se trata de un grupo compacto
y desde un punto de vista filogenético, muy probablemente derivado de un
único antecesor común. Adicionalmente, algunos grupos de Eristalinae (como
la tribu Pipizini) son actualmente considerados por algunos autores como
miembros de los Syrphinae, al presentar larvas depredadoras con hábitos
tróficos y morfología larvaria similar a estos (Rotheray y Gilbert, 1999; Stahls et
al., 2003). Schneider (1969) en sus estudios sobre bionomía y fisiología de los
11
Sírfidos depredadores indico que el consumo de polen es un prerrequisito para
el desarrollo y maduración de los imagos, en particular de las hembras.
Este mismo autor, también indico el elevado potencial de las larvas de
Syrphinae como destructores de plagas. Como ejemplo citó el caso de una
única larva de Eupeodes corollae (Fabricus, 1794) que consumió un promedio
de 867 individuos de Aphis fabae Scopoli, 1763 y Myzus persicae (Sulzer 1776)
durante un periodo de 10 días de desarrollo larvario. Esta voracidad de las
larvas de Syrphinae las convierte en importantes agentes de control biológico
de plagas de hemípteros y otros insectos de cuerpo blando (Van Emden,
1963).
Guagliumi (1962) realizó uno de los primeros trabajos que indicaban el
potencial biológico de los Sírfidos en el control de las plagas del cultivo de caña
de azúcar. En dicho trabajo se citan las larvas de Pseudodoros clavatus
(Fabricius, 1794) y Toxomerus dispar (Wiedemann, 1830) como depredadoras
de los áfidos Rhopalosiphun maids (Fitch, 1856) y Sipha flava Forbes, 1888 así
como Salpingogaster nigra Schiner, 1868 (mosca de los cañamelares o mosca
de la candelilla) depredando Aeneolamia varia (Fabricius, 1787) (Cercopidae),
en cultivos de caña de azúcar. También se indica que T. dispar se alimenta del
saltahojas verde de la caña de azúcar Saccharosydne saccharivora
(Westwood, 1833) (Delphacidae) e incluso (en condiciones de laboratorio) de
larvas de primer estadio de lepidópteros taladradores del género Diatraea.
Los Syrphidae depredadores, tienen un papel fundamental como agentes
reguladores de poblaciones de diversas plagas, y en particular de los pulgones
o áfidos, incluso en el caso de plagas exóticas (Kaiser et al., 2007). Junto con
los coccinélidos, son posiblemente sus depredadores más importantes. No
obstante, a pesar de que ya Reaumur en 1734 (ver Simmonds et al., 1976)
recomendaba recolectar huevos de moscas afidófagas para su uso contra
estas plagas y que se ha constatado que se trata de los depredadores más
numerosos en un gran número de cultivos. Son relativamente pocos los
trabajos existentes acerca de la cuantificación de su acción beneficiosa.
12
Según Rojo y Pérez – Bañón (2009), el potencial impacto de los Sírfidos sobre
las plagas es importante debido a varias razones: a) la gran movilidad y
habilidad de búsqueda de las hembras fecundadas, b) los hábitos de ciertas
especies que necesitan el estímulo visual de la presa para realizar la puesta, c)
la gran voracidad de sus larvas y d) la rápida intervención desde los primeros
momentos de aparición de la plaga. Quizás el mayor inconveniente a la hora de
su utilización en los programas de control de plagas es su alta sensibilidad ante
tratamientos insecticidas.
Por este hecho, la IOBC (Organización Internacional de Lucha Biológica) los ha
utilizado como insectos modelos para test de insecticidas (Tornier y Drescher,
1992). Es por ello que, determinadas prácticas agrícolas, como la utilización de
insecticidas con poco efecto residual (Colignon et al., 2003) o la inclusión en los
bordes de los cultivos de especies vegetales con flores “atrayentes” de los
adultos (Sutherland et al, 2001) son empleadas desde hace tiempo, para
favorecer el control natural de las plagas mediante Syrphidae.
De manera generalizada, el control biológico de muchas plagas de hemípteros
(áfidos, cochinillas, mosca blanca, psílidos entre otros) se basa en la utilización
de un elevado número de enemigos naturales, aunque el huso de parasitoides
debido a su especificidad, selección de hospederos y facilidad de cría ha
superado ampliamente a los depredadores (Hagvar y Hofsvang, 1990). Sin
embargo, la acción de los depredadores, en particular los Sírfidos, con una
gran diversidad de especies localmente abundantes y ampliamente
distribuidas, es igualmente importante y complementaria en la regulación de las
plagas
2.3.3. Importancia como agentes polinizadores.
Los Sírfidos adultos son uno de los grupos de dípteros mejor adaptados para la
alimentación a base de polen, obteniendo prácticamente todos sus
requerimientos nutricionales a partir de las flores. Incluso varias especies de
Eristalini se consideran, a menudo, rivales en importancia como polinizadores
frente a las abejas en determinados hábitats o cultivos, (Willmer, 2011).
13
Según Pérez- Bañón et al. (2007), en entornos aislados que no permiten la
presencia continuada de himenópteros polinizadores principales, los Sírfidos
migradores como Eristalinis tenax (Linnaeus, 1958), desempeñan un
inestimable papel en la conservación y evolución de especies de plantas
endémicas. Como ejemplo, en pequeñas islas del mediterráneo los imagos de
E. tenax son suficientemente eficaces para la dispersión de polen a larga
distancia, sustituyendo de esta forma a las abejas en este cometido (Petanidou
y Lamborn, 2005).
Siguiendo esta línea de estudio, Jauker y Wolters (2008) demostraron la
efectividad de Sírfidos como polinizadores en cultivos de colza (nabo). También
en otros cultivos los Sírfidos son de gran importancia, como en plantaciones de
Apicaceae, Rosaceae, Solanaceas, y muchas Asteraceae y Brassicaceae
(Weems 1951; Jarlan et al., 1997, Ohsawa y Namai, 1987; Goubara y
Takasaki, 2003; Willmer, 2011).
Los imagos de las especies de Sírfidos de gran tamaño y densamente
pubescentes como muchos Eristalinos, aun siendo principalmente nectaríferos
(Gilbert, 1985), poseen un sistema de recolección del polen adherido al
tegumento (Holloway, 1976). Por ejemplo, cuando los adultos de E. tenax
visitan las flores no ingieren directamente el polen de las anteras, sino que se
impregnan de él mientras manipulan las flores en busca de néctar (Pérez –
Bañón, 2000).
Otras especies como Eristalinus aeneus (Scopoli, 1763) se consideran también
como eficaces polinizadores según algunos autores (Fletcher 1916; Campbell y
Davidson, 1924; Telford, 1939).
2.4. Generalidades de Pseudodoros clavatus.
2.4.1. Pseudodoros clavatus (Fabricius, 1794)
En la actualidad solo se conocen tres especies en el género Pseudodoros, sin
embargo, este pequeño grupo de especies perteneciente a la tribu Syrphini,
posee una complicada historia taxonómica. El género está presente en dos
regiones biogeográficas diferentes: África tropical (1 especie) y el Neotrópico (2
14
especie). Hasta muy recientemente (ej.: Dirichx, 1998) en la región Afrotropical
se conocían habitualmente dos taxones: P. nigricollis Becker, 1993 y P.
psillidivorus Seguy, 1953.
La especie más abundante y comúnmente distribuida en el Nuevo mundo ha
sido denominada habitualmente como Baccha clavata (Fabricius, 1794) en la
mayor parte de catálogos y publicaciones (ej.: Fluke, 1956). Sin embargo,
varios autores consideran que el género Baccha debe dividirse en diferentes
grupos de especies (en ocasiones no cercanamente relacionados). Con este
propósito, uno de estos autores (Hull, 1949 a, b) describió Dioprosopa de forma
que en catálogos posteriores (ej.: Wirth et al., 1965) es tratada como subgénero
de Baccha, pasándose a considerar la especie como Baccha (Dioprosopa)
clavata. En 1976, Thompson y colaboradores consideran Dioprosopa Hull,
1949 y Pseudodoros Becker, 1903 como sinónimos a nivel genérico y la
especie pasa a denominarse Pseudodoros clavatus. Además, en la revisión de
Kassebeer (2000), el análisis de la genitalina masculina pone de manifiesto la
existencia de una segunda especie, P. vockerothi (Kassebeer, 2000), hasta el
momento solo conocida en Ecuador, Perú y Chile, donde coexiste con P.
clavatus.
Distribución
Pseudodoros (Dioprosopa) clavatus, se encuentra ampliamente distribuida en
áreas tropicales y subtropicales del continente americano, tanto en el Neártico
como en el Neotrópico (Vockeroth y Thompson, 1987).
Descripción
De acuerdo con Freitas (1982), los adultos se caracterizan por un patrón de
coloración del abdomen característico con cuatro manchas de color amarillo
sobre un fondo negro. El macho (de 9 a 12 mm) presenta el tórax con el
mesonoto negro y el escutelo de color negro en el centro y amarillo en la base,
ambos con pilosidad clara. Las alas (7mm de longitud y 2 mm de anchura
máxima) presentan una mancha de color castaño que abarca toda la celda
subcostal. La hembra suele ser de mayor tamaño (8 a 10 mm) y difiere del
macho por presentar una región frontal negra con un par de manchas amarillas
15
laterales continuación de las manchas faciales. Los segmentos abdominales
femeninos son también considerablemente más largos y anchos.
Esta especie a más de ser citada en varias bibliografías como Baccha clavata
tiene varios sinónimos, entre los existentes actualmente tenemos:
Baccha babista Walker, 1849
Baccha facialis Thompson, 1869
Baccha fusciventris Wiedemann, 1830
Baccha varia Walker, 1849
Conops quadrimaculata Ashmead, 1880
Mixogaster scutellada Williston, 1886
Paragus scutellaris walker, 1836
Spazigaster bacchoides Bigot, 1884
En cuanto al aspecto general de fases preimaginales, los huevos son de color
blanco cremoso con la superficie del corion esculpido, tienen forma elongada y
miden unos 0.8 mm de largo. Las larvas maduras, miden uno 9 mm de largo
presentando el integumento rugoso y setuloso, de color verde amarillento con
manchas negras dorsales y dos franjas longitudinales anaranjadas. El pupario
mide aproximadamente 5 mm de longitud, de color castaño con pequeñas
setas blancas claras y numerosas manchas en disposición transversal; posee
forma de pera con bases achatadas (Greco, 1998).
Cabe destacar la gran semejanza de las larvas de P. clavatus con las de otros
géneros Scaeva Fabricius 1805, Simosyrphus Bigot, 1882, Ischiodon Sack,
1913, y Eupeodes Osten Sacken, 1877. La estrecha relación entre estos
últimos cuatro géneros ha sido puesta de manifiesto por diversos autores
(Dusek y Láska, 1985: Rotheray y Gilbert, 1999; Laska et al., 2006).
Varios himenópteros parasitoides han sido citados desarrollándose en los
estadios preimaginales de P. clavatus: los Ichneumonidae, Diplazon laetatorius
y D. scutellaris (Cresson, 1868) (Heiss, 1938), el Chalcididae, Pachyneuron
californicum Girault, 1917 (Campbel y Davidson, 1924) y los Pteromalidae
Eurydinotelloides bacchadis (Burks, 1954) y Zatropsis sp. (Entwistle, 1972;
Belliure y Michaud, 2001). También se conoce que los adultos de Pseudodoros
16
clavatus se ven afectados negativamente por algunos tipos de insecticidas
(Michaud, 2003).
2.5. Hipótesis
• Las larvas de moscas Syrphidas pueden ejercer control biológico como
depredadores de áfidos que atacan a la caña de azúcar.
• Bajo condiciones controladas se cumple el ciclo biológico de los
diferentes estados de desarrollo de estas moscas.
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Localización del estudio
La investigación se realizó en un laboratorio Artesanal implementado en El
Cantón El Triunfo provincia del Guayas, ubicado entre las coordenadas
geográficas 2º 19’ 48’’ latitud Sur y 79º 24’ 0’’ de longitud Occidental.
3.2. Características del clima
Parámetros Valor
Precipitación (mm/año)
Temperatura media anual (°C)
Humedad relativa (%)
Heliofanìa (horas/luz/mes)
85,59
26,5
51,33 - 94,55
1030,9
Fuente: INAMHI
17
3.3 . Materiales
• 10 Jaulas entomológicas de estructura de aluminio y espumafon,
cubiertas de tela tul blanco y plástico transparente adicionado.
• 1 Jaula insectario/invernadero de estructura de hierro y aluminio,
cubierta de tela tul negra, plástico transparente adicionado y saran.
• 200 Tubos de ensayo (pequeños).
• 50 Cajas monopetri plásticas (medianas).
• 25 Cajas dipetri plásticas (medianas).
• 25 Cajas monopetri plásticas (pequeñas).
• 50 Tarrinas plásticas transparentes (pequeñas).
• 10 Pomos de vidrio (grandes - 4 litros).
• 1 Hielera térmica (mediana - 13 litros).
• 10 Tarrinas térmicas blancas.
• 10 Tarrinas térmicas amarillas.
• Palillos de madera (para chuzos).
• 1 Juego de pinceles.
• 1 Juego de pinzas de acero.
• 1 Lupa manual.
• 2 Pulverizadores de agua (pequeño - grande).
• 1 Pizeta (mediana).
• Etiquetas autoadhesivas.
• Cinta malla.
• 1 Metro de tela tul.
• 1 Tijera (pequeña).
• Ligas plásticas.
• Chinchetas de acero.
• 1 Paquete de algodón hidrófilo de 500g.
• 1 Rollo de toalla de cocina.
• Guantes quirúrgicos.
• Mascarillas quirúrgicas.
• Zapatones quirúrgicos.
• Tablero y libreta de campo.
18
Material Biológico
• Plantas de caña de azúcar (3 meses edad).
• Poblaciones áfido blanco (Melanaphis sacchari) y áfido amarillo (Sipha
flava).
• Adultos y larvas de moscas Syrphidas.
Equipos
• Estereoscopio.
• Microscopio.
• Cámara fotográfica.
• Termo higrómetro.
Sustancias
• Miel de abeja
• Miel de caña
• Alcohol al 70%
• Agua destilada
• Azúcar morena
• Polen
• Panela granulada
• Cebo para moscas
Recursos Humanos
• Técnicos del laboratorio de entomología de la UNCE.
• Técnicos del laboratorio de entomología del CINCAE.
• Técnicos del laboratorio de entomología de Agrocalidad.
• Ingenieros y agricultores de las zonas a estudiar.
• Docentes de la Facultad - Ciencias Agrarias (Universidad de Guayaquil).
3.4. Factores estudiados
• Biología de Sírfidos (Díptera - Syrphidae) y su capacidad de depredación
sobre poblaciones de áfidos (Hemíptera - Aphididae) en caña de azúcar.
19
3.5. Metodología
3.5.1. Unidad de estudio
Para efectuar esta investigación se evaluaron 851 muestras de Sírfidos
colectadas en campo y se finalizó con el análisis y evaluación de 173
especímenes obtenidos en laboratorio, a los que se registró ciclo biológico y
porcentaje de depredación.
3.5.2. Análisis estadístico
Los datos se analizaron a través de medidas de tendencia central, como son:
desviación estándar, media para datos agrupados y estado biológico del
insecto.
3.5.3. Variables evaluadas
• Número de huevecillos por día y total en ciclo reproductivo de la hembra.
• Tiempo en días/horas de eclosión de huevecillos
• Porcentaje de eclosión de huevecillos.
• Tiempo en días/horas de estadios larvales
• Tiempo en días horas de estado pupas.
• Porcentaje de emergencia adultos
• Longevidad de adultos
• Número de áfidos depredados por larvas
• Comportamiento de larvas y adultos Sírfidos
20
3.6. MANEJO DEL EXPERIMENTO
3.6.1. Colecta de Syrphidos en campo.
Se colectaron larvas y pupas de moscas Syrphidas en lotes experimentales del
(CINCAE) y en canteros comerciales de caña de azúcar del Ingenio San Carlos
y cañicultores del cantón El Triunfo. Se utilizó vestimenta adecuada para
ingresar a los cultivos; como botas, guantes, gorra, protector de rostro y una
lupa para visualizar larvas diminutas o camufladas. Los cultivos muestreados
fueron plantas de caña planta y soca de diferentes variedades, infestados por
áfidos amarillo (Sipha flava) y blanco (Melanaphis sacchari). Fig. 1. Se
obtuvieron en total 851 especímenes de Sírfidos, muestras de estos se llevaron
al laboratorio de Entomología del Centro de Investigación de la Caña de azúcar
del Ecuador (CINCAE) para análisis de aspectos fenotípicos y la obtención del
material estéreo fotográfico.
Fig.1. Colecta de larvas y pupas de Sirphydos en canteros de caña de azúcar.
3.6.2. Método de colecta.
Para la manipulación de las larvas, se utilizó un pincel fino pequeño con cerdas
suaves con el cual se distribuyeron en una hielera térmica con capacidad para
13 litros, que contenía hojas infestadas con áfidos para su refugio y
alimentación. Fig.2.
21
Fig.2. Acondicionamiento de larvas en campo para el traslado al laboratorio.
Las pupas se ubicaron en tarrinas plásticas con malla adicionada, estas se
colocaron con una parte de la hoja donde se encontraban adheridas para una
mejor manipulación. Fig. 3. Estas muestras se trasladaron a un laboratorio
artesanal para dar inicio a la cría de moscas y para determinar el ciclo biológico
y su capacidad depredadora sobre poblaciones de áfidos.
Fig.3. Acondicionamiento de pupas en campo para el traslado al laboratorio.
22
Para un conocimiento general de especies de moscas Sírfidas presentes en
estado adulto en cultivos de caña de azúcar, se utilizó como medio de captura
un cebo microgranulado como atrayente, compuesto por miel de caña, azúcar,
polen, Z-9 Tricosene (hormona) y imidacloprid (veneno); dispuestos en tarrinas
térmicas desechables color amarillo y blanco que fueron ubicadas en puntos
estratégicos utilizando palillos de chuzos para sujetarlas en las plantas. Fig.4.
Fig.4. Trampas para adultos de sirfidos ubicadas en cultivos de caña de azucar.
Mediante estas trampas se obtuvieron dos especies que predominaron en la
caña de azúcar, las cuales fueron tomadas de referencia para reproducción y
llevadas al laboratorio de Entomología de Agrocalidad para identificación. Fig.5.
Fig.5. Moscas Sírfidas sobrevolando cultivo de caña de azúcar – El Triunfo, 2018
23
3.6.3. Método de cría y estudio del ciclo biológico de Syrphidos sp.
En laboratorio las larvas se distribuyeron según tamaño y especie en pomos de
vidrio con capacidad de 4 litros que contenían hojas con áfidos para su
alimentación. El interior de estos fue recubierto con toallas de cocina
humedecidas en agua y la boca se cubrió con tela tul facilitando aireación hacia
el interior, ajustados en espumafon semihúmedo Fig. 6. Estos se colocaron en
un mesón a temperatura promedio de 27 ºC. Se revisaron diariamente
obteniendo pupas, registró del número de larvas vivas/muertas y
proporcionando nuevas colonias de áfidos a las larvas en existencia hasta que
empupen.
Fig.6. Distribución de pomos con larvas de Sírfidos y áfido amarillo.
Los puparios fueron colocados en envases plásticos transparentes
semicónicos, tipo tarrina de 7 cm de diámetro, 10 cm de longitud y 5 cm de
altura. En el interior se incorporó una capa de algodón humedecida en agua y
sobre esta se colocó papel aluminio donde se ubicaron los puparios. Fig.7. Se
rotularon los datos y en una gaveta plástica permanecieron bajo oscuridad a
temperatura promedio de 29 °C y 82% de humedad relativa, hasta la
emergencia de los adultos. Fig.8.
24
Fig.7. Puparios obtenidos en laboratorio a través de muestras de campo.
Fig.8. Distribución de puparios para determinar periodo de incubación.
3.6.4. Jaulas para la cría de Sírfidos en laboratorio artesanal.
Para la cría de moscas fueron transferidas a jaulas entomológicas, en
proporciones iguales de sexo, el cual se determinó mediante características
abdominales y ópticas utilizando tubos de ensayo y lupa. Se rotuló los datos
correspondientes y diariamente se aplicó agua con un rociador de dos a tres
25
veces por día, para darles condiciones favorables en el mantenimiento.
Simultáneamente mediante esta labor se retiraban las moscas muertas. Fig. 9.
Fig.9. Jaulas de cría de moscas para determinar comportamiento y longevidad.
Las jaulas fueron de estructura de aluminio y espumafon, cubiertas de tela tul
blanco y plástico transparente adicionado, de 30 cm de diámetro x 60 cm de
alto, al interior se instaló cinta malla impregnada con miel de caña y polen
natural, en la base superior e inferior se adiciono miel de abeja, panela
granulada y azúcar; brindándoles de esta forma una dieta variada a las moscas
para garantizar su alimentación y determinar longevidad de hembras y machos
en cautiverio. También se introdujo una planta de caña para observar el
comportamiento de los adultos.
Estas jaulas fueron colgadas dentro del lugar designado para su
mantenimiento, permaneciendo a temperatura ambiente y horas luz natural,
hasta registrar la mortalidad total de los imagos. Fig. 10.
26
Fig.10. Distribución de adultos de Sírfidos para determinar longevidad.
Para reproducción se seleccionaron 15 parejas de adultos recién emergidos de
Melanostoma sp y Pseudodoros clavatus y fueron liberados dentro de una gran
jaula, cuyas dimensiones fueron 2.50 m de longitud x 1.50 m de ancho x 2.60 m
de alto, de estructura de hierro, cubierta de tela tul negro y plástico
transparente adicionado. Al interior se incorporaron un foco led con luz cálida
blanca utilizada en las revisiones y plantas de caña de azúcar infestadas por
áfidos para incentivar la cópula. Se los mantuvo a temperatura ambiente y
horas luz natural.
Para la alimentación se utilizó esponjas impregnadas con miel de caña/polen
natural y miel de abeja/panela granulada. Se roció agua diariamente con un
pulverizador en plantas y esponjas, para el mantenimiento de las crías.
Los huevecillos obtenidos fueron colocados independientemente en tubos de
ensayos, con densidades de áfidos dispuestas en un trozo de hoja donde
permanecieron hasta su eclosión y para la evaluación del porcentaje
depredativo de las larvas de syrphidos. Fig.11.
27
Fig.11. Huevecillo de mosca Syrphida con densidad de áfido amarillo.
Se aplicó una densidad diaria de 50 áfidos para la evaluación del primer
estadio, 150 para el segundo y 200 para el tercer estadio.
La boca de los tubos se ajustó con un taco de algodón humedecido en agua y
se los coloco grupalmente en una canastilla plástica cubiertos con toalla de
cocina humedecida en agua, permanecieron en un lugar semioscuro hasta
finalizar la evaluación depredativa y determinación del periodo larval. Fig. 12.
Fig.12. Distribución de tubos con especímenes de Sírfidos y áfidos.
28
El porcentaje de depredación correspondiente a cada especie y estadio larvario
se definió periódicamente mediante la evaluación de 10 individuos de cada
especie.
Simultáneamente se evaluaron ambas especies, pero las hembras de
Melanostoma sp una vez copuladas fueron individualizadas en las jaulas de
cría para obtener el número referente de huevecillos por hembras. Se colocó
en estas jaulas caña infestada de áfido para estimular ovoposicion.
29
IV. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1. Ciclo biológico de Melanostoma sp (Díptera-Syrphidae).
El estado de huevo tuvo una duración de 2,83 ± 0,2 dias, la larva del I estadio
duro 2,54 ± 0.49 días, el II estadio 2,54 ± 0.48 días y el III estadio alcanzó los
2,13 ± 0,87 días; con un tiempo promedio de 7,2 días para su desarrollo; el
estado de pupa tuvo una duración de 6,19 ± 0,81 días, con una duración total
de 16,23 días desde huevo hasta la emergencia del adulto, cuadro 1.
Corroboran a lo realizado por (Arcaya Sanchez , 2012) quien obtuvo datos muy
similares en el ciclo de vida de Ocyptamus dimidiatus alimentando las larvas
con el áfido negro del matarratón - Aphis craccivora, cuyos resultados fueron:
huevo 2,00 ± 0,00 días, larva 5,21 ± 0,11 días, pupa 6,45 ± 0,08 días.
Obteniendo un total de 13,7 ± 0,09 días para las fases pre-imagínales, es decir
hasta la eclosión de las pupas.
Cuadro 1. Ciclo biológico de Melanostoma sp (Díptera – Syrphidae). El Triunfo, 2018
Estados de desarrollo
Días de
duración
(D.S)
Temperatura
(ºC)
Humedad relativa
(%)
Huevo 2,83 ± 0,2 27.8 78
I Estadio larvario 2,54 ± 0,49 25.0 84
II Estadio larvario 2,54 ± 0,48 26.8 66
III Estadio larvario 2,13 ± 0,87 27.4 73
Pupa 6,19 ± 0,81 28.8 78
Total (huevo – adulto) 16.23 27.2 75.8
Adulto Hembra 10,06 ± 1,97 27,6 77
Adulto Macho 11,03 ± 2,03 27,6 77
30
4.1.1. Porcentaje de depredación de larvas de Melanostoma sp
sobre poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava).
La larva (E1) depredó 74,2 áfidos; la larva (E2) se evidenció un consumo de
273,4 especímenes promedio y la larva (E3) tuvo un promedio de depredación
de 404,9 especímenes de áfidos. Destacando que en el estado de larva de este
entomófago puede consumir alrededor de 752,5 áfidos de la especie Sipha
flava, para alcanzar su desarrollo completo y dar origen al siguiente estado de
desarrollo, cuadro 2. Estos resultados difieren a lo manifestado por (Arcaya
Sanchez , 2012), quien anota en sus ensayos con densidades de 80 áfidos
obtuvo un promedio de depredación de 84 para el primer estadio, 569 para el
segundo estadio y 722 para el tercer estadio, la depredación total para esta
densidad fue de 1375. Mientras que con una densidad de 100 áfidos registró un
consumo de 68 para el primer estadio, 449 para el segundo estadio y 708 para
el tercer estadio, la depredación total para esta densidad fue de 1225 áfidos.
Cuadro 2. Porcentaje de depredación de larvas de Melanostoma sp sobre poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava). El Triunfo, 2018
Estado larval
Nº de Larvas I
II
III
Total, áfidos depredados
1 46 284 391 721
2 81 261 376 718
3 63 287 432 782
4 77 258 409 744
5 71 272 463 806
6 49 294 342 685
7 88 276 402 766
8 92 249 385 726
9 79 279 450 808
10 96 274 399 769
Total 742 2.734 4.049 7.525
Promedio 74,2 273,4 404,9 752,5
31
4.1.2. Ciclo biológico de Pseudodoros clavatus (Díptera – Syrphidae).
En el Cuadro 3, Se puede observar que el estado de huevo tuvo una duración
de 2,94 ± 0,07 días, mientras que el estado larval tuvo una duración total de
7,06 días para su desarrollo, manifestando que el I estadio larvario duro 2,53 ±
0.48 días, el II estadio larvario 2,51 ± 0.49 días y el III estadio larvario alcanzo
los 2,02 ± 0,90 días; en tanto que las pupas obtuvieron 6,20 ± 1,08 días para su
desarrollo. Tuvo una duración total desde huevo hasta la emergencia del adulto
de 16,20 días. Estos resultados corroboran lo manifestado por (Arcaya
Sanchez , 2012) que obtuvo datos muy similares en el ciclo de vida de P.
clavatus alimentando las larvas con el áfido negro del matarratón - Aphis
craccivora, bajo una temperatura de 28 ± 2 °C, 80 ± 10% HR, cuyos resultados
fueron: huevo 2,00 ± 0,00 días, larva 6,00 ± 0,12 días indicando a la vez 2 días
para el I estadio, 2 días para el II estadio y de 3 - 4 días para el III estadio
larvario, pupa 5,61 ± 0,08 días. Obteniendo un total de 13,61 ± 0,12 días para
las fases preimaginales, es decir hasta la eclosión de las pupas
Cuadro 3. Ciclo biológico de Pseudodoros clavatus (Díptera–Syrphidae). El Triunfo, 2018
Estados de desarrollo
Días de
duración
(D.S)
Temperatura
(ºC)
Humedad relativa
(%)
Huevo 2,94 ± 0,07 28.8 82
I Estadio larvario 2,53 ± 0,48 25.0 83
II Estadio larvario 2,51 ± 0,49 27.8 70
III Estadio larvario 2,02 ± 0,90 27.3 71
Pupa 6,20 ± 1,08 29.0 82
Total (huevo – adulto) 16.20 27.6 77.6
Adulto Hembra 12,13 ± 1,98 27,5 64
Adulto Macho 14,02 ± 2,01 27,5 64
32
4.1.3. Porcentaje de depredación de larvas de Pseudodoros clavatus sobre poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava).
En el Cuadro 4, Se indica los porcentajes de áfidos consumidos por este
depredador a lo largo de su fase larvaria, indicando que en el primer estadio
larvario (E1) se obtuvo un promedio de depredación de 81,4 áfidos, mientras
que en el segundo estadio (E2) se evidencia un porcentaje de 304,6 áfidos
depredados, por último, en el tercer estadio larvario (E3) se obtiene un
promedio de 443,8 áfidos consumidos. Sobre saliendo que en el transcurso de
su ciclo larval este insecto necesita alrededor de 829,8 áfidos de la especie
Sipha flava, para alcanzar su desarrollo completo y dar origen a la siguiente
fase. Estos resultados difieren lo manifestado por (Arcaya Sanchez , 2012), en
ensayos con densidades de 30 y 100 áfidos obtuvo un promedio de
depredación diario de 20,54 a 46,54 correspondiente a lo indicado.
Cuadro 4. Porcentaje de depredación de larvas de Pseudodoros clavatus sobre poblaciones de áfidos amarillo (Sipha flava). El Triunfo, 2018
Estadio larval
Nº de Larvas
I
II
III
Total, áfidos depredados
1 71 301 392 764
2 90 310 426 826
3 94 343 457 894
4 83 279 468 830
5 70 264 483 817
6 86 286 445 817
7 81 297 449 827
8 77 304 398 779
9 65 315 431 811
10 97 347 489 933
Total 814 3.046 4.438 8.298
Promedio 81,4 304,6 443,8 829,8
33
4.1.4. Mortalidad de adultos de Sirphydos sp por día, con los
porcentajes más altos determinados durante la longevidad.
En el cuadro 5, se puede apreciar la proporción del sexo de los imagos
obtenidos, señalando que en la especie Melanostoma sp hubo una relación de
1:0.97 predominando ligeramente los machos sobre las densidades de
hembras emergidas. La longevidad registrada presento un ligero porcentaje a
favor de los machos. En tanto que estos datos son relativamente similares con
los obtenidos por (Arcaya Sanchez , 2012) quien manifestó una proporción
ligeramente favorable a los machos (relación 1:0.91) en la especie Ocyptamus
dimidiatus. Además, podemos apreciar en la especie Melanostoma sp, que en
el día 1 transcurrido desde el nacimiento hubo un 3% de mortalidad de los
adultos, así mismo en el día 8 se registra un 41% de mortalidad, en el día 10 se
registró un 75%, en el día 12 hubo 95% y en el día 13 se registra el 100% de la
mortalidad.
En cuanto a la proporción del sexo de los imagos obtenidos en la especie
Pseudodoros clavatus, tuvieron una relación de 1:0.96 predominando los
machos al igual que en la longevidad. Estos datos son relativamente similares
con los de (Arcaya Sanchez , 2012) quien manifestó una proporción igualitaria
entre ambos sexos (relación 1:1) y una longevidad a favor de las hembras (<
0.05) alimentando a los adultos de Pseudodoros clavatus con una solución de
miel al 50% en agua, grano de polen fresco y polen de T. procumbens.
También podemos apreciar en la especie Pseudodoros clavatus que en el día 1
transcurrido desde el nacimiento hubo un 7% de mortalidad de los adultos, así
mismo en el día 8 se registra un 48% de mortalidad, en el día 10 se registró un
74%, en el día 12 hubo 86%, en el día 13 un 92% y en el día 16 se registra el
100% de la mortalidad.
Las variaciones obtenidas, pueden atribuirse a la calidad nutricional de las
dietas presentadas para el mantenimiento de los adultos, densidades de
individuos por jaula y diseño de las mismas, vigorosidad de las larvas
alimentadas con áfidos de diferentes especies, control diario de factores
ambientales, manejo y cuidado de los especímenes en sus diferentes fases.
34
Cuadro 5. Mortalidad de adultos de Sirphydos sp por día, con los porcentajes más altos determinados durante la longevidad. El Triunfo, 2018
Especies obtenidas de campo
Días
(#)
Mesogramma sp Melanostoma sp Pseudodoros
clavatus
Ocyptamus
dimidiatus
Ocyptamus
gastrostactus
%
%
%
%
%
Mortalidad registrada diariamente
1 7 9 7 4 1 3 1 8 7 1 1 5 0 1 3
2 2 3 1 5 3 0 0 0 1 0
3 1 0 4 3 0 0 0 0 1 0
4 3 8 5 4 1 5 1 1 0 0
5 3 2 3 3 5 8 0 0 1 3
6 7 4 3 3 2 0 1 0 0 2
7 5 6 3 1 2 0 0 0 0 0
8 32 2 43 28 3 41 18 4 48 1 1 22 4 2 46
9 1 1 2 33 3 15 0 1 0 0
10 33 34 75 24 2 75 10 2 74 3 0 35 5 0 61
11 1 0 1 25 0 6 0 0 0 0
12 9 34 95 10 1 95 5 3 86 6 3 65 3 2 77
13 _ 1 _ 8 100 2 6 92 0 0 _ 5
14 _ 10 100 _ _ _ 4 _ _ 2 5 89 _ 2 100
15 _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ 0 _ _ _
16 _ _ _ _ _ _ _ 5 100 _ 3 100 _ _ _
Ʃ=
104
114
218
≥
88
≤
92
180
≥
56
≤
62
118
15
15
30
15
17
32
1:0.97 1:0.96
35
4.1.5. Abundancia de especies de Sírfidos presentes en los cultivos
de caña de azúcar.
En la tabla 1, se presenta el predominio de especies de Sírfidos encontrados
en cultivos de caña de azúcar, estos datos se obtuvieron mediante el registro
de canteros evaluados durante la investigación y corresponden a la
Sírfidofauna del cultivo. Manifestando que las especies Mesogramma sp y
Melanostoma sp fueron las más abundantes en estado larval, con un claro
predominio en los cañaverales intervenidos, señalando además que
Mesogramma sp se encontró en estado larvario con ausencia de adultos.
Pseudodoros clavatus fue una especie encontrada con frecuencia en los
canteros intervenidos, se indica su presencia tanto en estado larvario como en
adulto. Ocyptamus dimidiatus y O. gastrostactus fueron especies que se
encontraron presentes con poblaciones muy bajas y únicamente en dos lotes
vecinos de caña de azúcar altamente infestado por áfidos y perkinsiellas, en la
tabla se señala que estas especies se encontraron solo en estado de larva, a
esta se las registro como ocasional en el cultivo por la ausencia registrada en
los demás cañaverales evaluados
Tabla 1. Poblaciones de especies de moscas Syrphidas prevalentes en
los cañaverales. El Triunfo, 2018
ESPECIES ABUNDANCIA ESTADO
Mesogramma sp. Abundante Larvas **
Melanostoma sp. Abundante Larvas ** - Adultos**
Pseudodoros clavatus Frecuente Larvas * - Adultos*
Ocyptamus dimidiatus Ocasional Larvas *
Ocyptamus
gastrostactus
Ocasional Larvas *
** Poblaciones altas * Poblaciones bajas
36
4.1.6. Poblaciones de moscas Syrphidas (larvas) durante el desarrollo fenológico del cultivo de caña de azúcar
Los parámetros poblacionales se obtuvieron mediante la evaluación promedio
de varios cultivos de caña de azúcar de diferentes edades que presentaron
infestaciones de áfidos, se monitorearon cultivos de caña planta y soca de
diferentes variedades. Además, se tomaron datos en cultivos con ausencia de
áfidos y presencia de otras plagas, para registros poblacionales de Sírfidos en
estas instancias. Estos datos se tomaron principalmente en la época seca de
2018, pero también en época lluviosa de este año y parte del año 2019 para un
diagnostico entre ambas “estaciones”.
Tabla 2. Poblaciones de larvas Sírfidos durante el ciclo fenológico del cultivo de caña de azúcar. El Triunfo, 2018
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
E
B
M
A
A
A
M
M
B
B
E
E
¡Inciden la edad y poblaciones de áfidos!
En la Tabla 3, siguiendo la metodología de la tabla 2, se manifiestan las
densidades poblacionales de sírfidos en caña de azúcar durante el año las
cuales se incrementan en los meses de abril a junio, pese a que estos están
dentro de la época lluviosa, sin embargo estos resultados se ven alterados por
el ataque de áfidos a cañas con edades de entre 3 y 6 meses de edad que se
encuentran presentes durante el año por siembras nuevas, renovación de
canteros o por el tiempo transcurrido de la cosecha, las cuales ofrecen un
ambiente favorable para la plaga y depredador. Estas poblaciones pueden
variar por efecto de varios factores. Los datos se obtuvieron de marzo de 2018
a febrero de 2019, en canteros de caña de azúcar del cantón El Triunfo y
sectores aledaños.
TABLA 3. Densidad poblacional de sírfidos representados en niveles altos, medios y bajos durante los meses del año.
37
En. Feb. Mar. Abr. May. Jun. Jul. Ag. Sep. Oct. Nov. Dic.
B
B
M
A
A
A
M
B
M
A
A
M
¡Inciden la edad, poblaciones de áfidos y época del año!
4.2. Comportamiento de adultos y larvas de Sirphydos
Las hembras iniciaron la cópula 3 - 4 días después de su emergencia y 3 días
después iniciaron la ovoposición con un promedio de 3 a 4 huevecillos/día,
ubicándolos preferentemente de forma individual cerca de las colonias de los
áfidos. Las hembras copularon hasta 3 veces con los machos, los cuales
fueron retirados de las jaulas una vez que se inició las ovoposiciones.
El porcentaje de eclosión de huevecillos fue 98% el tiempo para la maduración
y eclosión de estos fue aproximadamente 2.5 días, con un porcentaje de
mortalidad del 2% bajo una temperatura oscilante de 29º C y humedad relativa
de 78%. La mortalidad de larvas en el primer estadio fue del 32%, en el
segundo fue de 11% y en el tercero del 3%. Las larvas durante su desarrollo (I -
II estadios) se camuflaron con las exuvias de los áfidos y según su tamaño
tardaron desde 1 a 20 minutos para consumir un áfido. Durante el desarrollo
larval tuvieron dos mudas, después de expulsar y arrastrar una sustancia
similar a un tinte (meconio).
La especie Mesogramma sp durante su vida reproductiva doce hembras
ovipositaron 173 huevecillos durante los días de ovoposición, equivalentes a un
promedio de 14.42 huevecillos por hembras y de Pseudodoros clavatus se
obtuvieron 137 huevecillos de nueve moscas que ovipositaron en un periodo de
3 días, equivalentes a un promedio de 15.22 huevecillos por hembra.
Estas mimetizan con los colores de las hojas por lo que en los primeros
estadios pasan desapercibidos a simple vista, algunas llegan acelerar su
proceso a pupa por falta de alimento. Para empupar en el laboratorio buscaron
las partes más distantes de los recipientes o entre las hojas sin áfidos, las
pupas por lo general tuvieron el aspecto de semilla de cítricos.
38
V. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
Considerando que en el Ecuador hay poco o casi ningún estudio sobre la
biología y la capacidad depredadora de este entomófago se llegaron a las
siguientes conclusiones:
• Las larvas de Syrphidos son excelentes organismos de control biológico
(OCB), su capacidad depredativa los atribuye como uno de los más eficaces
para combatir áfidos.
• Estos controladores biológicos son de metamorfosis completa, su instancia en
los cultivos se ve relacionada principalmente con la presencia de áfidos en las
plantaciones, se determinaron 5 especies depredativas en caña de azúcar de
las cuales se evaluaron dos Melanostoma sp y Pseudodoros clavatus.
• Las larvas de Syrphidos de la especie Melanostoma sp en los tres estadíos
tuvo una depredación de 752,5 adultos y ninfas de áfidos; mientras que la
especie Pseudodoros clavatus alcanzó a depredar 829,8 entre adultos y ninfas
del mismo insecto plaga. Resultados que según la capacidad reproductiva de
los áfidos pueden atribuirse a un porcentaje de depredación de 10 a 17 áfidos
con sus respectivas generaciones.
• El ciclo biológico de Syrphidos desde huevo hasta la emergencia del adulto
fue de 16 a 17 días, con una longevidad promedio de 14 días para las hembras
y 16 días para los machos dependiendo de factores ambientales y nutritivos.
• Las hembras copuladas en condiciones semicontroladas ovipositan alrededor
de 14 huevecillos en un periodo de fertilidad de 3 a 4 días, con un promedio de
3 a 4 huevecillos por día en colonias de áfidos establecidas en las plantas con
un mínimo de 12 días de infestación.
• Los huevecillos requieren de 2 a 3 días para su eclosión, en tanto que las
pupas tardan de 6 a 7 días para eclosionar, estos parámetros bajo una
Temperatura oscilante de 27 a 29º C con Humedad Relativa de 64 a 82%
39
Recomendaciones
✓ Identificar las especies de microhymenópteros (avispas) que
parasitan larvas de Sírfidos.
✓ Establecer una dieta artificial para la cría de larvas Díptera,
Syrphidae depredadoras de áfidos.
✓ Identificar y evaluar especies de Sírfidos presentes en otros
cultivos.
✓ Buscar mecanismos que proporcionen una mayor obtención de
huevecillos por cada hembra copulada.
✓ Montar pies de cría masivos de estos Dípteros para liberaciones
en los cultivos, ya que sin duda alguna ejercen un buen control
sobre las poblaciones de áfidos.
✓ Liberar larvas de Syrphidos a partir del segundo estadio, en
relación de una larva por C/1000 Áfidos por planta o metro lineal
en caña de hasta 3 meses. La misma cantidad por metro
cuadrado en caña superior a los 3 meses.
✓ Liberar adultos de Syrphidos en relación de 30 parejas por c/has
con un porcentaje aproximado del 10% de brotes infestados.
✓ Liberar especies diferentes a las existentes en las plantaciones,
para contrarrestar el porcentaje de parasitismo de las larvas por
microhymenópteros, que interrumpen su alimentación y posterior
reproducción por rotura del ciclo biológico.
✓ Establecer en linderos del cultivo especies de arbustos florícolas
como Hibiscus rosa-sinensis (peregrinas), para utilizarlos como
cercas vivas atrayentes de Sírfidos, preservando de esta forma en
las cercanías del cultivo adultos de sírfidos que actúen en el
momento oportuno ante la presencia de áfidos.
✓ Realizar pruebas de polinización con estas moscas para
determinar su eficacia en este hábito.
40
VI. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
Mendoza, J., Gualle, D., Gomez, P. y Castillo, R. 2013. Guia para el
reconocimiento y manejo de insectos plagas y roedores de la caña de azucar
en Ecuador. CINCAE, Entomologia. El Triunfo, Ecuador: Publicacion Tecnica
N°.2 - Tercera edicion. Presentacion-Introduccion Pag. iv-1.
Guagliumi, P. 1962. Las plagas de la caña de azúcar en Venezuela. Ministerio
de Agricultura y Cría, Centro de Investigaciones Agronómicas, Maracay,
Venezuela. Tomo 2, 850 pp.
Kaiser, M. E., Noma, T., Brewer, M. J., Pike, k. S., Vockeroth, J. R. y Gaimari,
S. D. 2007. Hymenopteran parasitoids and dipteran predators found using
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46
Anexos
47
CUADRO 1. A Ciclo larval de Melanostoma sp. El Triunfo, 2018
Estadio larval
Nº de Larvas
I
II
III
Total ciclo larval
Días/horas
1 3,02 2,01 2,03 7,06
2 3,04 3,00 2,06 8,10
3 2,04 3,03 2.00 7,07
4 2,01 3,05 3,03 8,09
5 3,02 3,01 2,07 8.1
6 3,01 2,00 2,02 7,03
7 2,03 2,06 2,01 6,10
8 2,18 2,03 2,01 6,22
9 3,03 3,05 2,02 8,1
10 2,01 2,11 2,01 6,13
Ʃ / 1º 2,54 2,54 2.13 7.2
CUADRO 2. A Ciclo larval de Pseudodoros clavatus. El Triunfo, 2018
Estadio larval
Nº de Larvas
I
II
III
Total ciclo larval
Días/horas
1 2,04 2,02 2,03 6,09
2 3,06 3,03 2,01 8,10
3 2,00 3,02 2,00 7,02
4 3,01 2,02 2,02 7,05
5 3,01 3,02 2,00 8,03
6 3,05 3,00 2,05 8,10
7 2,03 2,00 2,00 6,03
8 2,04 2,01 2,02 6,07
9 2,02 2,02 2,01 6,05
10 3,00 3,00 2,10 8,10
Ʃ / 1º 2.53 2,51 2,02 7.06
48
TABLA 1. A Datos de recolección de campo - Sector 1
Objetivo Parcial: Identificación de especies.
Actividad final: Tesis universitaria.
Sector 1:
Nueva Fortuna
Fecha de
recolección:
Octubre de 2018
Cultivo de
Caña:
Planta - Soca
Propietario:
Mercedes Albarracín
Presencia
de áfido:
Amarillo – Blanco
Otras plagas:
Barrenador del tallo y
Perkínsiella
Variedad:
Cenicaña
Cultivos
aledaños:
Arroz, Cacao y Caña.
Edad:
5 meses
Total larvas
recolectadas:
187
Área:
6 Hectáreas
Total pupas
recolectadas:
48
Ubicación
geográfica:
N.I
Especies
encontradas:
Melanostoma sp
Pseudodoros clavatus.
49
TABLA 2. A Datos de recolección de campo – Sector 2
Objetivo Parcial: Identificación de especies.
Actividad Final: Tesis Universitaria.
Sector 2:
Santa Sofía
Fecha de
recolección:
Octubre - Noviembre de
2018
Cultivo de
Caña:
Planta - Soca
Propietario:
Mirian Sánchez
Presencia
de áfido:
Amarillo – Blanco
Otras plagas:
Barrenador del tallo,
Perkínsiella y Piojo
Algodonoso.
Variedad:
Cenicaña
Cultivos
aledaños:
Arroz, Cacao, maíz y
Caña.
Edad:
6 meses
Total larvas
recolectadas:
160
Área:
18 Hectáreas
Total pupas
recolectadas:
31
Ubicación
geográfica:
N.I.
Especies
encontradas:
Melanostoma sp
Pseudodoros clavatus
50
Figura 1.A. Informe de análisis de Identificación de Melanostoma sp. Agrocalidad, 2019
51
Figura 2.A. Informe de análisis de Identificación de Pseudodoros clavatus. Agrocalidad,
2019
52
Figura 3.A. Recoleccion de especimenes de Sírfidos y afidos en caña de azúcar.
Figura 4.A. Pupas de moscas sirfidas colectadas en cultivo de caña de azúcar.
53
Figura 5.A. Moscas sirfidas sobrevolando cultivo de caña de azúcar.
Figura 6.A. Trampas utilizadas para obtener muestras de moscas Syrphidas.
54
Figura 7.A. Pomos para cría de larvas Syrphidas en laboratorio Artesanal. El Triunfo, 2018
Figura 8.A. Puparios evaluados durante la investigación para la obtención de datos.
55
Figura 9.A. Distribucion de Puparios de Sirfidos en laboratorio Artesanal. El Triunfo, 2018
Figura 10.A. Jaulas con moscas Syrphidas bajo condiciones semicontroladas.
56
Figura 11.A. Evaluacion del ultimo estadio larval en laboratorio Artesanal, El Triunfo, 2018
Figura 12.A. Observacion de especimenes en laboratorio de Entomologia del CINCAE. El Triunfo, 2018
57
Figura 13.A. Larva de Mesogramma sp en II estadio larvario.
Figura 14.A. Larva de Melanostoma sp en III estadio larvario.
58
Figura 15.A. Larva y adulto de Psedodoros clavatus.
Figura 16.A. Larva y adulto de Ocyptamus dimidiatus.
59
Figura 17.A. Larva y adulto de Ocyptamus gastrostactus.
Figura 18.A. Larvas de Ocyptamus dimidiatus y Ocyptamus gastrostactus.
60
Figura 19.A. Larva de Ocyptamus dimidiatus con afidos amarillo y blanco.
Figura 20.A. Puparios de Ocyptamus eclosionados por microavispas y adulto parasitoide.
61
Figura 21.A. Diferencia entre macho y hembra de Pseudodoros clavatus.
Figura 22.A. Visita a canteros de caña de azucar y analisis de los especimenes obtenidos.
62