PLANTAS NO NATIVAS ESTABLECIDAS EN BOGOTÁ (COLOMBIA) QUE
REPORTAN RIESGO DE INVASIÓN EN OTRAS REGIONES DEL MUNDO
ÁNGELA MARIA CONTRERAS QUINCHE
YURI PAOLA ESPINOSA GÓMEZ
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C.
2018
PLANTAS NO NATIVAS ESTABLECIDAS EN BOGOTÁ (COLOMBIA) QUE
REPORTAN RIESGO DE INVASIÓN EN OTRAS REGIONES DEL MUNDO
ÁNGELA MARIA CONTRERAS QUINCHE
YURI PAOLA ESPINOSA GÓMEZ
Trabajo de grado en Modalidad de Pasantía para optar al título de Licenciadas en Biología
Director
GERMÁN ANTONIO NIÑO GALEANO, Mg.
Supervisor pasantía
JOSÉ ARNALDO MUÑOZ DÍAZ, M.Sc.
Investigador Flora de Bogotá y Colecciones de Referencia
Subdirección Científica, Jardín Botánico de Bogotá
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DE CIENCIAS Y EDUCACIÓN
PROYECTO CURRICULAR DE LICENCIATURA EN BIOLOGÍA
BOGOTÁ D.C
2018
La Universidad no será responsable de las ideas expuestas por los graduandos en el Trabajo
de Grado, según el artículo 117 acuerdo 029, Consejo Superior de la Universidad Distrital
Francisco José de Caldas expedido en Junio de 1988.
Nota de aceptación
________________________________________
________________________________________
________________________________________
________________________________________
________________________________________
________________________________________
_____________________________________
Firma del presidente del jurado
_____________________________________
Firma del jurado
_____________________________________
Firma del jurado
Bogotá. D.C., __________ de_________ 2018
DEDICATORIA
En primer lugar a Dios, por ser fuente de energía, de amor y de fortaleza espiritual. A mi
madre Gloria y mi padre Leonardo por su constante apoyo, amor y sabiduría siendo
incondicionales en todos los momentos de mi vida; a mis familiares y seres queridos por sus
palabras positivas y sus buenos deseos. A mi pareja por su apoyo y compañía a lo largo de
todo este proceso.
Ángela Contreras
Para mis padres y mi hermana por el inmenso amor que me brindan y por su apoyo constante,
para mi pareja que con paciencia y cariño ha sabido acompañarme en todo mi trayecto
académico, para mi hijo por ser el mejor motivo para crecer profesionalmente y brindarle un
excelente ejemplo.
Paola Espinosa
AGRADECIMIENTOS
Queremos agradecer a todos los que nos acompañaron a lo largo de nuestra formación
académica, a nuestros padres, familiares, amigos, compañeros y profesores que con su
presencia nutrieron nuestro crecimiento personal y académico.
A la Universidad Distrital Francisco José de Caldas por contribuir en nuestra formación como
Licenciadas en Biología.
Al profesor German Niño por estar pendiente de nuestro proceso, por su apoyo y
recomendaciones que beneficiaron este trabajo. Al Jardín Botánico por permitirnos realizar
este proceso de pasantía, a los profesionales de la Línea Flora de Bogotá y Colecciones de
referencia de la Subdirección Científica, específicamente al componente de Flora no nativa
liderado por José A. Muñoz, nuestro guía y acompañante en este proceso, por su paciencia y
grandes aportes en este trabajo permitiéndonos aprender y disfrutar de nuestro trabajo.
1
1. INDICE
1. INDICE ....................................................................................................................................... 1
1. 1 Índice de tablas ..................................................................................................................... 2
1.2. Índice de figuras ................................................................................................................... 3
2. RESUMEN ................................................................................................................................. 4
3. INTRODUCCIÓN ...................................................................................................................... 7
4. MARCO REFERENCIAL .......................................................................................................... 9
5. METODOLOGÍA ..................................................................................................................... 14
6. RESULTADOS Y ANÁLISIS ................................................................................................. 18
6.1 Registros de plantas no nativas en Bogotá .......................................................................... 18
6.2. Listado de taxones establecidos que reportan riesgo de invasión en otras regiones del
mundo según bases de datos internacionales ............................................................................ 22
6. 3.Priorización de las 10 especies. .......................................................................................... 26
6.4. Reporte de las salidas de campo y listado del material vegetal recolectado. ..................... 28
6.5. Relación del material multimedia de las especies priorizadas capturado en campo. ......... 30
6.6. Documento descriptivo con las estrategias de invasión de las especies no nativas
seleccionadas, comparando impactos ecológicos y socioeconómicos que representarían los
taxones seleccionados si se comportaran como especies invasoras en Bogotá y su área de
influencia. .................................................................................................................................. 40
6.7. Implementación de la Herramienta I3N ............................................................................. 96
6.8. Manuscrito para publicación con el análisis de la información recopilada durante la
investigación.............................................................................................................................. 99
7. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ..................................................................... 100
8. BIBLIOGRAFÍA .................................................................................................................... 102
9. ANEXOS ................................................................................................................................ 112
2
1. 1 Índice de tablas
Tabla 1. Bases de datos internacionales y documentos especializados consultados para el reporte de
invasión. ...................................................................................................................................................... 15
Tabla 2. Resultados de la búsqueda bibliográfica para especies no nativas. .............................................. 18
Tabla 3. Listado de los 45 registros encontrados de plantas no nativas reportados en Bogotá con su
respectiva fuente de validación y los resultados de la pre-validación......................................................... 19
Tabla 4.Especies validadas para nuevos registros de especies no nativas en Bogotá. ............................... 21
Tabla 5. Reportes de invasión de las 134 especies establecidas. .............................................................. 22
Tabla 6. Listado con las 10 especies priorizadas y número de registros de invasión en distintas regiones
del mundo.................................................................................................................................................... 27
Tabla 7. Lugares, fecha y evidencia fotográfica de las tres salidas de campo realizadas. ......................... 28
Tabla 8.Criterios de evaluación comprendidos en la metodología de I3N. ............................................... 96
Tabla 9. Se observan los resultados del nivel de riesgo de las especies, su categoría y el nivel de
incertidumbre. ............................................................................................................................................. 97
3
1.2. Índice de figuras
Figura 1. Ejemplo de etiquetas elaboradas par las especies recolectadas durante las salidas de campo. .. 29
Figura 2. Registro fotográfico de Conium maculatum L. .......................................................................... 31
Figura 3. Registro fotográfico de Hedera helix L. ..................................................................................... 32
Figura 4. Registro fotográfico de Cirsium vulgare (Savi) Ten .................................................................. 33
Figura 5. Registro fotográfico de Conyza bonariensis L. .......................................................................... 34
Figura 6. Registro fotográfico de Sonchus oleraceus L. ............................................................................ 35
Figura 7. Registro fotográfico de Tradescantia fluminensis (Vell)............................................................ 36
Figura 8. Registro fotográfico de Oxalis corniculata L. ............................................................................ 37
Figura 9. Registro fotográfico de Rumex obtusifolius L. .......................................................................... 38
Figura 10. Registro fotográfico de Prunus serotina Ehrh. .......................................................................... 39
Figura 11. Forma de crecimiento y características de C. maculatum. ...................................................... 41
Figura 12. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. maculatum en el mundo . 42
Figura 13. Forma de crecimiento y características de H. helix. ................................................................ 47
Figura 14. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de H. helix en el mundo. ......... 48
Figura 15. Forma de crecimiento y características de C. bonariensis. ....................................................... 53
Figura 16. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. bonariensis en el mundo. 54
Figura 17. Forma de crecimiento y características de C. vulgare. ............................................................. 58
Figura 18. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. vulgare en el mundo. ...... 60
Figura 19. Forma de crecimiento y características de S. oleraceus. .......................................................... 64
Figura 20. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de S. oleraceus en el mundo. ... 65
Figura 21. Forma de crecimiento y características de T. fluminensis. ....................................................... 70
Figura 22. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de T. fluminensis en el mundo. 71
Figura 23. Forma de crecimiento y características de O. corniculata. ....................................................... 75
Figura 24. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de O. corniculata en el mundo. 76
Figura 25. Forma de crecimiento y características de R. obtusifolius. ...................................................... 80
Figura 26. Información sobre distribución nativa y report de invasión de R. obtusifolius en el mundo. .. 81
Figura 27. Forma de crecimiento y características de P. serotina. ............................................................. 85
Figura 28. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de P. serotina en el mundo ...... 86
Figura 29. Forma de crecimiento y características de D. stramonium. ...................................................... 91
Figura 30. Información sobre distribución nativa y repor de invasión de D. stramonium en el mundo. ... 92
4
2. RESUMEN
El fenómeno de las invasiones biológicas a nivel mundial se ha incrementadoen el último siglo
con gran velocidad, debido a la globalización y los nuevos métodos de transporte que han
permitido al ser humano cruzar las barreras geográficas movilizando cientos de especies a
nuevos ambientes, tanto de manera involuntaria como voluntaria a través de lo que se conoce
como vectores, es decir, el mecanismo real por medio del cual la especie ha sido introducida
(Baptiste et al., 2017). Estos procesos de introducción han posibilitado que se genere un proceso
de homogeneización de la biodiversidad del mundo como comenta Cárdenas–Toro et al. (2015).
La introducción de especies, establecimiento y posterior colonización de nuevos espacios han
generado fuertes impactos a nivel global, tanto de manera indirecta como directa, a tal punto que
las invasiones biológicas son consideradas como la segunda causa de pérdida de biodiversidad
(Gutiérrez, 2006; Baptiste et al., 2017).
En este sentido, se puede considerar que una especie es no nativa, introducida o exótica cuando
está creciendo en un nuevo ecosistema fuera de su zona de distribución natural. Si este nuevo
ecosistema posee las condiciones ambientales y los recursos adecuados para que la especie sea
capaz de crecer y reproducirse sin la intervención del ser humano y manteniéndose duradera en
el tiempo, la especie es naturalizada o establecida. Cuando ésta, es capaz de persistir y
expandirse exitosamente ocupando una mayor área geográfica, amenazando áreas naturales y
seminaturales, compitiendo con las especies nativas por recursos llegando a causar impactos
ambientales, socioeconómicos y de salud pública, se cataloga entonces como una especie
invasora (Baptiste et al., 2010; Herrera et al., 2016).
La introducción de especies no nativas a un nuevo ecosistema es una actividad que puede
presentar variables positivas pero también negativas para las actividades del ser humano así
5
como para la biodiversidad local; el éxito de estas especies se debe a que muchas de estas plantas
introducidas presentan determinadas características biológicas y ecológicas que les permite
colonizar y dominar con facilidad ecosistemas nuevos entre éstos, tiempos de reproducción
cortos, abundante producción de semillas, y una capacidad de dispersión a corta y larga distancia
a través de diversos mecanismos; capacidad de hibridarse con especies nativas y modificar su
carga genética. Son conocidas por su tolerancia al estrés ambiental (plasticidad) y por su alta
competencia con especies locales por nutrientes; comúnmente hay carencia de depredadores o
parásitos controladores de la población; tienen la habilidad de formar bancos persistentes o
bancos profundos de semillas viables y en muchas especies se puede presentar reproducción
tanto sexual como asexual(Ríos y Vargas., 2003).
Baptiste et. al., (2017) explica: “comunidades invadidas por especies con rasgos contrastantes a
las especies de la comunidad local generarán un mayor impacto sobre esos procesos”. Estas
capacidades han generado un gran interés sobre los efectos que pueden acarrear en nuevos
ambientes, así como el uso que se les puede dar, especialmente en el ámbito económico
(agrícola); lamentablemente este uso no está controlado y ha llevado a que las especies aumenten
de manera considerable su población, llegando a invadir y afectar ambientes naturales o
seminaturales completos. De acuerdo a McGeoch et. al., (2016) es necesario considerar aspectos
relacionados con la vulnerabilidad de las áreas a la invasión, además de las especies y vías
utilizadas para la introducción a nuevos ecosistemas.
A lo anterior y teniendo en cuenta la complejidad en términos biológicos de los países tropicales
como Colombia y la dinámica de las diferentes coberturas vegetales urbanas y rurales en
ciudades como Bogotá D.C., es de vital importancia que se establezcan líneas de trabajo e
investigación desde la academia que permitan aportar información de base para las entidades
tomadoras de decisiones y que permita configurar alertas tempranas sobre especies no nativas
que puedan comportarse como invasoras analizando su historia de vida, las características
propias del ecosistema susceptible a ser invadido e identificando los vectores y rutas de la
introducción de estos taxones al país.
6
En este contexto, la Universidad Distrital Francisco José de Caldas en pro de la democratización
del acceso al conocimiento y la garantía del derecho social a una educación superior con criterio
de excelencia, equidad y competitividad, para contribuir al progreso del Distrito Capital de
Bogotá y del país promueve a través del proyecto curricular de Licenciatura en Biología de la
facultad de Ciencias y Educación la formación de ciudadanos profesionales con actitudes de
liderazgo y competitividad, que se puedan desempeñar con integralidad y suficiencia en los
campos del saber disciplinar y didáctico de la biología, desde una perspectiva investigativa para
contribuir con el desarrollo y avance de la educación de Colombia.
7
3. INTRODUCCIÓN
El Distrito Capital posee diferentes ecosistemas tanto en el casco urbano como en el área rural
(cerros tutelares, humedales, páramos, Parques Distritales de Montaña, Áreas de Reserva
Forestal, entre otros) con diversos grados de intervención antrópica, que los hace susceptibles a
una invasión biológica (Zambrano, 2002). Así, desde la línea de investigación de Flora de
Bogotá y Colecciones de referencia de la Subdirección Científica del Jardín Botánico de Bogotá
José Celestino Mutis, cuyo propósito es conocer la diversidad y distribución de las plantas que
crecen en el Distrito Capital, se adelanta la investigación sobre la diversidad de plantas
vasculares no nativas de la Flora de Bogotá”, proceso que ha permitido corroborar a la fecha, la
presencia de más de 695 taxones introducidos con sus respectivos atributos de origen,
distribución global, tipo, motivo y estado de la introducción entre otros (Rodríguez y Muñoz,
2018). Muchos de éstos, se encuentran reportados como establecidos en Colombia, y solo unos
pocos han sido evaluados como especies con algún riesgo de invasión (Baptiste et al., 2010;
Cárdenas-Lópezet al., 2017) evidenciando amplios vacíos de información en el tema.
Este trabajo se realizó bajo el marco de la línea de investigación de Flora de Bogotá y
colecciones de referencia, teniendo como finalidad, generar una primera alerta sobre algunas
plantas no nativas priorizadas que crecen en Bogotá, reportadas como establecidas para
Colombia y que ya se comportan como invasoras en otras regiones del mundo según bases de
datos internacionales, aplicando herramientas para el análisis de riesgo de invasión previamente
empleadas en el país, y teniendo en cuenta los efectos que pueden tener sobre los ecosistemas en
una eventual invasión biológica.
Para el siguiente trabajo se plantearon los siguientes objetivos, reconocer la probabilidad de
riesgo de invasión de 10 especies no nativas establecidas en Bogotá y que han sido reportadas
como invasoras en otras regiones del mundo, y para ello se planteó recopilar nuevos registros de
especies no nativas que crecen en el Distrito Capital a partir de información secundaria no
revisada a la fecha por dicha línea de investigación; identificar las especies no nativas reportadas
como establecidas en Colombia y presentes en Bogotá que reportan riesgo de invasión en otras
regiones del mundo según bases de datos internacionales; describir las estrategias de invasión de
8
diez (10)especies no nativas priorizadas y los factores ambientales que facilitaron su
establecimiento y dispersión en otras regiones del mundo; rastrear y corroborar el motivo y tipo
de introducción de estas especies al país; recolectar ejemplares de herbario y material multimedia
de las especies seleccionadas en sitios priorizados en el Distrito Capital; describir los impactos
ecológicos y socioeconómicos que suponen las especies priorizadas si llegaran a comportarse
como invasoras en Bogotá y su área de influencia, y finalmente, estructurar un manuscrito
susceptible de publicación con el análisis de la información recopilada durante la pasantía
Adicionalmente, en el transcurso de la pasantía, se consideró aplicar la herramienta I3N para el
análisis del riesgo de invasión de las especies priorizadas.
9
4. MARCO REFERENCIAL
El movimiento y la dispersión de forma natural de los seres vivos entre regiones es un
componente integral dentro de la dinámica poblacional de algunas especies. Sin embargo, estas
actividades se han visto alteradas por las actividades del ser humano, el cual ha tenido un papel
importante en la dispersión de las especies de plantas, estableciendo nuevas dinámicas
biogeográficas;son ejemplos de ello, los procesos de colonización humana de nuevas áreas, la
creación de áreas urbanas y la búsqueda de la seguridad alimentaria. De igual forma, la
deforestación y la introducción de especies vegetales para diversificar los hábitats (forestación)
son el resultado a la demanda en busca de satisfacer las necesidades del hombre. Debito a esto se
han modificado los flujos naturales facilitando el movimiento de especies a ambientes fuera de
su rango de dispersión natural, actuando como vectores de introducción de estas especies no
nativas, ocupando nichos vacíos por la destrucción previa de la vegetación original (potreros,
pastizales y zonas periurbanas en el caso de Bogotá) (Baptiste et. al., 2010; Díaz-Espinosa et al.,
2012; Cárdenas-López et al., 2015; Sanz-Elorza et al., 2005).
El comportamiento invasivo no es únicamente de las especies no nativas, ya que algunas
especies nativas pueden volverse invasoras cuando son llevadas a otras regiones distintas a su
distribución natural dentro del mismo país (traslocación), o incluso en su sitio de origen, cuando
se altera significativamente la dinámica ecológica del lugar donde crece.
El movimiento de especies puede verse influenciado por actividades humanas con intereses
económicos, sociales y culturales, es decir de manera intencional, con fines de producción de
alimentos o de madera, control biológico, uso ornamental, colecciones biológicas, uso medicinal
o cultural entre otros, pero también puede darse de manera accidental o involuntaria, ingresando
al país sin el conocimiento de las personas, como en el caso de especies contaminantes de
semillas, en el pelaje de animales, ropa o equipaje de personas. Esta movilización constante de
especies no nativas está conduciendo a la homogeneización y pérdida de biodiversidad (Baptiste
etal., 2010; Sanz-Elorza et al., 2005).
10
Una invasión biológica se desarrolla en tres momentos o fases teniendo en cuenta las
características propias de la especie y del ecosistema susceptible a la invasión. Se inicia con la
introducción ya sea voluntaria o involuntaria de la especie a nuevos ambientes fuera de su área
natural de distribución (especies introducidas, exóticas, alóctonas o no nativas); muchas de estas
especies llegan en condiciones de cultivo, y cuando logran sobrevivir y adaptarse a las
condiciones ambientales del nuevo entorno sin ayuda antrópica y generando poblaciones
autosostenibles en el tiempo, se considera que las especies han logrado establecerse o
naturalizarse (especies establecidas). La invasión biológica propiamente dicha se da cuando éstas
son capaces de persistir y expandirse exitosamente ocupando una mayor área geográfica,
amenazando áreas naturales y seminaturales, compitiendo con las especies nativas por recursos y
llegando a causar impactos ambientales, socioeconómicos y de salud pública (especies
invasoras)(Baptiste et al., 2010; Díaz-Espinosaet al., 2012; Cárdenas-Toro, 2015).
La capacidad de dispersión que posee una especie como explica Baptiste et al., (2010) puede
estar determinada por los patrones del paisaje y las barreras que limitan la dispersión y la
reproducción eficaz; aspectos como la clonalidad, la producción y dispersión de semillas
permiten la colonización de nuevos ambientes, así como la posibilidad de generar poblaciones
estables. El termino clonalidad hace referencia a la facultad de una especie de reproducirse
vegetativamente y generar individuos genéticamente idénticos a la especie original, aunque
independientes de este; dicha habilidad beneficia la dispersión y la colonización de hábitats,
muchas veces favoreciéndose de las perturbaciones (deforestación, incendios, etc.). En el caso
de la reproducción sexual, la dispersión de semillas es beneficiosa en términos de variabilidad
genética y dependiendo del tipo de dispersor,las especies invasoras pueden tener una
colonización más amplia y eficaz (dispersión por zoocoria, anemocoria, hidrocoria entre otras).
Las invasiones biológicas pueden generar grandes cambios en los procesos y funciones de
distintos ecosistemas afectando la calidad de la productividad (en el caso de áreas
agropecuarias), alterando la descomposición y flujo de materiales orgánicos, afectando las áreas
naturales y seminaturales a partir del cambio en las interacciones entre los organismos
(interacciones planta-animal por ejemplo), cambios en los grupos funcionales, alteración de
dinámicas tróficas, cambios en los regímenes hídricos, cambio en la frecuencia e intensidad de
11
incendios (especies pirogénicas como el retamo espinoso), cambios en los ciclos
biogeoquímicos, cambios de las coberturas de la tierra, incremento de procesos erosivos del
suelo y cambio en los regímenes de inundaciones, alteración en la emisión de compuestos
volátiles, CO2, NOx (problemas de salud pública), entre otros, y en algunos casos particulares la
extinción de especies nativas; todos estos efectos en su mayoría con un marcado costo
económico en la sociedad (Matthews, 2005, Cárdenas-Toro et al., 2015).
En Colombia, Baptiste et. al., (2010) registraron 274 especies de plantas introducidas en
diferentes ecosistemas colombianos con antecedentes de invasión en el mundo. A 2017 se ha
evaluado el riesgo de invasión de 84 especies, lo que ha permitido identificar 43 especies con
alto riesgo de invasión, 25 con un riesgo moderado y 12 especies que requieren un mayor
análisis para determinar su moderado o alto riesgo de invasión (Baptiste et al., 2010, Cárdenas-
López et al., 2011, Cárdenas-López et al., 2017). Pese a estos avances en la temática, aún
persisten vacíos de información sobre ecología y biología de plantas no nativas y su
comportamiento en sistemas tropicales.
Es así como los antecedentes de invasión en otras regiones del mundo reflejan de alguna manera
la capacidad de las especies no nativas de comportarse como invasoras en los ambientes donde
son introducidas; esta información junto con las características de los lugares que ha invadido,
nos permite obtener una idea de los tipos de condiciones climáticas y ambientes que benefician
el proceso de colonización de estas especies (Díaz-Espinosa et al., 2012).
Para el caso específico de Bogotá, estudios como el realizado por Díaz-Espinosa et al., (2012)
quienes evaluaron la susceptibilidad de los humedales a invasiones por especies no nativas,
demostraron que el fenómeno de la invasión en estos ecosistemas se debe en cierta medida a la
formación de monotipos (extensos parches de una sola especie) por parte de estas plantas que
alteran la estructura del paisaje, generando el desplazamiento de especies nativas presentes en
estos ecosistemas causado por los cambios en la dinámica de los humedales en relación a los
nutrientes, productividad y la reducción de hábitat para la fauna nativa. Esta situación es
especialmente preocupante ya que los humedales son reservorios de biodiversidad además de ser
reguladores hídricos por excelencia dentro de las ciudades y el cambio en los regímenes hídricos,
el exceso de sedimentos y la contaminación facilitan la expansión de especies oportunistas que se
12
comportan como invasoras, generando impactos negativos a nivel ambiental, socioeconómico y
de salud pública. A través de estos estudios, se conoce que en el Distrito Capital solo 55 especies
de plantas no nativas presentan diferentes niveles de riesgo de invasión (Rodríguez y Muñoz,
2018). De ahí la importancia de estudiar y analizar la capacidad invasora de estas plantas en la
ciudad y su área de influencia, especialmente de aquellas que ya se reportan como especies
establecidas o naturalizadas en el país, que como ya se comentó, pueden producir poblaciones
viables en el tiempo sin intervención antrópica.
Para un óptimo manejo y control de las especies invasoras (o con potencial de serlo) es
fundamental diseñar estrategias de prevención frente a las posibles invasiones que puedan darse
a futuro, realizando un monitoreo de los vectores de introducción, así como de los mecanismos
de dispersión y propagación de éstas; de acuerdo a Baptiste et. al.,(2010), la evaluación de los
riesgos de invasión constituye una herramienta esencial para tomar medidas de prevención y
mitigación de impactos ambientales, socioeconómicos y de salud pública.
Es así como Zalba y Ziller (2008) desarrollaron la Herramienta de Análisis de Riesgo de
Establecimiento e Invasión I3N posteriormente adaptada y aplicada en Colombia por el Instituto
de Investigación de Recursos BiológicosAlexander von Humboldt – IAvH (Baptiste et al., 2010);
cuenta con un protocolo y una serie de 29 criterios orientados a medir el nivel de riesgo de
invasión de una especie no nativa, agrupados en tres grandes componentes,riesgo de
establecimiento, impacto potencial y capacidad de manejo o control. Estos componentes se basan
en variables clave que han demostrado tener un valor predictivo considerable, tales como la
coincidencia o el ajuste climático respecto a sus área de origen o regiones donde ya se encuentra
invadiendo, los antecedentes de invasión (historia de introducción, establecimiento en otras
regiones) y los impactos conocidos en estas zonas, los procesos de colonización, el potencial
depredador y de competencia, capacidad de hibridación y transmisión de enfermedades (en el
caso que especies asociadas a cultivos) entre muchos otros. Esta herramienta es considerada una
de las más acordes a la temática en términos de que asigna puntajes exactos a las especies que se
evalúan, definiendo categorías de invasibilidad de acuerdo al puntaje final después de ser
evaluados los dichos criterios; también da un nivel de incertidumbre, que permite identificar
13
cuáles especies requieren un mayor estudio para conocer su potencial de riesgo como invasoras
(Baptiste et al., 2010 Cárdenas-López et al., 2017).
14
5. METODOLOGÍA
El trabajo de se desarrolló de acuerdo a las cuatro fases propuestas en el anteproyecto, iniciando
el 5 de febrero de febrero y finalizando el día 27 de junio de 2018.
FASE 1. Esta fase se inició con la búsqueda y captura de nuevos registros de especies no nativas
presentes en Bogotá a partir de bibliografía secundaria no evaluada por la línea de investigación
de Flora de Bogotá y colecciones de referencia. De los registros capturados, se validaron algunas
de las especiespor parte del supervisor de la pasantía para ser incluidas a la matriz interna de
flora no nativa de Bogotá. Todos los registros encontrados fueron compilados en una matriz de
datos. Posteriormente, a estas especies validadas se les rastreó los atributos de
origen,distribución global, tipo, motivo y estado de introducción.
El tipo de introducción hace referencia a si fue voluntario o involuntario el ingreso de la especie
al país; el motivo indica la motivación que dio lugar a la introducción de la especie en el caso de
que ésta haya sido voluntaria (ornamental, medicinal, alimenticio etc.), y el estado de la
introducción alude al grado de adaptación que ha tenido la especie en los ecosistemas del país, es
decir si ya se reporta como establecida (naturaliza y/o adventicia), si ya ha sido calificada con
algún nivel de riesgo de invasión o ninguna de las anteriores (introducida). Para esta información
se tuvo en cuenta el Catálogo de plantas y líquenes de Colombia (Bernal et al., 2015), el
Catálogo de plantas invasoras de los humedales de Bogotá (Díaz-Espjnoza et al., 2012) y
trabajos de referencia nacional sobre plantas útiles (Pérez-Arbeláez, 1978).
La distribución global se tomó de lo publicado por la plataforma en línea Global Biodiversity
Information Facility – GBIF. Para estandarizar esta información geográfica y la del origen de las
especies se utilizó la metodología propuesta por Brummit (2001) con algunas adaptaciones
previamente realizadas por la línea Flora de Bogotá.
En esta misma fase se realizó la búsqueda de reportes de invasión de 167 especies registradas
como establecidas en Colombia y que crecen en Bogotá (Rodríguez y Muñoz, 2018), a partir de
la revisión de 26 bases de datos internacionales y documentos especializados como artículos
15
científicos, guías de campo y catálogos de invasión en regiones específicas del mundo
seleccionados por el supervisor de la pasantía (tabla 1). A partir de esta revisión se priorizaron
10 especies que se estudiaron a lo largo del trabajo de grado de acuerdo al número de reportes y
otros criterios de selección como observaciones en campo de éstas y ejemplares en herbarios
(recolectados en Bogotá), para ello, se consultaron las colecciones en línea de los herbarios
Nacional Colombiano (COL), del Jardín Botánico de Bogotá (Herbario JBB) ydel Herbario
Forestal de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas (UDBC). De igual forma se tuvo en
cuenta los nombres comunes y usos reportados para estas plantas en el Distrito de acuerdo a la
Plataforma de nombres comunes de plantas de Bogotá (JBB, 2018) y el potencial tóxico según
estudios previos en el país (Fernández-Alonso et al., 2007).
Tabla 1. Bases de datos internacionales y documentos especializados consultados para el reporte de invasión.
Nombre Tipo de recurso
Internacional
Global register of introduced and invasive species (GRIIS) Base de datos en línea
Global Invasive Species Database, Invasive Species Specialist Group
(GISD) Base de datos en línea
Invasive Species Compendium (ISC), Centre for Agriculture and
Bioscience International (CABI) Base de datos en línea
America
Invasive Plant Field Guide Canadian Food Inspection Agency Documento digital
accesible en línea
Introduced, Invasive and Noxious Plants, USDA Base de datos en línea
Invasive Plants, Fire Effects Information System, USDA Base de datos en línea
Invasive Plant Atlas of the United States. Base de datos en línea
Plantas Invasoras en Cuba. Jardín Botánico Nacional de Cuba. Artículo científico
Manual de Plantas Invasoras de Sudamérica Documento digital
accesible en línea
Plantas Invasoras del Centro- Sur de Chile: Guía de Campo.
Laboratorio de Invasiones Biológicas.
Documento digital
accesible en línea
Europa
Delivering Alien Invasive Species Inventories for Europe, DAISIE Base datos en línea
Atlas de las plantas alóctonas invasoras de España Documento digital
accesible en línea
Flora exótica de la Reserva de la Biosfera de Urdaibai. Gobierno
Vasco
Documento digital
accesible en línea
Plantas alóctonas invasoras reales y potenciales en Islas Canarias Artículo científico
Invasoras: Plantas Invasoras em Portugal Base de datos en línea
16
invasIBER: Especies exóticas invasoras de la Península Iberica Base de datos en línea
Asia
Catalogue of invasive flora of India. Artículo científico
Invasive Alien Plants of Indian Himalayan Region- Diversity and
Implication. Artículo científico
Invasive alien plants in the forest of Asia and the Pacific. Food and
Agriculture Organization of the United Nations.
Documento digital
accesible en línea
Plants Invasion in China- Challenges and Chances. Artículo científico
Guide to the Naturalized and Invasive Plants of Southeast Asia Documento digital
accesible en línea
Africa
Guide to the Naturalized and Invasive Plants of Eastern Africa Documento digital
accesible en línea
Invasive species of South Africa. Base de datos en línea
Invasive Alien Plants Alert. South African National Biodiversity
Institute, SANBI. Base de datos en línea
Alien weeds and invasive plants in South Africa. Documento digital
accesible en línea
Pacífico Pacific Island Ecosystem at Risk (PIER) Base de datos en línea
FASE 2. Se realizó la búsqueda de información de las 10 especies priorizadas, su taxonomía,
nombres comunes, usos, biología, ecología, estrategias de invasión, impactos que generarían las
especies si se comportan como invasoras, además de los métodos de control utilizados en fuentes
de información especializada para cada especie, toda la información obtenida se recopiló en un
documento descriptivo que cuenta con fotografías de las mismas.
Se realizaron muestreos y recolecta de ejemplares de las especies seleccionadas en diferentes
zonas en tres salidas de campo realizadas en los meses de febrero y abril siguiendo el instructivo
para colección de material de herbario del Herbario JBB (anexo 1):
1. febrero 26: Salida Parque de los Novios, barrio Nicolás de Federman y cercanías del
parque Simón Bolívar.
2. abril 9: Salida al humedal Torca-Guaymaral (Loc. Usaquén).
3. abril 30: Veredas Mochuelo Bajo y Quiba Alta (Loc. Ciudad Bolívar).
17
A todos los ejemplares se les realizó registro fotográfico y su respectiva etiqueta de herbario de
acuerdo al instructivo para la elaboración de etiquetas de ejemplares de herbario del mismo
herbario (anexo 2); todo el proceso de identificación taxonómica se hizo con el apoyo de los
curadores del herbario JBB.
No se pudo obtener material fotográfico propio y de buena calidad de una de las especies
(Datura stramonium L.) pues el ejemplar recolectado por el supervisor de la pasantía se
encontraba en estado vegetativo. Las fotografías utilizadas para esta especie fueron descargadas
de bancos de imágenes en línea con licencia no comercial y los respectivos créditos se dan en los
resultados de este producto.
Se corroboró el motivo y tipo de introducción de las especies priorizadas al país a partir de
información secundaria especializada y teniendo en cuenta el Catálogo de Plantas y Líquenes de
Colombia (Bernal, et al., 015) y otros textos como Plantas Útiles de Colombia (Pérez-Arbeláez,
1978).
FASE 3. Se realizó la descripción a partir de información secundaria de las estrategias de
invasión y factores que pudieron beneficiar la invasión en otra regiones del mundo, se
reconocieron los posibles impactos ambientales, económicos y de salud pública de las especies
priorizadas si se comportaran como invasoras en la ciudad de Bogotá, se hizo un comparación
de los atributos de las especies (in situ), teniendo en cuenta toda la información secundaria
recopilada como base teórica de las mismas. Dicha información se organizó en el mismo
documento de los atributos de las especies priorizadas desarrollado en la fase 2.
Con toda la información obtenida de las especies se realizó la evaluación del nivel de riesgo de
invasión, utilizando la Herramienta de Análisis de Riesgo de Invasión I3N utilizada por IAvH,
que a partir de una matriz de 29 criterios que tienen en cuenta el riesgo de establecimiento,
impacto potencial y factibilidad de control permitió evaluar la capacidad de las especies de
establecerse e invadir nuevos ambientes, agrupándolas en 4 niveles de riesgo: alto, moderado y
bajo, y requiere mayor análisis (cuando se necesita de más información para poder establecer si
18
tiene moderado o alto riesgo de invasión) de acuerdo a la puntuación obtenida con la
herramienta, igualmente se conoció el nivel de incertidumbre por especie, es decir, la cantidad de
información faltante acerca de la especie para evaluarla con mayor precisión. Los resultados del
análisis de riesgo de invasión se estructuraron en una tabla de calificación facilitada por IAvH a
través del supervisor de la pasantía (ver anexo 3).
FASE 4. A partir de toda la información recopilada de las especies priorizadas a lo largo del
trabajo se elaboró una primera versión del manuscrito susceptible de publicación en la revista
Actualidad & Divulgación Científica de la Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales
(U.D.C.A).
6.RESULTADOS Y ANÁLISIS
6.1 Registros de plantas no nativas en Bogotá
A partir de la revisión de 5 fuentes de información (tesis de pregrado) se obtuvieron 45 registros
de plantas no nativas reportadas en Bogotá como se observa en la tabla 2, de las cuales después
de un proceso de validación solamente 7especies fueron validadas por el supervisor de la
pasantía.
Tabla 2. Resultados de la búsqueda bibliográfica para especies no nativas.
No. de registros No. fuentes-registro No. especies validadas No. fuentes-atributos
45 5 7 15
Para la validación de dichas especies se tuvo en cuenta la vigencia del nombre científico
(sinonimias especialmente), problemas de nomenclatura, distribución real en Colombia y en
Bogotá de acuerdo a ejemplares de herbario, idoneidad de las determinaciones (determinaciones
erróneas a partir de nombres comunes) entre otros temas como se observa en la tabla 3. A estos
taxones se les rastreo los atributos de origen, distribución global, tipo, motivo y estado de la
introducción entre otros, información proveniente de 15 fuentes bibliográficas, posterior a esta
actividad se logró el aporte de 7 nuevas especies (tabla 4) que alimentaron el consolidado de 695
plantas vasculares no nativas para la Flora de Bogotá.
19
Tabla 3. Listado de los 45 registros encontrados de plantas no nativas reportados en Bogotá con su respectiva fuente
de validación y los resultados de la pre-validación.
ID Taxón
(Fuente original) Especie revisada
Fuente de
validación Pre-validación
1 Eugenia myrtifolia Eugenia myrtifolia Salisb. TROPICOS Nomenclatura dudosa
2 Cotoneaster multiflora
Bunge Cotoneaster multiflorus Bunge TROPICOS Válido
3 Fraxinus chinensis Roxb. Fraxinus chinensis Roxb. TROPICOS No válido-Determinación
errónea
4 Callistemon citrinus Melaleuca citrina (Curtis)
Dum.Cours.
Catálogo de plantas
de Colombia
No válido-Ya está en base
de datos
5 Cupressus lusitanica Hesperocyparis lusitanica (Mill.)
Bartel
Catálogo de plantas
de Colombia
No válido-Ya está en base
de datos
6 Agave attenuata Salm. Agave attenuata Salm. TROPICOS Válido
7 Sprekelia formosissima L Sprekelia formosissima L TROPICOS No válido-Presencia
dudosa (Tierras Bajas)
8 Spondias purpurea Spondias purpurea L. TROPICOS No válido-Presencia
dudosa (Tierras Bajas)
9 Mandevilla laxa Mandevilla laxa TROPICOS No Válido-Posible
determinación errónea
10 Trachelospermum
jasminoides
Trachelospermum jasminoides
(Lindl.) TROPICOS
No Válido-Posible
determinación errónea
11 Oreopanax floribundum Oreopanax floribundum Decne. &
Planch. TROPICOS No Válido-Nativo
12 Lavandula angustifolia Lavandula angustifolia Mill. TROPICOS No Válido-Posible
determinación errónea
13 Plectranthus
madagascariensis
Plectranthus madagascariensis
(Pers.) Benth. TROPICOS
No Válido-Determinación
errónea
14 Plectranthus australis R.
Br. Plectranthus australis R. Br. TROPICOS
No Válido-Posible
determinación errónea
15 Laurus nobilis L. Laurus nobilis L. TROPICOS No válido-Ya está en base
de datos
16 Myosotis scorpioides L. Myosotis scorpioides L. TROPICOS No Válido-presencia
dudosa
17 Sedum dendroideum DC. Sedum dendroideum DC. TROPICOS Válido
18 Quercus robur L. Quercus robur L. TROPICOS No válido-presencia
dudosa
19 Pelargonium
domesticum L.H Bailey.
Pelargonium × domesticum L.H
Bailey TROPICOS Válido
20 Stachys lanata Jacq. Stachys lanata Jacq. TROPICOS No válido-Ya está en base
de datos
21 Melianthus major L. Melianthus major L. TROPICOS No válido-presencia
dudosa
22 Ficus soatensis Dogand. Ficus soatensis Dogand. TROPICOS No válido-nomenclatura
dudosa
23 Myrsine guianensis
(Aubl.) Kuntze Myrsine guianensis (Aubl.) Kuntze TROPICOS No Válido-Nativo
24 Rheum officinale Balle. Rheum officinale Balle. TROPICOS Válido
25 Primula veris L. Primula veris L. TROPICOS No Válido-presencia
dudosa
26 Rosa multiflora Thunb. Rosa multiflora Thunb. TROPICOS No Válido-presencia
dudosa
20
27 Pentas lanceolata
(Forssk.) Deflers
Pentas lanceolata (Forssk.)
Deflers TROPICOS
No válido-presencia
dudosa (Tierras Bajas)
28 Bergenia crassifolia (L.)
Fritsch Bergenia crassifolia (L.) Fritsch TROPICOS
No válido-Ya está en base
de datos
29 Agapanthus africanus
(L.) Hoffmanns
Agapanthus africanus (L.)
Hoffmanns TROPICOS
No válido-determinación
errónea
30 Hippeastrum vittatum
(L´Her.) Herb.
Hippeastrum vittatum (L´Her.)
Herb. TROPICOS
No válido-Ya está en base
de datos
31 Cordyline banksii Hook.
f. Cordyline banksii Hook. f. TROPICOS
No válido-presencia
dudosa
32 Dietes vegeta (L.) N.E.
Br. Dietes vegeta (L.) N.E. Br. TROPICOS
No Válido-presencia
dudosa
33 Aquilegia vulgaris L. Aquilegia vulgaris L. TROPICOS Válido
34 Phoenix roebelenii
O'Brien Phoenix roebelinii O'Brien
Catálogo de plantas
de Colombia Válido
35 Gazania x hybrida
Gaertn. - OTROS
No Válido- posible
determinación errónea
36 Impatiens hawkeri
W.Bull Impatiens hawkeri W.Bull Catalogue of Life
No válido-presencia
dudosa (Tierras Bajas)
37 Symphytum officinale Symphytum officinale TROPICOS No válido-Ya está en base
de datos
38 Opuntia subulata
Mühlenpfordt
Austrocylindropuntia subulata
(Muehlenpf.) Backeb. TROPICOS No válido (Nativo)
39 Lilium bulbiferum L. Lilium bulbiferum L. TROPICOS -
Catalogue of life
No Válido-Posible
determinación errónea
40 Cordyline rubra Otto &
A. Dietr. Cordyline rubra Otto & A. Dietr.
Catálogo de plantas
de Colombia
No válido-presencia
dudosa (Tierras Bajas)
41 Crassula tetragona L. Crassula tetragona L. TROPICOS No Válido-presencia
dudosa
42 Cyperus glaber L. Cyperus glaber L. TROPICOS No válido-presencia
dudosa
43 Pteridium aquilinum (L.)
Kuhn Pteridium aquilinum (L.) Kuhn TROPICOS Válido
44 Lathyrus sativus L. Lathyrus sativus L. TROPICOS No Válido-Posible
determinación errónea
45 Salix viminalis L. Salix viminalis L. TROPICOS No válido-Ya está en base
de datos
Como se observa en la anterior tabla algunas de las especies encontradas en estas fuentes de
información reportaban errores o cambios en el nombre científico, debido a que su
información estaba desactualizada en relación con los cambios de nomenclatura; igualmente
la mayoría de las especies encontradas en las fuentes de información no reportaban
especímenes en herbarios para demostrar la presencia ya sea en el país o en la ciudad de
Bogotá(teniendo en cuenta altitud). También es posible que se trataban de malas
determinaciones científicas a partir de nombres comunes
21
Tabla 4.Especies validadas para nuevos registros de especies no nativas en Bogotá.
Los resultados expuestos en la tabla 4 muestran que enla mayoría de las especies validadas no se
conoce el tipo y motivo de introducción al país lo que dificulta las estrategias de control sobre la
entrada de estas especies y el manejo de las poblaciones, es debido a estas situaciones que se
necesitan mayores estudios sobre las rutas y vectores de introducción de especies en Colombia.
ID Familia Especie Origen Distribución global Tipo
Introducc
ión
Motivo
introducció
n
Riesgo
invasión
1 ARECACEAE
Phoenix
roebelenii
O'Brien
China,
Indochina
Norte y Suroeste de
Europa, Macaronesia,
China, Indochina,
Malesia, Australasia,
Norte y Sureste de
Estados Unidos, México,
Centroamérica, Caribe,
Oeste de Suramérica
Voluntaria Ornamental No
evaluado
2 ASPARAGACEAE
Agave
attenuata
Salm-Dyck México
Suroeste, Norte y Sureste
de Europa, Macaronesia,
Este de África Tropical,
Sur de África, Oeste del
Oceáno Índico,
Australasia, Estados
Unidos, México,
Centroamérica, Brasil
No
conocida
No
conocido
No
evaluado
3 CRASSULACEAE
Sedum
dendroideum
DC. México
Suroeste, Sureste y Norte
de Europa, Macaronesia,
Australia, México,
Centroamérica, Oeste de
Suramérica y Brasil.
No
conocida
No
conocido
No
evaluado
4 GERANIACEAE
Pelargonium
×
domesticum
L.H Bailey.
Horticultu
ra
Suroeste de Europa,
Australasia, Oeste de
Estados Unidos, México,
Oeste y Sur de
Suramérica, Brasil
Voluntaria Ornamental No
evaluado
5 POLYGONACE
AE
Rheum
officinale
Baill. China Europa, China Voluntaria
No
conocido
No
evaluado
6 RANUNCULAC
EAE
Aquilegia
vulgaris L.
Oeste,
Centro y
Sur de
Europa
Europa, Macaronesia,
Cáucaso, Subcontinente
indio, China, Mongolia,
Siberia, Este de Asia,
Australasia, Este de
Canadá, Norte de Estados
Unidos, México, Oeste y
Sur de Suramérica.
No
conocida
No
conocido
No
evaluado
7 ROSACEAE
Cotoneaster
multiflorus
Bunge
China
Centro y Norte de Europa,
Cáucaso, China, Norte de
Estados Unidos, Oeste de
Suramérica
No
conocida
No
conocido
No
evaluado
22
6.2.Listado de taxones establecidos que reportan riesgo de invasión en otras regiones del
mundo según bases de datos internacionales.
Con el listado de 167 taxones establecidosen Bogotá1 se realizó una búsqueda de reportes de
invasión en otras regiones del mundo a través de las bases de datos internacionales y fuentes
bibliográficas especializadas que se mostraron en la tabla 1. De acuerdoa esta búsqueda de
reportes, sólo 4 fuentes de información no arrojaron reporte alguno sobre las especies
consultadas. De igual forma, la base de datos que más hallazgos de invasión arrojó fue Global
Register of Introduced and Invasive Species (GRIIS) con 105 especies reportadas como
invasoras en otras regiones del mundo.
De esta actividad se identificó que134 especies establecidas en Colombia y que crecen en Bogotá
tienen al menos 1 reporte de invasión en otras regiones del mundo (tabla 5).
Tabla 5. Reportes de invasión de las 134 especies establecidas2.
Especie Nro. de reportes
Rumex obtusifolius L. 43
Oxalis corniculata L 38
Eleusine indica (L.) Gaertn. 35
Portulaca oleracea L 33
Conyza bonariensis (L.) Cronquist 30
Sonchus oleraceus (L.) L. 29
Erigeron karvinskianus DC. 29
Cirsium vulgare (Savi) Ten. 29
Datura stramonium L. 28
Dactyloctenium aegyptium (L.) Willd. 26
Mirabilis jalapa L. 24
Anredera cordifolia (Ten.) Steenis 23
Tradescantia zebrina Bosse 22
Conium maculatum L 20
Ageratum houstonianum Mill. 20
Spartium junceum L. 20
1Este listado de plantas no se anexa al presente documento pues hace parte de una investigación interna del Jardín
Botánico de Bogotá cuyos resultados aún no han sido publicados. 2La matriz completa con los países donde se reportan como invasoras y las respectivas fuentes de soporte no se
incluye en el presente documento pues hace parte de una investigación interna del Jardín Botánico de Bogotá.
23
Tradescantia fluminensis Vell 19
Conyza canadensis (L.) Cronquist 18
Conyza sumatrensis (S.F.Blake) Pruski &
G.Sancho
17
Hedera helix L 17
Stellaria media (L.) Vill. 15
Schinus terebinthifolia Raddi 14
Brassica juncea (L.) Czern. 14
Kalanchoe delagoensis Eckl. & Zeyh. 14
Medicago polymorpha L. 14
Rumex acetosella L 14
Prunus serotina Ehrh. 14
Sonchus asper (L.) Hill 13
Festuca arundinacea Schreb. 13
Delairea odorata Lem. 11
Crocosmia × crocosmiiflora (Lemoine)
N.E.Br. 11
Lamium amplexicaule L. 11
Lolium multiflorum Lam. 11
Hypochaeris radicata L. 10
Silybum marianum (L.) Gaertn. 10
Lobularia maritima (L.) Desv. 10
Dactylis glomerata L. 10
Spergula arvensis L. 9
Chloris gayana Kunth 9
Polypogon monspeliensis (L.) Desf. 9
Hypoestesphyllostachya Baker 8
Chenopodiumalbum L. 8
Capsellabursa-pastoris (L.) Medik. 8
Acaciaretinodes Schltdl. 8
Melilotusalbus Medik. 8
Juncustenuis Willd. 8
Marrubiumvulgare L. 8
Veronicapersica Poir. 8
Alopecuruspratensis L. 8
Loliumperenne L. 8
24
Vulpiabromoides (L.) Gray 8
Cestrumnocturnum L. 8
Vincamajor L. 7
Nasturtiumofficinale R.Br. 7
Rapistrumrugosum (L.) All. 7
Silenegallica L. 7
Veronicaarvensis L. 7
Vulpiamyuros (L.) C.C.Gmel. 7
Duchesneaindica (Jacks.) Focke 7
Chenopodiummurale L. 6
Anacardiumoccidentale L. 6
Schinusareira L. 6
Brassicanapus L. 6
Lotuscorniculatus L. 6
Trifoliumrepens L. 6
Plectranthusamboinicus (Lour.) Spreng. 6
Plectranthusscutellarioides (L.) R.Br. 6
Prunellavulgaris L. 6
Salviacoccinea Etl 6
Avenafatua L. 6
Polygonumcapitatum D.Don 6
Apteniacordifolia (L.f.) Schwantes 5
Bellisperennis L. 5
Cotulacoronopifolia L. 5
Sisymbriumofficinale (L.) Scop. 5
Medicagolupulina L. 5
Trifoliumpratense L. 5
Brizaminor L. 5
Eragrostistenuifolia (A.Rich.) Steud. 5
Anagallisarvensis L. 5
Brugmansia × candida Pers. 5
Urticadioica L. 5
Cosmosbipinnatus Cav. 4
Cotulaaustralis (Spreng.) Hook.f. 4
Matricaria recutita L. 4
Brassicanigra (L.) K.Koch 4
25
Brassicarapa L. 4
Cardamineflexuosa With. 4
Cardaminehirsuta L. 4
Raphanusraphanistrum L. 4
Dipsacusfullonum L. 4
Stachysarvensis (L.) L. 4
Brachypodiumdistachyon (L.) P.Beauv. 4
Phalarisminor Retz 4
Polygonumaviculare L. 4
Amaranthusblitum L. 3
Crepiscapillaris (L.) Wallr. 3
Melilotusindicus (L.) All. 3
Trifoliumdubium Sibth. 3
Oenotheralaciniata Hill 3
Orobancheminor Sm. 3
Eragrostiscilianensis (All.) Janch. 3
Polypogonviridis (Gouan) Breistr. 3
Artemisiavulgaris L. 2
Tanacetumparthenium (L.) Sch.Bip. 2
Thlaspiarvense L. 2
Euphorbiapeplus L. 2
Trifoliumcampestre Schreb. 2
Juncusbufonius L. 2
Fumariacapreolata L. 2
Fumariaofficinalis L. 2
Avenasativa L. 2
Festucarubra L. 2
Loliumtemulentum L. 2
Polygonumnepalense Meisn. 2
Potamogetoncrispus L. 2
Pteriscretica L. 2
Zephyranthescarinata Herb. 1
Gamochaetapurpurea (L.) Cabrera 1
Cynoglossumamabile Stapf & J.R.Drumm. 1
Erucavesicaria (L.) Cav. 1
Rorippadubia (Pers.) H.Hara 1
26
Sinapisalba L. 1
Cerastiumfontanum Baumg. 1
Silenearmeria L. 1
Acaciaverticillata (L'Hér.) Willd. 1
Hedysarumsplendens DC. 1
Anigozanthosflavidus DC. 1
Menthasuaveolens Ehrh. 1
Fuchsiaboliviana Carrière 1
Fuchsiamagellanica Lam. 1
Cymbalariamuralis Gaertn. et al. 1
Fragariachiloensis (L.) Mill. 1
Thelypterisdentata (Forssk.) E.P.St.John 1
Como indica la tabla 5, de las 134 especies establecidas con reportesde invasión en otras
regiones del mundo se presentaron reportes de solamente un (1) país como mínimo para 17
especies y un máximo de 43 reportes para una especie (Rumex obtusifolius L),
6. 3.Priorización de las 10 especies.
A partir de las 134 especies que tienen reportes de invasión en otros países, se priorizaron 10
especies a través de los siguientes filtros o criterios de selección (ver tabla 6):
Número de países donde reportan riesgo de invasión: se estableció un conjunto de 38
especies cuyo número de reportes de invasión fue mayor o igual a 10.
Ejemplares de herbario: Se revisaron ejemplares de las 38 especies, que han sido
colectados en Bogotá y disponibles a través de las colecciones en línea de los herbarios
COL (Herbario Nacional Colombiano), Herbario JBB y Herbario Forestal UDBC.
Frecuencia de observación en el Distrito Capital: las especies priorizadas coinciden con
aquellas que se observan actualmente con más frecuencia en la ciudad, es decir ya sea por
su amplia presencia en jardines, parques, separadores de avenidas y en el arbolado urbano
27
como Hedera helix L. y Prunus serótina Ehrh., o bien porque se tratan de especies
arvenses que se han ido propagando tanto en el área urbana como en las áreas rurales del
Distrito (bordes de camino, bordes de quebradas, potreros, zonas abandonas etc).
Usos y nombres comunes: Algunas especies reportan nombres comunes y se les atribuye
usos en el Distrito Capital de acuerdo a la Plataforma de Nombres Comunes de las
Plantas de Bogotá del Jardín Botánico de Bogotá.
Se tuvo en cuenta algunos criterios adicionales como su potencial tóxico para los seres
humanos (Conium maculatum L. y Datura stramonium L.) de acuerdo a estudios previos
en el país.
En la anexo 4 se presentan la matriz complete de priorización de las especies con los criterios
señalados anteriormente.
Tabla 6. Listado con las 10 especies priorizadas y número de registros de invasión en distintas regiones del mundo.
Familia Especie No. reportes de invasión
APIACEAE Conium maculatum L. 19
ARALIACEAE Hedera hélix L. 17
ASTERACEAE Cirsium vuelgare (Savi) Ten 29
ASTERACEAE Conyza bonariensis L. 30
ASTERACEAE Sonchus oleraceus L. 29
COMELINACEAE Tradescantia fluminensis (Vell) 19
OXALIDACEAE Oxalis corniculata L. 38
POLIGONACEAE Rumex obtusifolius L. 43
SOLANACEAE Datura stramonium L. 28
ROSACEAE Prunus serotina Ehrh. 14
Como se observa en la tabla anterior, las especies priorizadas presentan altos reportes de
invasión en otras regiones del mundo, especialmente Rumex obtusifolius L. y Oxalis
corniculata L. con 43 y 38 reportes respectivamente. R. obtusifolius seconsideraentre las
especies más estudiadas a nivel mundial por ser una de las cinco plantas no cultivadas de
mayor distribución global.
28
En los casos de C. maculatum y D. stramonium, aunque no tuvieron altos registros de
invasión se priorizaron debido a sus características toxicasque pueden causar impactos en
la salud pública(Fernández-Alonso et al., 2007); en el caso de C. maculatum, presenta
ocho alcaloides de piperidina, algunos de estos son los responsables de la toxicidad de la
planta (γ-Coniceina), presentando problemas dermatológicos y respiratorios en el ser
humano. D. stramonium por su parte,también contiene diversos alcaloides tropánicos
potencialmente tóxicos como la hiosciamina y la escopolamina, considerándose como
una planta alucinógena. La ingestión de estas especies, voluntaria o accidental, puede
producir serios efectos tóxicos e incluso la muerte.
6.4. Reporte de las salidas de campo y listado del material vegetal recolectado.
Se realizaron tres salidas de campo (tabla 7) a tres sitios diferentes en jornada completa
donde se recolectó material vegetal de cada una de las especies siguiendo el instructivo para
recolección de material aportado por el Jardín Botánico para su ingreso al Herbario.
Se recolectaron en total 63ejemplares de herbario. En el anexo 2 se muestra el instructivo
institucional que se utilizó para la elaboración de las etiquetas ejemplares herborizados,
incluyendocon las descripciones de los mismos, el lugar de recolecta, características del área
donde se encontró, medidas de referencia, color, aspecto, entre otros (ver figura 1).
Tabla 7. Lugares, fecha y evidencia fotográfica de las tres salidas de campo realizadas.
Lugar Fecha Evidencia fotográfica
Parque de los Novios y
áreas verdes barrió
Nicolás de Federman,
Parque Simón Bolívar.
Febrero 26
Fuente: José A. Muñoz, 2018
29
Humedal Torca-
Guaymaral
(Loc. Usaquén)
Abril 9
Fuente: José A. Muñoz, 2018
Veredas Mochuelo Bajo
y Quiba Alta
(Loc. Ciudad Bolívar)
Abril 30
Fuente: José A. Muñoz, 2018
Para estas salidas de campo se estructuró como insumo, un documento corto y descriptivo sobre
especies no nativas y cómo identificar en campo estrategias ecológicas de invasión, que se
muestra en el anexo 5. De igual forma en el anexo 6 se reportan las respectivas etiquetas
elaboradas de acuerdo a la metodología señalada.
Figura 1. Ejemplo de etiquetas elaboradas par las especies recolectadas durante las salidas de campo.
30
6.5. Relación del material multimedia de las especies priorizadas capturado en campo.
En las salidas de campo se fotografiaron individuosde las especies priorizadas incluyendo la
forma en la que se encontraron en estos sitios para así evidenciar sus características como su
forma de crecimiento, estructuras de las hojas, tallo, flor y frutoy características que
permitirían una posible invasión; la recopilación del material multimedia de cada una de las
especies y las salidas de campo facilitaron su reconocimiento y el comportamiento de cada
especie en algunas áreas del Distrito Capital.
A continuación se presenta el registro fotográfico realizado en campo:
31
Figura 2. Registro fotográfico de Conium maculatum L.
Fuente: Angela Contreras, Paola Espinosa. a,f,d,g. flores hermafroditas de color blanco de 2 mm de diámetro. h.
inflorescencia a modo umbelas compuestas d,i,m. Tallo con tintes vinotinto. b,c,j,k,l,n. Registro de presencia de C.
maculatum y su forma de crecimiento. e. Hojas compuestas.
32
Figura 3. Registro fotográfico de Hedera helix L.
Fuente: Angela Contreras, Paola Espinosa, José Muñoz. a,b. hojas brillantes, coriáceas, heterofilas y en su mayoría
palmeadas. C,d,f,h. forma de crecimiento de H, helix. e, g. Fruto a manera de drupa con un color verde violáceo y
más oscuro cuando está maduro y contiene entre 2-5 semillas.
33
Figura 4. Registro fotográfico de Cirsium vulgare (Savi) Ten
Fuente: Angela Contreras, Paola Espinosa. a,b,e,i,j. Flores hermafroditas, corolas de color lila, anteras rosadas; fruto
de tipo aquenio oblongo a elíptico y presenta un papus de pelos plumosos de color blanco. f, k, g. hojas del tallo
profundamente pinnatipartidas que se dividen en 3 o 4 lóbulos a cada lado, con haz provisto de espinas rígidas y con
pelos pluricelulares en los nervios. C, d, l,m, n. zona y tipo de crecimiento de C. vulgare.
34
Figura 5. Registro fotográfico de Conyza bonariensis L.
Fuente: Paola Espinosa, Angela Contreras. a,c,f,h.flores, corola filiforme-tubular amarilla, papus fibroso, alargado y
blanco. b, i. Hojas simples, pinnatisectas desde la parte media de la lámina hasta el ápice, alternas, sésiles. d, g. zona
y tipo de crecimiento de C. bonariensis.
35
Figura 6. Registro fotográfico de Sonchus oleraceus L.
Fuente: Paola Espinosa, Angela Contreras. a,c,g. Capítulos florales terminales, subtendidos por una bráctea foliosa,
cabezuelas de color amarillo. d, e, f. tallos suculentos, surcados, con vasos laticíferos, glabros. i. hojas alternas,
inferiores profundamente pinnatisectas, pecioladas, superiores sésiles y perfoliadas, con base ancha. b, h. zona y
forma de crecimiento de S. oleraceus.
36
Figura 7. Registro fotográfico de Tradescantia fluminensis (Vell)
Fuente: Angela Contreras, Paola Espinosa, José A. Muñoz. a, j, k. Hojas glabras de forma ovado-lanceoladas, son
carnosas, lustrosas, dispuestas alternativamente de color verde oscuro, inflorescencias a manera de cimas
terminales. d, e, g. tallos decumbentes y enraizantes en los nudos, con muchas ramificaciones. B, c,f,i,l,m. Zona y
forma de crecimiento de T. fluminensis.
37
Figura 8. Registro fotográfico de Oxalis corniculata L.
Fuente: Paola Espinosa, Angela Contreras. a, b, e, g. tallo rastrero o decumbente, fibroso, color verde rojizo hacia la
base, enraizamiento en los nudos. c, d, f, h. flores regulares, cáliz verde pentalobulado, basalmente connado, corola
con 5 pétalos, de color amarillo claro, basalmente connados. i. forma de crecimiento de O. corniculata.
38
Figura 9. Registro fotográfico de Rumex obtusifolius L.
Fuente: Paola Espinosa, AngelaContreras. a, b, g. Características del crecimiento de R. obtusifolius. c, d. hojas
basales anchamente ovado-oblongas, cordadas o subcordadas en la base. e, f. tallos erectos, ramificados a veces
teñidos de pardo o púrpura. h, i. Flores de 10-25 verticilos laxos, generalmente con tubérculo rudimentario.
Aquenios de color marrón a rojizo.
39
Figura 10. Registro fotográfico de Prunus serotina Ehrh.
Fuente: Angela Contreras, Paola Espinosa, John Bernal. a, e, g. hojas son simples, alternas, oblongo-ovadas a
lanceoladas-oblongas, de margen aserrado, de color verde lustroso y dispuestas helicoidalmente. b, c. inflorescencias
a manera de racimos de hasta 15 cm de largo y con hasta 30 flores fragantes, distribuidas irregularmente por el
raquis. f, i. Los frutos son drupas globosas o subglobosas de color rosa hasta púrpura-negras cuando maduras de 8-
10 mm de diámetro. h. crecimiento de P. serótina en el arbolado urbano.
40
6.6. Documento descriptivo con las estrategias de invasión de las especies no nativas
seleccionadas, comparando impactos ecológicos y socioeconómicos que representarían los
taxones seleccionados si se comportaran como especies invasoras en Bogotá y su área de
influencia.
Se realizó una investigación a partir de bibliografía segundaria de las estrategias de invasión
de las plantas no nativas priorizadas y los factores ambientales que facilitaron su
establecimiento y dispersión en otras regiones. Se elaboró una ficha descriptiva para cada
especie priorizada, la cual incluye el nombre de la familia botánica, algunas imágenes de la
especie, datos sobre su taxonomía, nombres comunes (reportados para Bogotá), aspectos
biológicos y ecológicos, información geográfica donde se incluye un mapa de elaboración
conjunta con el supervisor de la pasantía en el cual se representa la región de distribución
nativa y las regiones donde se reportan como invasora, características de la invasión e
impactos y por último, las medidas de control que se han implementado para cada especie
según fuentes bibliográficas y las cuales se podrían usar en Bogotá en caso de que estas éstas
lleguen a ser invasoras en un futuro cercano.
A continuación se presentan las fichas descriptivas de las 10 especies priorizadas:
41
FAMILIA APIACEAE
Conium maculatum L.
Figura 11. Forma de crecimiento y características de C. maculatum. Fuente: Ángela Contreras, Paola Espinosa, José A. Muñoz
Descripción
Hierba erecta con olor fétido o cremoso cuando se
aplasta; con tallos huecos, estriados de hasta 2
metros de altura, de color verde claro con tintes
morados particularmente hacia la base y cubierto
por un polvo blanquecino, hojas compuestas de hasta 5 cm de largo, ubicadas de forma alterna,
de verde más claro por el envés, hojas triangulares, biocuadripinnadas, pecíolos verde claro con
manchas púrpura cuando está maduro, basalmente ensanchados y aplanados, inflorescencia a
modo umbelas compuestas, las inflorescencias laterales pueden sobrepasar a la terminal; tienen
4-8 brácteas, estrechamente triangulares y de borde acuminado; presenta numerosas flores
hermafroditas de color blanco de 2 mm de diámetro; sin sépalos, con cinco pétalos con muescas
en el ápice; el fruto presenta dos semillas, es semi redondo de color café oscuro y ligeramente
aplastado con 5 costillas delgadas de color café claro, a menudo crenulado. (CABI, 2018;
Fuentes, 2011, Herrera, 2016).
TAXONOMÍA
Orden Apiales
Familia Apiaceae
N. científico Conium maculatum L.
Nombres comunes Cicuta, Apio de monte
(JBB, 2018b)
Usos reportados Ornamentales y
Culturales (JBB, 2018b).
42
Información geográfica
Conium maculatum L. es nativa del Mediterráneo (Wu, 2007; Nieto-Feliner et. al., 2003) y se
distribuye por toda Europa, Macaronesia, África tropical, sur de África, oeste, centro y este de
Asia, Australasia, Norteamérica (excepto América subártica), Centroamérica, El Caribe, oeste y
sur de Suramérica y Brasil (GBIF, 2018).
Esta reportado como invasor en 19 países: Argentina, Australia, Brasil, Chile, China, Corea
del Sur, Costa Rica, Ecuador, Estados Federados de Micronesia, Estados Unidos, Guatemala,
Honduras, Japón, México, Nueva Zelanda, Perú, Rusia, Ucrania, Uruguay (ISSG, 2017; CABI,
2018; USDA, 2018b; Swearingen, J., C. Bargeron. 2016; Herrera, 2016; Fuentes, et al., 2014;
Axmacher, J & Song, 2013)
Figura 12. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. maculatum en el mundo
(Elaborado por José A. Muñoz).
En Colombia se encuentra reportada como establecida, presente en la región de los Andes en los
departamentos de Nariño, Cauca, Cundinamarca, Antioquia, Boyacá y Santander entre los 1.500
y 3.000 metros de altitud (Bernal et. al., 2015; SiB Colombia, 2018).
En Bogotá es común verla crecer en lugares húmedos y con algún tipo de disturbio como bordes
de quebradas en la zona urbana, humedales, orillas de carretera y en potreros. En el área rural y
en algunas zonas del casco urbano se puede encontrar sembrada cerca de las casas.
43
Características biológicas y ecológicas
Un individuo de Conium maculatum L. puede producir hasta 38.000 semillas durante todo su
ciclo de vida, éstas suelen caer directamente al suelo pues no tienen estructuras que le permitan
dispersarse fácilmente por anemocora y suelen estar maduras hacia Julio y el periodo de
dispersión puede darse entre los últimos y los primeros meses del año. Las semillas pueden
permanecer viables hasta por dos años y logran germinar en completa oscuridad; la temperatura
óptima para ello suele estar entre los 17°C y los 28°C. Este proceso de germinación activado por
perturbaciones antropogénicas sobre el lugar, más aún si éste es sombrío, húmedo y si el suelo es
rico en nitrógeno. Al presentar un periodo tan amplio de dispersión y al verse influenciado por
condiciones abióticas, esta especie puede establecerse en distintas épocas del año y colonizar
rápidamente la zona donde esté creciendo (Fuentes et al., 2014; Herrera, 2016; López, 1999;
Vetter, 2004).
Por otro lado, esta especie presenta ocho alcaloides de piperidina, entre los cuáles, algunos de
estos son los responsables de la toxicidad de la planta; γ-Coniceina es el alcaloide que predomina
en la etapa vegetal temprana del crecimiento y es la precursora de los demás alcaloides, el nivel
de estos alcaloides en la planta depende de las condiciones ambientales y la época del año
(Woodard, 2008). El nivel de toxicidad de la cicuta se va reduciendo al secarse, sin embargo, la
semilla mantiene el mismo nivel siempre y cuando la cáscara se mantenga intacta.
Características de la invasión e impactos
Se conoce que esta especie fue introducida a Norteamérica por su valor ornamental en tiempos
de la Colonia (López et. al. 1999; Vetter, 2004). Para el caso de Colombia, el tipo introducción
de C. maculatum fue también al parecer voluntario, pero no se tiene certeza si el motivo fue
ornamental o fue traída al país por sus aplicaciones medicinales (García-Barriga, 1992; Pérez-
Arbeláez, 1978).
Existen estudios que demuestran que la ventaja competitiva temprana de esta especie en
ambientes húmedos y alterados es una de sus estrategias de invasión más fuertes, asociado,
además, a sus efectos alelopáticos por su elevado contenido de alcaloides, los cuales logran
inhibir el crecimiento y reproducción de especies nativas o establecidas previamente, teniendo un
impacto significativo en las coberturas vegetales del lugar y su fauna asociada (Hillman, 1997;
44
Andrew, 2001). Como se comentó, la toxicidad de esta planta se debe a su elevado contenido de
alcaloides e históricamente se le ha asociado con casos de envenenamiento en humanos y en
ganado (Panter et al., 2012). En la antigua Grecia, su extracto era administrado a menudo a
criminales o presos político, y se cree que el famoso filósofo Sócrates fue obligado a beberlo
(Vetter, 2004). En Colombia, es una de las plantas más frecuentes rastreadas en el contenido
gástrico de las personas que fallecen por suicidio y también se ha registrado en la escena de los
hechos o en cercanías, preparada en infusión (Fernández-Alonso, et.al., 2007).
Las semillas presentan altos niveles de toxicidad y pueden contaminar el alimento de aves de
corral o el forraje con que alimentan al ganado, igualmente se considera tóxica para la piel y el
sistema respiratorio (Pokorny, 2018); los efectos que se generan al consumirla son los mismos
para todas las especies: estimulación inicial (nerviosismo), micción frecuente o defecación,
visión alterada temporalmente, pulsaciones rápidas, debilidad muscular, incoordinación seguido
de depresión, ataxia, recumbencia, colapso e incluso muerte por insuficiencias respiratorias
(Panter et al., 2012). Es por esta razón que unos de los principales impactos asociados a eventos
de invasión por C. maculatum son sus efectos en la salud, relacionadas en su mayoría a su
consumo tanto por humanos como por animales. Esta planta es un potencial agente teratogénico
capaz de producir efectos congénitos en el ganado, desde inducir el aborto hasta generar
malformaciones en las crías que en muchos casos desencadenan la muerte temprana del
individuo, derivando a la vez en importantes impactos económicos. El ganado vacuno es el más
afectado seguido por las ovejas y los cerdos (Eckell, 1965; Woodard, 2008).
Por otro lado, C. maculatum también es conocida por ser una especie vectora, es decir, tiene la
capacidad de transportar otros organismos invasores con serios impactos ambientales y
socioeconómicos. En Estados Unidos, por ejemplo, se le ha encontrado relacionada con el
pulgón Hyadaphis foeniculi, un insecto reportado a la vez, como vector del virus de la zanahoria
(Poyviridae: Potyvirus) y Nucleorhabdovirus spp. (Rhabdoviridae), patógeno que es capaz de
deteriorar cultivos de cilantro, apio, perejil y zanahoria. También puede albergar a Xylella
fastidiosa, una bacteria que afecta una gran variedad de especies de consumo humano, como el
café (Allen,2013; Coll et. al., 2000)
45
Medidas de control
Para controlar la cicuta dentro de un espacio determinado es necesario mapear o monitorear las
áreas en donde se encuentra la especie actualmente, haciendo una revisión de las plantas
recientemente establecidas para evitar que las semillas tengan la capacidad de germinar, evitando
al máximo la perturbación en el suelo, ya que este evento favorece su crecimiento. (Pokorny,
2018). Las medidas de control para esta especie deben tener en cuenta la viabilidad de sus
semillas y su potencial alelopático; su corte parcial pero la no eliminación de la planta puede
generar problemas a largo plazo, pues puede facilitar incluso su dispersión; igualmente al ser
favorecida por espacios alterados, su remoción mecánica debe ser integral y constante a través
del tiempo, con el objetivo de ir reduciendo progresivamente el banco de semillas. (Hillman,
1997). Una de las mejores maneras de contener la población de la especie es rociar los bordes del
área con herbicidas; esta contención debe ser un compromiso a largo plazo debido a que de esta
manera no se está eliminando o reduciendo la población, simplemente se está delimitando, algo
que permitiría un control sobre la especie. También se aconseja erradicar las nuevas
infestaciones por cada una de las plantas, preferiblemente antes de que pueda generar semillas
utilizando un herbicida de aplicación directa (Pokorny, 2018).
Específicamente, se han reportado las siguientes medidas de control:
Control Biológico: Es una de las medidas de control sobre la especie más nombrada y
probada en países como Estados Unidos donde se ha utilizado un agente de control
biológico para reducir el impacto de esta especie; el uso de la polilla Agonopterix
alstroemeriana (Oecophoridae) ha sido reconocido y permite detener el crecimiento y
producción de semillas a partir de la defoliación y el uso de C. maculatum como la única
planta huésped de esta polilla; este insecto se alimenta de la mayoría de la planta (follaje,
brotes, semillas inmaduras, tallos y flores) y en escenarios donde la planta es atacada por
varios cientos de larvas, esta puede ser defoliada (Hillman, 1997; Pokorny, 2018). Sin
embargo, no hay estudios concretos que evalué esta estrategia en países tropicales como
Colombia y sus posibles efectos secundarios sobre los ecosistemas.
Control químico: El uso de herbicidas es otro de los mecanismos de control de Conium
maculatum L. Herbicidas como el Sulfonilurea, clorsulfuron y metsulfuron han
proporcionado un control sobre la especie posterior y después de su aparición. Los
46
herbicidas fenoxi, como son el 2,4-D, MCPA y el glifosato también han sido utilizados
para este fin y se recomienda rociarlos después de que suceda la emergencia. Sin
embargo, en el caso del glifosato al no ser selectivo, puede afectar considerablemente
otras especies tanto de flora como de fauna, problemática que ha sido ampliamente
estudiada a nivel mundial. Después de reducir la población de la cicuta se aconseja
implementar un adecuado manejo, fertilización y proceso de riego evitando que se
regenere y promoviendo el crecimiento de las especies deseadas (Pokorny, 2018)
Control mecánico: Este tipo de control es empleado especialmente en cultivos, en donde
la labranza o el cultivo continuo evitan que la cicuta pueda establecerse en el lugar. En
algunos casos se recomienda las siegas repetidas que pueden eliminar la planta, agotar la
reserva de energía de carbohidratos en la raíz principal, previniendo así la producción de
semillas y reduciendo la capacidad de competencia de la especie. No se recomienda la
quema de cultivos para acabar con la especie ya que no se conoce claramente su
comportamiento ecológico respecto al fuego (Pokorny, 2018)
Control integrado: El control a partir de una gestión integrada de distintas técnicas no
ha sido utilizado para la especie Conium maculatum L, sin embargo, este tipo de
gestiones que integran distintas modalidades de control suelen ser beneficiosas dado que
presionan a la planta desde distintos puntos, debilitando su competitividad y resistencia.
Promoviendo que especies que estaban presentes anteriormente recuperen su espacio,
pero este tipo de control debe ser parte de un seguimiento constante que proporciona un
control sobre la especie invasora (Pokorny, 2018)
Una eventual invasión de esta especie en el Distrito Capital, supondría importantes impactos
socioeconómicos especialmente en áreas periurbanas y rurales con vocación agropecuaria por las
características ya descritas. Sin embargo, ésta es una especie identificada como tóxica por gran
parte de la población de estas zonas, lo que facilitaría estrategias de sensibilización y actuación
para el control y manejo integrado de la planta con un enfoque preventivo (reconocimiento y
prevención de los potenciales impactos de salud pública).
47
FAMILIA ARALIACEAE
Hedera helix L.
Figura 13. Forma de crecimiento y características de H. helix.
Fuente: Ángela Contreras, Paola Espinosa, José A. Muñoz
Descripción
Planta leñosa, perenne, escasa a densamente
pilosa; con un tallo largo que puede estar
arrastrándose o trepando a modo de
enredadera, alcanzando los 30 metros, de color
verde a rojo violáceo. El tallo está unido al sustrato por raíces adventicias presentes en los
nodos de las hojas que tienen micorrizas vesiculares-arbusculares. Las hojas miden hasta 8
cm de ancho, con olor fuerte al macerarse, de color verde oscuro brillante, heterofilias y en
su mayoría palmeadas, cordiformes o astadas en tallos con 5-7 lóbulos estériles, nervios
verdosos o blanquecinos, peciolo de color verde pardusco a rojizo. Flores de color amarillo
verdoso de 5-7 mm de ancho, agrupadas en inflorescencias a modo de umbelas con 12-29
flores, con pétalos deltoides y estambres con filamentos de color verde amarillento, fruto a
manera de drupa de color verde violáceo con 2-5 semillas (CABI, 2018; Nieto-Feliner et.
al., 2003; Sankaran, 2013).
TAXONOMIA
Orden Apiales
Familia Araliaceae
N. científico Hedera helix L.
Nombres comunes Hiedra, Hiedra miami,
Hiedra uña de gato, Yedra
(JBB, 2018b)
Usos reportados Ornamental (JBB, 2018b)
48
Información geográfica
Es nativa de Europa (Bernal et. al., 2015), se distribuye en África, oeste, centro y este de
Asia, China, Indo-China, Australasia, Pacífico, Norteamérica (excepto América subártica),
Centroamérica, oeste y sur de Suramérica y Brasil (GBIF, 2018).
Esta reportado como invasora en 17 países: Argentina, Australia, Brasil, Bután, Canadá,
Chile, Dinamarca, Estados Unidos, Francia (Sólo territorio de ultramar de la Polinesia
Francesa y Nueva Caledonia), Georgia, Japón, México, Nueva Zelanda, Rusia, Singapur,
Sudáfrica, Vietnam(ISSG, 2017, ISSG, 2014; CABI, 2018; USDA, 2018; Swearingen, J.,
C. Bargeron. 2016; USDA, 2018b; Sankaran, K.V & Suresh, T 2013;s.a., 2018; Henderson,
2001; Space, 2008).
Figura 14. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de H. helix en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
En Colombia se encuentra reportada como cultivada, presente en Nariño, Caldas, Antioquia
y Cundinamarca (SiB, 2018; Bernal et. al. 2015). En Bogotá es ampliamente cultivada
como planta ornamental y es muy común observarla en jardineras, separadores de avenidas,
andenes, trepando muros y en humedales. En estos últimos ya se reporta su establecimiento
(Díaz-Espinoza et al. 2012).
49
Características biológicas y ecológicas
Se le facilita crecer en lugares húmedos con sombra parcial y total, aunque también puede
sobrevivir en pleno sol. Hedera helix L. es capaz de soportar distintos terrenos, pero
prefiere suelos drenados de pH mayor a 4, puede tolerar sequías; la planta se puede
propagar vegetativamente o por semillas que son dispersadas por aves. Las flores son
polinizadas por gran variedad de insectos, además de esto las raíces tienen micorrizas que
permiten una dispersión muy rápida (CABI, 2018; Mora et al, 2016). La especie suele
atravesar distintos cambios en su desarrollo durante las fases juveniles y en la adulta, entre
éstos, cambio en la morfología de sus hojas; al parecer relacionados con la reducción de
ácido giberélico causado por la ausencia de raíces abundantes, generando un cambio entre
estas etapas de la especie. En su etapa juvenil presenta raicillas adventicias ubicadas en los
nódulos de las hojas, en el tallo; estas raicillas permiten que la planta pueda trepar por los
árboles, paredes, cercas, entre otras estructuras. Además, pese a que se sostiene de la
corteza de los árboles, no se conecta con el xilema o el floema para adquirir nutrientes, por
lo tanto, no puede ser considerada como una especie parásita; por otro lado en su etapa
adulta tiene tallos erectos, leñosos y no trepadores que se forman a modo de arbusto; sus
tallos resistentes y gruesos la han hecho considerar un tipo de liana. La dispersión de las
semillas es comúnmente a través de aves (ornitocoria), aunque las semillas son un 70%
viables, necesitan una escarificación de la capa de la semilla para poder germinar; este
proceso ocurre cuando las aves consumen las bayas, se elimina la pulpa y pasa la semilla a
través del tracto digestivo. El tiempo residual que dura la semilla dentro del estómago de
las aves es relativamente corto para que las semillas sean consideradas viables cuando se
liberan. Por otro lado, las bayas de hiedra son ligeramente tóxicas, el nivel de toxicidad va
cambiando de acuerdo a la maduración de la semilla (Okerman, 2000).
Características de la invasión e impactos
Esta especie fue introducida a Norteamérica voluntariamente con fines ornamentales desde
la época colonial, se cree que su invasión es reciente entre 1940 y 1970 (Zotz, 2006). Es
también probable que se haya introducido a Colombia deliberadamente con el mismo
propósito (Pérez-Arbeláez, 1978).
50
La hiedra es una especie trepadora muy elástica que cuando se establece en un nuevo
terreno suele extenderse por el suelo para luego trepar los árboles hasta el dosel, donde
suele florecer y generar frutos libremente, sin embargo, en algunos casos logra sofocar la
otra planta y provocar su muerte con el tiempo (inhibe la formación de hojas en el
individuo arborescente). Tiene gran éxito en colonizar nuevas áreas a partir de pocos
individuos, amenazando todos los niveles de vegetación de zonas cerradas y abiertas, al
formar poblaciones densas a nivel del suelo y puede aumentar los niveles de nitrógeno por
la acumulación de hojarasca, lo que reprime la regeneración de especies nativas reduciendo
la diversidad de plantas y fauna nativas de la zona(Mora et. al, 2016, Sankaran & Suresh, T,
2013).Actualmente se discute sobre sus posibles beneficios de en el ecosistema, al proteger
los suelos de las heladas, apoyar estructuralmente a vegetación arbórea y proveer de
alimento a mamíferos y aves (Okerman, 2000).
Entre los impactos a la salud pública relacionados con esta planta se han documentado
casos de dermatitis desde finales del siglo XIX. La hiedra presenta dos sensibilizadores
poliacetilenos moderados, falcarinol y didehidro falcarinol, presentes en las hojas, tallos y
raíz; los poliacetilenos son un grupo de compuestos químicamente reactivos y
biológicamente activos que están presentes en algunas plantas, hongos, invertebrados
marinos y microorganismos. Los Poliacetilenos se encuentran en familias como Apiaceae y
Araliaceae, funcionan como antimicótico o compuestos preinfecciosos en las plantas.
Aunque ambos compuestos químicos están presentes durante todo el año, sus niveles
pueden variar de acuerdo a condiciones climáticas; en los estudios por alergias se
demostrarón que el falcarinol es el sensibilizador más fuerte de los dos, por lo tanto es el
que genera la alergia por contacto, afectando principalmente manos y antebrazos de las
personas en los casos de poda de la planta. Además de esto la Hiedra también presenta un
10% de sapopinas como son α y β-hederina, un fuerte irritante de las superficies mucosas
de garganta y nariz (Paulsen et.al., 2010)
51
Medidas de control
Su rápido y continuo crecimiento, su adaptabilidad a distintas condiciones de luz y tipos de
suelo, su capacidad de crecer sobre estructuras y otras plantas, hacen de la hiedra una
especie con potencial invasor capaz de colonizar espacios perturbados. Se han propuesto
diversas estrategias para su control y/o erradicación, sin embargo, aún no existe un método
que lo garantice totalmente (Okerman, 2000).
Control Químico: La presencia de una cutícula cerosa en Hedera helix L permite
que tenga una alta resistencia a los herbicidas; la aplicación de varios de estos
compuestos químicos postemergencia ha demostrado ser efectiva aunque su total
éxito depende de la edad y madurez de la planta.La absorción del herbicida es más
eficaz en plantas jóvenes que en plantas maduras. Weedar 64 (2,4-D amina) ha
demostrado que puede controlar a la especie en dos aplicaciones, sin embargo
después de dos años y sin ser tratadas las poblaciones adyacentes, se restableció
elcrecimiento (Binggeli, 2005; Okerman, 2000)
Control mecánico: El corte y poda continua de los individuos es una medida
efectiva; si el tallo es muy grueso para cortarlo se puede desprender la corteza,
cortar la zona expuesta y aplicar un herbicida que conllevaría a costos económicos.
También se aconseja arrancar toda la planta del suelo; no se puede ignorar ningún
corredor donde esté presente la especie ya que de un solo tallo puede generarse una
nueva invasión. Otro método físico utilizado es la quema de los individuos, se
utiliza con el fin de impedir que la especie pueda reproducirse sexualmente. Para
este último es importante mantener intactas las propiedades del suelo, pues una
perturbación de este tipo puede promover el establecimiento de otras especies con
potencial invasor. De igual forma, según sea el caso, se aconseja que luego de estas
actividades se desarrollen procesos de restauración ecológica (Binggeli, 2005;
Okerman, 2000)
Control biológico: No se conocen estudios concretos sobre estrategias efectivas de
biocontrol para enfrentar eventos de invasión por Hedera helix L. Aunque se conoce
que el hongo Phoma hedericola ha estado causando daños a esta planta en países
como Italia y puede ser un candidato para utilizarse como control biológico. Sin
52
embargo se sabe que para introducir un organismos que pueda afectar a la población
de la hiedra se debe aplicar esta estrategia en poblaciones con elevado número de
individuos, lo cual debe tener en cuenta los daños al hábitat adyacente a futuro y
también el amplio uso de esta especie como ornamental lo que de alguna manera
podría suponer que la especie se mantiene controlada (Okerman, 2000)
El éxito de un método de control de una especie invasora depende del número de
individuos y de la escala a la que se requiera hacer la actividad. Dado que esta especie es
ampliamente utilizada como ornamental en Bogotá, en el caso de una eventual invasión
biológica por H. helix el mecanismo de control más adecuado sería la mecánica sin que
conlleve a efectos secundarios sobre la vegetación adyacente ni a grandes inversiones
económicas. Sin embargo, es importante desarrollar estrategias de sensibilización y
educación ciudadana dirigidos a gestionar la presión por propágulos y evitar que los
individuos escapen de cultivo hacia zonas naturales y seminaturales.
53
FAMILIA ASTERACEAE
Conyza bonariensisL.
Figura 15. Forma de crecimiento y características de C. bonariensis.
Fuente: Paola Espinosa, Ángela Contreras, José A. Muñoz
Descripción
Hierba anual, muy ramificada, de hasta 1 m
de altura, raíz principal pivotante, tallos
erectos, cilíndricos presentandopubescencia
blanquecina en toda su longitud, a veces
glabrescentes. Hojas simples, rara vez proximales 1-2 pinnatisectas desde la parte media de
la lámina hasta el ápice, alternas, sésiles,, hojas inferiores generalmente con base atenuada
y margen dentado,las superficies con frecuencia presentan indumento piloso especialmente
en las nervaduras abaxialmente; capítulos dispuestos en panículas generalmente
terminales,pedúnculos de hasta 2 cm de longitud, brácteas lanceoladas, cabezuelas
generalmente grandes, hasta con 250 flores; involucro urceolado cuando inmaduro, la base
redondeada; corola filiforme-tubular amarilla; filarios lineares, verdes, de ápice violeta y
dorso piloso; flósculos externos, pistilados, blanco-verdosos que sobresalen del involucro;
TAXONOMIA
Orden Asterales
Familia Asteraceae
N. científico Conyza bonariensis L.
Nombres comunes Venadillo (JBB, 2018b)
Usos reportados Medicinal(JBB, 2018b)
54
papus fibroso, alargado y blanco; pocos flósculos centrales (ca. de 20) hermafroditas;
anteras amarillas claro. Aquenios comprimidos, obcónicos y de color amarillo claro o
crema(Fuentes, 2011; Flora Mesoamericana, 2018).
Información geográfica
Conyza bonariensisL., es originaria de Suramérica (Meneguzzi, 2008; USDA, 2018c),
siendo descrita por primera vez en Argentina (Wu, 2007). Es una especie de amplia
distribución mundial, se encuentra además en Europa, África, oeste y centro de Asia,
Subcontinente indio, China, este de Asia, Papuasia, Malasia, Australasia, Pacífico y
Norteamérica(GBIF, 2018).
Esta especie se encuentra reportada como invasora en 30 países: Albania, Australia,
China, Croacia, Egipto, España, Estados Unidos, Francia, Grecia, India, Israel, Italia,
Jamaica, Japón, Malta, México, Nueva Zelanda, Países bajos, Palestina, Portugal
(incluyendo Islas Azores), República Checa, Siria, Sudáfrica, Taiwán, Trinidad y Tobago,
Bosnia y Herzegovina, Eslovenia, Macedonia, Montenegro, Serbia (CABI, 2018; Atlas-
USA, 2018; Elorza, S. et al. 2004; Inv. Portugal, 2018; Axmacher, J. &Sang, W. 2013).
Figura 16. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. bonariensis en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
55
En Colombia se distribuye en los departamentos de Amazonas, Antioquia, Boyacá, Caldas,
Casanare, Cauca, Cesar, Chocó, Cundinamarca, Guainía, La Guajira, Huila, Magdalena,
Meta, Nariño, Norte de Santander, Putumayo, Quindío, Risaralda, Santander, Tolima
yValle en altitudes de hasta 3.900 metros (SIB Colombia, 2018; Bernal et. al., 2015). En
Bogotá es común observarla creciendo en potreros, andenes, bordes de camino y en otras
áreas disturbadas.
Características biológicas y ecológicas
Dado su carácter adventicio, es probable que su llegada al país haya sido de forma
involuntaria, sin embargo, no se tienen indicios de cuál fue el vector de su introducción.
C. bonariensisposee unaalta producción de semillas, con eficiente capacidad de
dispersión,puede germinar bajo una amplia gama de condiciones ambientales y puede
tolerar condiciones climáticas adversas.La propagación de esta especie. se lleva a cabo
únicamente por semillas, las cuales son autofecundadas y polinizadas por insectos; en
promedio esta especie produce 400 semillas por flor, sin embargo la distancia de dispersión
y la cantidad de semillas producidas depende de la altura de la planta, siendo proporcional
la altura a el número de semillas producidas.Las semillasse pueden dispersar por
anemocoria, hidrocoria y por las actividades antropogénicas durante la cosecha y el
transporte de especies cultivadas (Bajwaet al. 2016).
El rango de temperatura para lagerminación de las semillas según varios estudios va desde
10a 20°C, propio de una especie subtropical; C. bonariensises además, fotoblástica, por
ende la germinación bajo la luz es muy eficaz. En épocas frías y secas,esta especietiene
condiciones ecológicas favorables, las raíces de la planta crecen rápidamente hasta 35cm de
profundidad (aprox.), lo que le permite absorber el agua disponiblepara sobrevivir a las
condiciones de sequía y establecerse en el suelo durante todo el año, afectando así la
supervivencia de otras especies(Wu, 2007; Trezzi, 2014).
56
Características de la invasión e impactos
Conyza bonariensis L.interfiere con la producción de cultivos bien sea por la competencia
de recursos, la alelopatía o por su papel como hospedero de plagas de cultivos. Al formar
rodales densos esta especie puede interrumpir la función de los sistemas de irrigación por
goteo y rociadores de bajo volumen, el impacto invasivo hasta ahora conocido es severo ya
que la ecología de esta especiele permite sobrevivir en todo tipo de ambientes (Bajwaet al.
2016).
C. bonariensises altamente alelopático y, por lo tanto, llega a reprimir el crecimiento y el
desarrollo de los cultivos y deotras especies nativas mediante la liberación de potentes
aleloquímicos. Algunos estudios también han cuantificado la supresión alelopática de
diferentes cultivos agronómicos y hortícolas causado por esta especie. Sin embargo, la
contribución de dicha característica a su capacidad de invasión e interferencia no es del
todo clara debido a la falta de estudios de campo específicos (Wu, 2007; Trezzi, 2014).
Se sabe que C. bonariensis y C. canadensis se encuentran entre las arvenses más
competitivas en los sistemas de cultivo. Estos son los peores problemas en la conservación
y los sistemas de labranza reducida debido al desarrollo a largo plazo del banco de semillas
en el suelo y a la menor perturbación mecánica del sustrato. Numerosas cosechas de
cereales, leguminosas, forrajes, frutas y vegetales han sido infestadas por estas dos especies
en diferentes partes del mundo. Es importante mencionar que C. bonariensises una planta
hospedera de insectos patógenos para los cultivos, pues éstos organismos utilizan como
anfitriones principales a esta especie para la multiplicación y luego atacar el cultivo,
facilitando los eventos de colonización e invasión biológica en zonas agropecuarias
(Bajwaet al. 2016; Trezzi, 2014).
Medidas de control
El manejo y control de Conyza bonariensis L. ha sido estudiado principalmente para
agricultura. Dadas las dificultades que presenta su manejo en sistemas de cultivo, debido a
sus características de dispersión y resistencia, han sido desarrolladas varias estrategias, que
57
pueden ser clasificadas en aquellas de tipo cultural (control mecánico) y las de tipo químico
(Bajwa, et. al., 2016).
Control mecánico: Uno de los factores que facilitan la propagación de C.
bonariensisen los cultivos es la labranza mínima, ya que en los sistemas en los que
se incluyen diferentes acciones de tipo mecánico tales como el deshierbe manual, la
rotación de cultivos, la implementación de coberturas con mantillo y la solarización
del suelo, han mostrado efectividad tanto en el control como la erradicación de esta
especie (Bajwa, et. al, 2016).
Así mismo, otras estrategias de tipo cultural que contribuyen a la reducción de las
densidades poblacionales de Conyza bonariensis L., son aquellas relativas a la
competencia de cultivo, principalmente de cereales (trigo, soya y avena), en las
cuales el efecto competitivo se evidencia en la pérdida de altura y biomasa foliar. El
empleo de tratamientos alelopáticos con extractos de nogal negro (Juglans nigra) y
almendro (Prunus dulcis), han demostrado efectividad inhibiendo la germinación.
Para el caso del nogal negro, el extracto es comercializado bajo el nombre de
NatureCur®, y el grado de eficiencia de su acción depende de los niveles de
concentración con que se lo utilice (Bajwa, et. al, 2016).Sin embargo no todas las
prácticas de labranza han demostrado eficacia, como es el caso del corte o siega,
pues al contrario estimulan el crecimiento por ramificación.
Control químico: El manejo químico se lleva a cabo empleando herbicidas con
diferentes elementos activos, siendo los más usados: metasufuron, clorosulfuron
(Wu et. al., 2010), atrazina y picloram, MCPA, paraquat (Werth et. al., 2010), los
cuales se emplean en diversas combinaciones ya sea entre estos y/o con otros
agentes, y en diferentes momentos de la siembra (antes, durante y después). De las
dificultades que presenta el control químico, es la resistencia que puede desarrollar
la especie al utilizarse un solo herbicida (Bajwa, et. al, 2016; Walker, et. al, 2012),
sumado a factores ambientales y de manejo de los sistemas de cultivo.
58
Dadas las dificultades reconocidas para el manejo de estas especies, los autores consultados
proponen la implementación del manejo integrado que combine estrategias mecánicas y
químicas. Dado que para el control de Conyza bonariensis(Savi) Ten.Los estudios refieren
especialmente a sistemas agrícolas, y como uno de los factores a tener en cuenta es el grado
de labranza y teniendo en cuenta las características socioambientales dela sabana de Bogotá
y en el marco de procesos de restauración ecológica, se sugiere tener en cuenta la
caracterización biofísica de las áreas que sean sujeto de intervención, para de esta manera
adaptar el modelo más apropiado de manejo integrado.
Cirsiumvulgare(Savi) Ten.
Figura 17. Forma de crecimiento y características de C. vulgare.
Fuente: Ángela Contreras, Paola Espinosa, José A. Muñoz
Descripción
Es una hierba anual o bianual, con tallo
erecto de hasta 2 metros de altura puede ser
alado o perfoliado, cilíndrico, aristado de
color verde claro hasta verde violáceo en la
base, presenta un indumento de pelos
simples blanquecinos, siendo más
TAXONOMÍA
Orden Asterales
Familia Asteraceae
N. científico Cirisumvulgare(Savi) Ten.
Nombres comunes Cardo, Cardo mariano (JBB,
2018b)
Usos reportados Agroecológico, medicinal
(JBB, 2018b).
59
abundante en partes jóvenes, Las hojas jóvenes y basales son arrosetadas, posteriormente se
encuentran ubicadas de forma alterna y miden entre 10-20 cm de largo; con haz provisto de
espinas rígidas y con pelos pluricelulares en los nervios, el envés es glabro o arenoso-
tomentoso, cabezuelas rara vez solitarias, agrupadas en los extremos de las ramas siendo
muy vistosas; Flores hermafroditas, puede presentar entre 150 a 250 flores, corolas de color
lila, anteras rosadas; fruto de tipo aquenio oblongo a elíptico de 3 a 5 mm de largo de color
amarillento, presenta un papus de pelos plumosos de color blanco (Herrera, 2016; Fuentes,
2011; Talavera, 2018).
Información geográfica
Es nativa de Europa, Oeste de Asia y Norte de África (Lozano y Castrillón, 1975).Se
encuentra distribuida en toda Europa, Macaronesia, África tropical, Sur de África, Cáucaso,
China, Asia oriental, Asia central, Subcontinente Indio, Papuasia, Australasia, Pacifico,
Norteamérica, Oeste de Suramérica, Brasil y Sur de Suramérica (GBIF, 2018).
Tiene reportes de invasión en 29 países: Argentina, Australia, Bolivia, Brasil, Burundi,
Canadá, Chile (incluyendo Isla de Pascua), Costa Rica, Ecuador, Estados Unidos, Etiopía,
Francia (Sólo territorio de ultramar de Isla de Amsterdam, Isla Reunión y Nueva
Caledonia), Guatemala, Hungría, Italia, Japón, Kenia, México, Nueva Zelanda, Paraguay,
Perú, Polonia, Ruanda, Rusia, Suazilandia, Sudáfrica, Tanzania, Uganda, Uruguay (ISSG,
2017; ISSG, 2014; CABI, 2018; USDA, 2018; USDA, 2018b; Swearingen, J., C. Bargeron.
2016; Herrera, 2016; Fuentes, et al., 2014; Henderson, 2001; s.a., 2018; Witt, A., Luke, Q,
2017; Space, 2008).
60
Figura 18. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de C. vulgare en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
En Colombia se reporta como cultivada entre los 2.500 y 3.500 metros de altitud, en los
departamentos Cundinamarca, Nariño y Quindío. (SiB, 2018;Bernal et. al. 2015), pero es
probable que se encuentre de manera subespontánea o adventicia en otras partes del país.
En Bogotá es frecuente observarla creciendo en cercanías a quebradas, en humedales donde
ya se está estableciendo (Díaz-Espinoza et al. 2012), potreros, orillas de caminos, zonas de
explotación minera, andenes y diversos sitios con algún tipo de disturbio.
Características biológicas y ecológicas
C. vulgare se reproduce a partir de semillas que son dispersadas por el viento
principalmente (anemocoria), las flores suelen marchitarse rápidamente y no maduran
sincrónicamente, dejando a la vista el papusque al estar expuestas al viento, las semillas
pueden ser dispersadas de forma anemocoria. Cada individuo puede generar desde 4.000
hasta incluso 38.000 semillas (Drewitz, 2014; Orr et. al., 2013). Las semillas permanecen
viables por varios años hasta estar en un ambiente favorable para germinar; las plántulas
generan un buen número de raíces principales que les permiten establecerse, siguiendo el
crecimiento de la roseta y por último el vertical, suele florecer normalmente en el segundo
61
año. No existen antecedentes de reproducción vegetativa (Michaux, 1989; Zimmermann,
1991).
Esta especie suele crecer en espacios perturbados y poco cuidados, preferiblemente en
suelos ricos en nitrógeno con humedad moderada; las perturbaciones generadas por el
hombre y el fuego favorecen su establecimiento y desarrollo. No es muy resistente a
temporadas de sequía y se le dificulta desarrollarse en zonas con mucha sombra; además, C.
vulgare posee ácidos fenólicos queinhiben el crecimiento y desarrollo de las plantas
adyacentes (alelopatía), sirviendo como estrategia de colonización, igualmente presenta una
gran cantidad de espinas que utiliza como defensa contra la herbivoría(Kok& Gassmann,
2002; Michaux, 1989; Zimmermann, 1991).
Se conoce de la interacción de Cirsiumvulgare (Savi) Ten con laabeja melífera (Apis
mellifera), abejorros (Bombusspp.), algunos adultos del orden Lepidoptera, orden
Hemynoptera (Leioproctusspp.) que pueden actuar como polinizadores (Kok&Gassmann,
2002; Michaux, 1989; Zimmermann, 1991).
Características de la invasión e impactos
Su introducción al continente americano al parecer fue accidental, se cree que ingresó a
Norteamérica como contaminante de semillas en el siglo XIX (Klein, 2011). Para Colombia
no es clara su ruta de introducción, Bernal et al. (2015) registran esta especie como
cultivada, lo que quizá indique que ingresó al país de manera voluntaria.
Esta especie se encuentra normalmente en pastizales y bosques, también puede presentarse
en áreas recién taladas donde se beneficia de la baja resistencia de otras plantas para
colonizar estos ambientes y reduce el crecimiento de plántulas de los árboles. Puede llegar
a ocasionar impactos económicos generando problemas en cultivos y afectar la calidad de
pastos,también puede afectar al ganado, impidiendo su paso, afecta su capacidad de obtener
alimento debido a que presenta una baja calidad nutricional, disminuye la calidad de la lana
y puede generarles lesiones a los animales. En algunos países, la producción de lana se ve
afectada por la presencia de aquenios del cardo, reduciendo su valor en el mercado.
Además, la capacidad de C. vulgare de ser hospedero de algunas plagas afecta los cultivos
62
a largo plazo. Sus hojas espinosas y las brácteas son responsables de transmitir
enfermedades virales a los animales como la mixomatosis y la boca costrosa.
Entre los impactos ambientales ocasionados por la especie se encuentra su capacidad por
invadir áreas perturbadas con buena entrada de luz, las plantas pueden reducir la entrada de
luz para especies más pequeñas así como el desplazamiento o pérdida de especies nativas y
eliminar recursos del suelo, además es capaz de formar matorrales densos de monocultivo,
en ocasiones puede infestar rápidamente áreas después de incendios. Puede impedir el
acceso y cuando crece en bordes de carreteras puede reducir la visibilidad elevando la
probabilidad de accidentes, siendo su erradicación de este tipo de corredores un gasto
económico importante (CABI, 2018).
Debido a sus tallos y hojas espinosas puede ocasionar dermatitis y cortes en la piel en
personas. Una población de esta especie puede arruinar áreas enteras dejándolas sin ningún
uso (CABI, 2018).
Medidas de control
Control físico: Para el caso de áreas pequeñas, los controles físicos han sido
exitosos; se recomienda cortar y eliminar las rosetas manualmente, lo cual se debe
realizar antes de la floración. Las plantas deben ser cortadas de ser posible desde la
raíz y no puede dejarse ninguna parte ya que puede volver a crecer; el corte es
efectivo si se hace en el momento antes de que florezca, sino, sólo se retrasaría la
floración; de igual forma, si se hace después, aún se podrían desarrollar semillas
viables en los capítulos florales, es por esto que un solo corte no es suficiente, deben
realizarse varios durante la temporada de crecimiento. Las actividades de labranza o
extracción a mano son exitosas siempre que se hagan antes de la época de
reproducción. Sin embargo este método de control necesita mucha mano de obra
que esté verificando constantemente el área intervenida (CABI, 2018)
Control químico: En el uso de herbicidas para el control de Cirsium vulgare(Savi)
Ten se recomienda una mezcla de distintos químicos (dicamba, MCPA, 2-4 D,
metasulfuron, clorosulfuron, etc), variando las tasas de aplicación de acuerdo a la
63
temporada del año y las condiciones ambientales, aplicándose sobre las rosetas
antes de que se desarrolle completamente la planta (CABI, 2018)
Control biológico: En Norteamérica se reportan controles biológicos con eluso de
la mosca Urophora stylata(Tephritidae); ésta pone los huevos en los capullos de las
flores cerradas, los tejidos se forman alrededor de las larvas por separado; cada
larva comienza a formarse alrededor del aquenio y la región del receptáculo
comienza a hincharse. Las larvas al madurar pasan la temporada de invierno dentro
del capullo y se impide por completo la fructificación; también se ha empleado el
gorgojo Rhinocyllus conicus (Curculionidae) en regiones templadas. Estos dos
organismos han demostrado reducir las poblaciones de C. vulgare, pero su
efectividad varía según condiciones ambientales y se desconoce su comportamiento
en ecosistemas tropicales. (CABI, 2018; Kok, 2002)
Esta planta hospeda además un variado número de coleópteros como Ceutorhynchus
trimaculatus y Trichosirocalus horridus, los cuales fueron utilizados en la misma
zona en la década de los 70’s como agentes de control biológicopara disminuir las
poblaciones de algunos cardos (Carduus spp) y posteriormente pasaron alimentarse
de C. vulgare,pero sin mostrar resultados exitosos. Sin embargo, ha sido el hongo
Sclerotinia sclerotiorum el agente que ha demostrado una mayor efectividad en la
erradicación de poblaciones de esta planta en pastizales (CABI, 2018).
En la ocurrencia de un evento de invasión por C. vulgare los métodos más recomendables
serían el control físico y el control químico; teniendo en cuenta las coberturas vegetales de
la ciudad de Bogotá, el uso de estos métodos va orientados especialmente a coberturas de
potreros y/o pastizales (segunda cobertura con mayor extensión en el Distrito Capital). La
extracción manual de la planta, el labrado de los suelos, cultivar plantas perennes y
mantener un cuidado continuo del sueloayudaría a evitar la regeneración de los individuos
de esta especie; igualmente la aplicación de un herbicida en plantas jóvenes que evite el
desarrollo puede funcionar en el control de los mismos y reducir la densidad poblacional
(CABI, 2018).
64
Sonchus oleraceus L.
Figura 19. Forma de crecimiento y características de S. oleraceus.
Fuente: Paola Espinosa, Ángela Contreras, José A. Muñoz
Descripción
Hierba anual de hasta 1 m de altura; presenta
látex blanquecino, tallos suculentos,
surcados, con vasos laticíferos, glabros, hojas
alternas, las inferiores profundamente
pinnatisectas, pecioladas, las superiores
sésiles y perfoliadas, con base ancha, de
hasta25 cm de largo, glabras por ambas caras, dentadas, membranáceas, el limbo
irregularmente pinnado, el lóbulo terminal ampliamente deltoide, dentado o entero, los
laterales oblongos u ovoides; el envés posee venación pronunciada. Capítulos florales
terminales de hasta 3 cm de diámetro subtendidos por una bráctea foliosa, raquis con
tricomas glandulares, más densamente concentrados hacia la parte terminal, involucro
acampanado de 12 mm de largo; brácteas linear-lanceoladas, glabras hasta hirsutas, las
exteriores más cortas; receptáculo plano, desnudo, cabezuelas hermafroditas, de color
amarillo, tubo filiforme, especialmente piloso, de unos 5 mm de largo; anteras con
TAXONOMIA
Orden Asterales
Familia Asteraceae
N. científico Sonchusoleraceus L.
Nombres comunes Cerraja (JBB, 2018b)
Usos reportados Alimenticio, Medicinal
(JBB, 2018b)
65
dehiscencia longitudinal, ovario ínfero; aquenios comprimidos, estrechamente ovados;
vilano constituido por numerosas aristas sedosas, blancas, de hasta 10 mm de largo
(Fuentes,et. al. 2011).
Información geográfica
Sonchus oleraceus (L.) L.es nativo de la cuenca del Mediterráneo y casi toda Europa
(Hutchinson, et al.1984; Wuet. al.,2007). Es una planta de amplia distribución, se reporta
en toda Europa, África, Asia templada (excepto Siberia), Asia tropical, Australasia,
Pacífico, Norteamérica y Suramérica (GBIF, 2018)
Esta especie está reportada como invasora en 29 países: Australia, Argentina, China,
Costa Rica, Cuba, Ecuador, Estados Unidos (incluyendo Islas Vírgenes), Filipinas, Francia
(sólo territorio de ultramar de Polinesia Francesa), India, Islas Fiji, Islas Marshall, Japón,
Mauricio, México, Estados Federados de Micronesia, Niue, Noruega, Nueva Zelanda,
Papua Nueva Guinea, Paraguay, Perú, Reino Unido (sólo el Archipiélago de Tristán de
Acuña yterritorios de ultramar de Islas Vírgenes e Islas Malvinas), Sudáfrica, Suecia,
Taiwán, Tonga, Uruguay, Vietnam. (GISD,2018; CABI, 2018; Atlas-USA, 2018; Regalado
et al. 2012; Reddy, 2008; Sekar, 2012; Axmacher&Sang, 2013).
Figura 20. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de S. oleraceus en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
66
En Colombia S. oleraceus se reporta como una hierba adventicia distribuida en los
departamentos de Antioquia, Boyacá, Cauca, Cesar, Chocó, Cundinamarca, Huila,
Magdalena, Nariño, Putumayo, Quindío, Tolima y Valle, en altitudes de hasta 3.900 m
(SIB Colombia, 2018; Bernal et. al., 2015).
En Bogotá es habitual ver esta especie en lugares con algún tipo de alteración como orillas
de caminos, potreros, andenes, separadores de avenidas, rondas de cuerpos hídricos,
además de crecer entre los cultivos en el área rural.
Características biológicas y ecológicas
S. Oleraceus es una hierba anual y ocasionalmente bienal, su reproducción se da
únicamente por semilla; por lo general un solo individuo puede producir hasta 8.000
semillas de las cuales la gran mayoría son viables. La germinación se lleva a cabo
principalmente durante épocas lluviosas y frías, debido a que ésta depende principalmente
de la cantidad de agua que haya en el suelo y no de la temperatura como sucede con otras
plantas; sin embargo, de acuerdo con Gonçalves (2007), en Brasil, en sotobosques de
Pinussp. y Eucalyptussp., se reporta que las semillas de esta especie puede prevalecer
viable por mucho tiempo en suelo seco y/o arenoso, pero en temporadas lluviosas hay cierta
dificultad para que las semillas entren en latencia y germine posteriormente. La flor se abre
en la mañana y luego se cierra y permanece cerrada durante aproximadamente una semana
mientras maduran los aquenios. Después de la maduración, la cabezuela se vuelve abrir
(hacia la tarde) y ya que la semilla posee vilano, se facilita su dispersión de manera
anemocora, sin embargo, también se puede dispersar con ayuda de las aves y del agua.
Aunque las semillas de puedan germinar tanto en luz como en oscuridad, el rendimiento se
reduce a un 50% en oscuridad. (Scott & McCarren,2010; St Jonh-Sweeting, 2011;
Widderick& Walkers,2009; Hutchinson, et al.1984).
S. Oleraceus crece en una amplia variedad de sustratos y se encuentran comúnmente en
áreas desoladas y/o con vocación agrícola, posee un rápido crecimiento, es unaespecie que
invade los sitios disturbados por el hombre (bordes de caminos, tierras cultivadas, zonas de
pastoreo, pozos de grava, áreas taladas entre otros) o por procesos naturales. Su
67
permanencia en tales sitios suele ser limitada en ausencia de alteraciones ambientales. Su
follaje espinosono disuade a los grandes herbívoros,pero las rosetas basales más o menos
postradas pueden escapar de la depredación y permitir la producción de una segunda
generación de plantas con flores en una temporada de crecimiento. Su rápido desarrollo
contribuye a la persistencia de las plantas anuales en climas que permiten hibernar en la
fase vegetativa (Hutchinson, et al.1984).
Características de invasión e impactos
S. oleraceus al parecer, llegó al continente americano de forma involuntaria durante la
conquista española de México (Hutchinson et. al. 1984). Dado su carácter adventicio en
Colombia, su introducción se dio muy probablemente de la misma manera (Bernal et. al
2015).
Según Mc Carren & Scott (2013), es una especie que genera un gran impacto en espacios
agrícolas en muchas regiones del mundo. Esto se debe principalmente a su germinación en
barbechos donde absorbe importantes cantidades de agua interfiriendo con la cosecha del
cultivo. Al ser una hierba con mayor éxito de vida en invierno, en los tiempos de sequía su
competencia por el agua con otras plantas aumenta, llegando a invadir más superficie e
impedir el crecimiento de otras especies vegetales.
S. oleraceus posee varios compuestos bioactivos como alcaloides, flavonoides, taninos,
terpenos, esteroides y fenoles; éstos últimos estrechamente relacionados con su potencial
alelopático impidiendo la germinación de semillas y crecimiento de plántulas de la
vegetación con la que compite por espacio(Gomaa, et al. 2014; Hassan, et al., 2014).
S. oleraceus es también un hospedador plagas y enfermedades de los cultivos, se destacan
las enfermedades virales como: el virus del mosaico de la sandía (WMV), virus del
mosaico de pepino (PepMV), virus del marchitamiento manchado del tomate (TSWV) y
virus del mosaico de la alfalfa (AMV). Cuando se encuentra en su etapa de roseta facilita el
hospedaje a nemátodos, el principal conocido es el nematodo Radopholussimilis; así mismo
esta especie es hospedera de la mosca blanca de ricino (Trialeurodesricini), mosca blanca
de Bemisia, gusano de algodón (Helicoverpaarmigera). También es probable que sea un
68
huésped importante del mildiu velloso (Bremialactucae), una de las peores enfermedades
de la lechuga (Hutchinson, et al.1984; GISD, 2018).
Dadas sus características biológicas y ecológicas, y especialmente por ser vector de otros
organismos, un evento de invasión biológica de S. oleraceus en Bogotá podría representar
importantes impactos económicos, en particular en el área rural cuya vocación es en su
mayoría agropecuaria.
Medidas de control
Control biológico: En Australia se reporta que S. oleraceus es atacado por el ácaro
eriófido Aceria thalgi, cuyo comportamiento fue evaluado resultando como un
potencial controlador de este tipo de arvenses debido a que causa enrollamiento
severo de las hojas de la planta (Mc Carren & Scott, 2013). El hongo de la roya
Miyagia pseudosphaeria también ha presentado buenos resultados para el control de
la planta, pues inhibe su crecimiento y posiblemente la producción de semillas
(GISD, 2018).
Control mecánico: La labranza es usada también como un método de control para
agotar el banco de semillas, la cual se debe desarrollar inmediatamente con la
aparición de la planta; también retrasar la labranza hasta después de un brote de
emergencia reducirá la cantidad de semillas que persisten en el banco de semillas
hasta en un 30%. Se debe cuidar al hacer la labranza de no disponer las semillas a
una profundidad mayor a 2cm porque la población de S. oleraceus podría persistir
(Scott & Mc Carren, 1960 to 2010). El pastoreo es también un método de control,
ya que el ganado bovino y ovino puede acabar con las infestaciones en los pastos,
debilitando las plantas, además es un buen alimento para estos mamíferos (GISD,
2018).
Control químico: El control químico es uno de los más comunes para el manejo de
S. oleraceus, utilizando herbicidas los cuales actúan sobre las plántulas y
generalmente en barbechos donde se prestan las condiciones adecuadas para la
69
expansión de la especie (Scott & Mc Carren, 1960 to 2010). Un herbicida pre-
emergente que contenga Isoxaben (benzamida) se puede utilizar cuando las plantas
son jóvenes. De igual forma se pueden utilizar herbicidas selectivos a base de
metribuzina la cual es absorbida principalmente por las raíces y se concentra en las
partes vegetativas de la planta, inhibe la transformación de luz en energía,
bloqueando la acción de la clorofila y provocando que el follaje muera; sin
embargo, la selección del herbicida dependerá del cultivo donde se encuentre
creciendo S. oleraceus para no generar efectos secundarios en la vegetación
circundante (ROTAM, 2015)
Para el caso de Bogotá, dadas las experiencias en países con vocación agropecuaria, el
control más recomendado sería el mecánico y el químico con las debidas precauciones para
no alterar la vegetación adyacente. Respecto al control biológico se requieren de estudios
locales que evalúen la eficacia del uso de otros organismos para el manejo de plantas
arvenses sin que conlleve a impactos derivados sobre la estructura ecológica principal del
Distrito Capital (infestaciones, parasitismo o depredación sobre la flora nativa, por
ejemplo).
70
FAMILIA COMMELINACEAE
Tradescantia fluminensis Vell.
Figura 21. Forma de crecimiento y características de T. fluminensis.
Fuente: Ángela Contreras, Paola Espinosa, José A. Muñoz
Descripción
Es una planta herbácea, perenne, rizomatosa
con una altura de 30-50 cm, sus tallos son
decumbentes y enraizantes en los nudos,
con muchas ramificaciones, sus hojas son
glabras ovado-lanceoladas, carnosas y
lustrosas, dispuestas de forma alterna de un
color verde oscuro y purpura o de color blanco por el envés, por lo general con 5 a 7
nervios con márgenes onduladas y vaina membranosa en la base; con inflorescencias a
manera de cimas terminales, flores trímeras, es decir con tres sépalos y tres pétalos
blanquecinos, están sostenidas por 1-3 brácteas foliáceas que sobrepasan al pedicelo.
Androceo con 6 estambres, Fruto en forma de cápsula trilocular, semillas negras (CABI,
2018; Talavera & Gallego, 2018; Sanz-Elorza et. al., 2004).
TAXONOMÍA
Orden Commelinales
Familia Commelinaceae
N. científico Tradescantia fluminensisVell.
Nombres comunes Sueldaconsuelda, cinta (JBB,
2018b)
Usos reportados Ornamental, medicinal (JBB,
2018b)
71
Información geográfica
Es nativa de Sureste de Brasil y Norte de Argentina (Fowler, 2013), puede encontrarse
distribuida además en Europa, Macaronesia, Este de África tropical, Sur de África, oeste
del Océano Índico, Indo-China, este de Asia, Australasia, Estados Unidos y oeste de
Suramérica (GBIF, 2018).
Esta reportada como invasora en 19 países: Australia, Burundi, Chile, Ecuador, España
(incluyendo Islas Canarias), Estados Unidos, Etiopía, Francia (incluyendo el territorio de
ultramar de Córcega), Italia, Japón, Kenia, Nueva Zelanda, Portugal, Reino Unido (Sólo
territorio de ultramar de Islas Bermudas), Ruanda, Suazilandia, Sudáfrica, Tanzania,
Uganda (ISSG, 2017; ISSG, 2014; CABI, 2018; Swearingen, J., C. Bargeron. 2016; Sanz-
Elorza et. al., 2004; Marchante et. al., 2013; Witt, A., Luke, Q. 2017; Space, 2008).
Figura 22. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de T. fluminensis en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
A la fecha no hay ejemplares de herbario que permitan establecer su distribución en
Colombia, salvo los colectados en el Distrito Capital (JBB, 2018a). En Bogotá, es común
observarla en lugares húmedos cercanos a cuerpos de agua, en áreas de humedal, bordes de
carretera y creciendo en zonas de sotobosque. En humedales ya se reporta su
establecimiento (Díaz-Espinoza et al. 2012).
72
Características biológicas y ecológicas
Esta especie suele presentarse en áreas lluviosas o de alta humedad y de preferencia que
sean sombreadas; entre estos lugares se incluyen jardines, bordes de caminos y parques. Es
tolerante a lugares sombríos pero no soporta las heladas. La reproducción en los lugares
donde está reportada como naturalizada es comúnmente vegetativa, donde puede producir
nuevos individuos a partir de partes del tallo (éstos pueden permanecer viables durante un
tiempo y luego enraizar), dificultando las estrategias de control; sin embargo se puede
también reproducir sexualmente. Se ha reportado su dispersión por animales, agua y
actividades antrópicas (ISSG, 2014; Hogan, 2017)
Esta especie es capaz de crecer muy rápidamente, en especial en una iluminación media, se
afecta por la iluminación directa o por permanecer totalmente en la sombra; también puede
afectarse por las bajas de temperatura. Suele necesitar niveles altos de humedad edáfica,
prefiere suelos ricos en materia orgánica pero puede sobrevivir en suelos arenosos siempre
que tenga aporte hídrico. Ésta y otras especies del mismo género son ampliamente
utilizadas como plantas ornamentales, aprovechando su reproducción vegetativa (CABI,
2018; Sanz-Elorza et. al., 2004).
En Australia se comprobó que en ambientes urbanos, puede generar impactos en la fauna
doméstica, especialmente en perros, al ocasionar dermatitis por contacto(Dugdale &
Conran, 2015).
Características de la invasión e impactos
No se tiene indicios de su ruta de introducción al país. Dado el potencial ornamental de las
especies de este género, es posible que se haya ingresado a Colombia de forma voluntaria
tal y como se ha reportado en otras regiones del mundo (Dugdale, 2015).
Tradescantia fluminensis Vell.es una especie persistente en áreas naturales y seminaturales
donde recubre el suelo desplazando especies nativas propias de las coberturas terrestres
originales y reduce la abundancia y riqueza de plántulas; al aumentar su biomasa, se altera
la descomposición de la hojarasca modificando el ciclo de nutrientes (la hojarasca se
73
descompone más rápidamente en comparación con zonas no afectadas). De igual forma, se
cree que a partir de esta abundante descomposición de materia orgánica, se generan
microclimas que pueden influir negativamente comunidades de invertebrados, afectando la
biodiversidad de los bosques y áreas seminaturales en las que se pueden presentar
monocultivos de esta especie, llevando con el tiempo a la pérdida de hábitat. En Nueva
Zelanda, se comprobó que la pérdida de riqueza y abundancia de especies propias del
sotobosque es proporcional al aumento de biomasa de T. fluminensis, correlacionándose a
la vez con la disminución de las comunidades de coleópteros y dípteros (CABI, 2018;
Sanz-Elorza et. al., 2004; Seitz & Clark, 2016;Standish, 2003).
Medidas de control
Para el control y erradicación de esta especie se han utilizado distintos métodos químicos y
físicos, siendo éstos últimos beneficiosos especialmente a pequeñas escalas. En relación
con el control biológico se han realizado pruebas con escarabajos y algunos hongos con
buenos resultados (Hogan, 2017; Standish, 2002).
Control químico: Ha sido el método de control más eficaz en la erradicación de la
especie utilizado hasta el momento; el herbicida Grazon (picloram y metsulfuron
metil) con pocas dosis elimina la planta, presentando como beneficio su bajo costo y
su gran efectividad en eliminar las poblaciones con dosis periódicas; sin embargo en
sus desventajas se encuentra que puede afectar de manera perjudicial a la flora
nativa cercana, que después de la erradicación de T. fluminensis puede tardar varios
meses en regenerarse (Standish, 2002; McCluggage, 1998).
Control físico: Erradicar la planta a partir de corte o deshierbe ha demostrado ser
una método de control eficaz solamente en poblaciones reducidas, debido a que
toma bastante tiempo y debe realizarse varias veces para que la planta no vuelva a
regenerarse. Aunque en comparación con el control químico no genera daños a las
especies nativas (Standish, 2002).
74
Otro método que demostró un importante éxito en la reducción de las poblaciones
de Tradescantia fluminensis Vell fue el sombreado artificial, en el cual se cultivan
árboles de gran dosel con el fin de que el acceso de luz a T. fluminensis sea lo más
mínimo posible, limitando unfactor esencial para el crecimiento de la especie. Este
método reduce potencialmente la población y ha permitido que especies nativas
puedan recuperar su hábitat. (Standish, 2002).
En una eventual invasión biológica en la ciudad de Bogotá, el control manual como la
siembra de árboles sería el más aconsejable para reducir las poblaciones limitando el acceso
a luz; sin embargo se ha podido observar en algunas zonas cercanas a los Cerros Orientales
que T. fluminensis es capaz de crecer en ambientes oscuros, por lo que en estos casos un
control químico y el control físico ayudarían a mantener bajos los niveles poblacionales
siempre y cuando sean bien aplicados ya que de lo contrario podría auspiciar la
colonización de especies con potencial de invadir zonas disturbadas con los potenciales
impactos que estos procesos conllevan.
75
FAMILIAOXALIDACEAE
Oxalis corniculataL.
Figura 23. Forma de crecimiento y características de O. corniculata.
Fuente: Paola Espinosa, Ángela Contreras, José A. Muñoz
Descripción
Hierba perenne, estolonífera, glabra a
pubescente con tricomas simples,
blanquecinos, tallo rastrero o decumbente,
fibroso, color verde rojizo hacia la base,
enraizamiento en los nudos; hojas compuestas, trifoliadas, los folíolos de color verde a
púrpura, lámina subcordada con una muesca apical; base del pecíolo de hasta 5 cm.
Presenta de 1 a 3flores por cada pedúnculo axilar, piloso; flores regulares, cáliz verde
pentalobulado, basalmente connado, corola con 5 pétalos, de color amarillo claro,
basalmente connados; 5 estilos, 10 estambres repartidos en dos series de alturas diferentes
de cinco cada una; anteras con dehiscencia longitudinal, ovario súpero. Fruto a manera de
cápsula, erecta, semicilíndrica de ápice agudo, pilosa y también con dehiscencia
longitudinal, de hasta 28 mm de longitud. Las semillas obovoides, comprimidas, marrones,
con crestas transversales, generalmente marrones o con manchas grises o blancas o líneas a
lo largo de las crestas(Lovett, et. al., 1985; Fuentes, 2011).
TAXONOMÍA
Orden Oxalidales
Familia Oxalidaceae
N. científico Oxális corniculata L.
Nombres comunes No reporta
76
Información geográfica
Su región de origen y diversificación no es clara, algunos autores creen que es nativa de
algún lugar de Asia tropical, Malasia, Australasia o de las islas altas del Pacífico occidental
o que probablemente surgió en el Nuevo Mundo y se haya introducido en regiones
templadas (Lovett, 1985). Es una hierba cosmopolita, distribuida por toda Europa, África,
Asia templada (excepto Siberia), Asia tropical, Australasia, Pacífico, Norteamérica y
Suramérica (GBIF, 2018)
Esta especie está reportada como invasora en 38 países: Argentina, Australia, Brasil,
Bulgaria, Camboya, Canadá, Chile, China, Corea del Sur, Estados Federados de
Micronesia, Estados Unidos (sólo Estado de Hawaii), Filipinas, Francia (Sólo territorios de
ultramar Mayotte y Polinesia Francesa), India, Indonesia, Islas Fiji, Islas Marianas, Islas
Marshall, Israel, Italia, Japón, Malasia, Mauricio, Mozambique, Niue, Nueva Zelanda
(incluyendo Islas Cook), Omán, Reino Unido (incluyendo Islas Caimán y Anguilla), Rusia,
Samoa, República de las Seychelles, Singapur, Tailandia, Taiwán, Turquía, Vietnam,
Zambia, Zimbabue (GRIIS, 2018; GISD, 2018; CABI, 2018; Reddy, 2008; Sekar, 2012).
Figura 24. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de O. corniculata en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
77
En Colombia, O. corniculataestá distribuida en los departamentos de Antioquia, Boyacá,
Caldas, Cauca, Chocó, Cundinamarca, Huila, Magdalena, Nariño, Putumayo, Santander,
Tolima y Valle hasta los 3.200 metros de altitud(Bernal et. al., 2015).En Bogotá es común
encontrarla en potreros, orillas de caminos, andenes, en diferentes zonas verdes, también
como planta arvense en jardineras y en diversos sitios con algún tipo de alteración
antrópica.
Características biológicas y ecológicas
O. corniculata es común en regiones tropicales y templadas de todo el mundo, en
elevaciones desde cerca del nivel del mar hasta aproximadamente 2.800 m, creciendocomo
planta arvense a lo largo de caminos y senderos en lugares húmedos, pastos, lugares de
desechos, suelos cultivables y en sitios poblados por el hombre; no obstante, la germinación
y/o propagación de esta especie no tiene un buen desempeño a la sombra aunque hay
estudios que lo relacionan a zonas sombrías (CABI, 2018).
Sus semillas son pegajosas y se adhieren a los objetos donde caen, pueden caer a distancias
de hasta 2m, debido a que las cápsulas son dehiscentes y su apertura se lleva a cabo hacia el
lado abaxial. Las semillas están encerradas en un arilo liso y erecto que se divide
repentinamente a lo largo de una sutura abaxial y se vuelve hacia adentro. Esta acción
expulsa la semilla generando una reacción en cadena que resulta en la dispersión de la
mayoría de las semillas en una cápsula en muy poco tiempo (CABI, 2018).
Esta especie posee una reproducción vegetativa muy atenuada y una alta capacidad
regenerativa; la producción de semillas es elevada bajo condiciones ambientales
favorables,(temperatura de 17 grados centígrados aprox.)yen menor cantidad en otro tipo de
condiciones como zonas sombrías y a temperaturas más elevadas. Las semillas son
longevas y tienen elevada resistencia a las condiciones desfavorables, su germinación no
requiere especialización, puede ser discontinua, inducida o autocontrolada (CABI, 2018).
De esta forma en el suelo existe siempre un banco de semillas de la especie en diferentes
condiciones climáticas y tipos de sustrato (Gonçalveset al. 2007).
En cuanto a la germinación, se reporta un crecimiento rápido de las plántulas, una
producción continua de flores, frutos y semillas; los tallos y hojas son resistentes al daño
78
mecánico, también tiene capacidad regenerativa alta, incluso en los órganos por encima del
suelo,como fragmentos de la planta o individuos completamente desarraigados que pueden
sobrevivir formando raíces adventicias en los nudos del tallo o bien, rebrotar después de
habersido eliminada su parte aérea (CABI, 2018).
Características de invasión e impactos
Se desconoce la ruta de introducción de O. corniculataal continente americano. Dada su
amplio rango de distribución, probablemente ingresó a la región de forma involuntaria, sin
embargo, no se tienen antecedentes verídicos de ello.
Esta especie al parecer, se vale de su potencial alelopático para colonizar con éxito
ambientes disturbados; genera un efecto inhibidor sobre la germinación y el crecimiento de
otras plantas debido a los altos contenidos de ácido oxálico (Hódi, et al., 2010)
Además de los tejidos vivos, el exudado de las hojas secas de Q. corniculata L. también
generan un efecto alelopático por su alto contenido en oxalatos; De acuerdo a Itaniet
al.,(1999) se evidencia la inhibición del crecimiento de la raíz de lechuga, en un 10% (en
condiciones controladas).
No son claros los potenciales impactos que esta especie supondría en una eventual invasión
biológica en Bogotá, dada su plasticidad ambiental. Sin embargo, y partiendo del principio
de precaución, se deben tomar medidas preventivas para su manejo especialmente en
ecosistemas sensibles del Distrito como humedales, rondas de quebradas y áreas de páramo.
Medidas de control
Según Malik et. al., (2012) O.corniculata presenta diferenciación poblacional debido a
variaciones locales de las condiciones de su hábitat. Dicha situación se debe a variaciones
morfológicas como respuesta adaptativa a alteraciones en el régimen ambiental
relacionadas con la disponibilidad de luz, humedad y de nutrientes.
79
Ante situaciones de estrés ambiental, la especie puede modificar varios caracteres como su
hábito de crecimiento, su arquitectura foliar y reducir su tamaño. Dada esa capacidad de
resiliencia, se considera a O. corniculata como una especie de “maleza” de difícil control y
erradicación, por lo que se sugiere acudir al manejo químico (Malik, et. al 2012).
Sin embargo y como en el caso de otras especies de arvenses, pueden implementarse
estrategias de manejo integral, que combine el control químico, el biológico y el mecánico,
y que para el contexto del Distrito Capital, se pueden proponer estudios en los que se
indague sobre especies locales con potencial depredador y/o competitivo, prácticas
tradicionales de cultivo aplicables al manejo en ecosistemas y el uso de agentes
alelopáticos, que en suma faciliten el manejo de la especie en las áreas en las cuales tiene
potencial invasor.
80
FAMILIA POLYGONACEAE
Rumex obtusifolius L.
Figura 25. Forma de crecimiento y características de R. obtusifolius.
Fuente: Paola Espinosa, Ángela Contreras, José A. Muñoz
Descripción
Planta perenne de hasta 1.5 metros de alto,
tallos erectos, ramificados a veces teñidos de
pardo o púrpura; hojas basales anchamente
ovado-oblongas, cordadas o subcordadas en
la base, obtusas a subagudas, glabras o pilosas por el envés en los nervios, márgenes
normalmente enteros, planos u ondulados; las láminas cortas o iguales a los peciolos.
Inflorescencias terminales, simples, arqueadas, verticilos distantes, los pedicelos filiformes;
Flores de 10-25 verticilos laxos, valvas ovadas-triangulares, de base truncada, márgenes
con 1 a 2 dientes a cada lado cerca a la base, tubérculo de hasta 2,5 mm, prominente,
desarrollado por lo general en una sola de las valvas, las demás generalmente con tubérculo
rudimentario. Aquenios de color marrón a rojizo (Freeman y Reveal, 2005).
TAXONOMÍA
Orden Caryophyllales
Familia Polygonaceae
N. científico Rumex obtusifolius L.
Nombres comunes No reporta
81
Información geográfica
Rumex obtusifolius L.es nativa de Europa y el oeste de Asia (Castroviejoet.al., 1990) y se
encuentra distribuido además en Japón, Australia, Norteamérica y Suramérica. (GBIF,
2018).
Esta especie se encuentra reportada como invasora en 43 países: Afganistán, Albania,
Alemania, Argentina, Armenia, Australia, Austria, Azerbaiyán, Bélgica, Brasil, Canadá,
República Checa, Eslovaquia, Chile, China, Dinamarca, Ecuador, España, Estados Unidos,
Francia (incluyendo Isla Reunión), Hungría, India, Irlanda, Italia, Japón, Lesoto, Namibia,
Nueva Zelanda, Países Bajos, Perú, Polonia, Reino Unido, Rusia, Sudáfrica, Ucrania,
Uruguay, Venezuela, Bosnia y Herzegovina, Croacia, Eslovenia, Macedonia, Montenegro,
Serbia(GRIIS, 2018; GISD, 2018; CABI, 2018; Atlas -USA, 2018; Herrera, et al. 2016).
Figura 26. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de R. obtusifolius en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
En Colombia se distribuye entre los 1.500 y 3.000 metros de altitud en los departamentos
de Antioquia, Nariño, Santander y Valle. (Bernal et. al., 2015).En Bogotá es frecuente
observarla en potreros, borde de caminos, humedales y zonas de pastos y cultivos en el área
rural.
82
Características biológicas y ecológicas
R. obtusifoliuses una hierba arvense, encontrándose entre las especies más estudiadas a
nivel mundial por ser una de las cinco plantas no cultivadas de mayor distribución global.
Esta hierba puede persistir durante varias temporadas y es común encontrarla en pastizales
y áreas de cultivos. A pesar de que puede sobrevivir en todo tipo de suelos, es escasa en
suelos ácidos (Gilgen, sf.;Zaller, 2004).Los individuos de R. obtusifolius pueden vivir
durante al menos cinco años y probablemente mucho más tiempo. La producción de
semillas puede variar de menos de 100 semillas a más de 60.000 semillas por año,
acelerándose la germinación en presencia de luz. Las semillas pueden seguir siendo viables
aún después de años de estar enterradas en el suelo, y para cuando éste sea removido o
alterado, las semillas comenzarán su germinación, por lo quelas actividades agropecuarias
son el principal regenerador de esta especie. A partir de la tercera y cuarta semana de la
apertura de la flor, el fruto logra su máximo de peso. Esta especie se puede dispersar a una
distancia considerable de manera anemocora, hidrocora o a través del estiércol del ganado
después de pasar por el sistema digestivo de éste. En otros casos los frutos caen al suelo
germinando en racimo cerca de la planta madre (Foster, 2012; Zaller, 2006; Pino, et. al.,
1995).
A partir de la parte superior de la raíz, las plantas de esta especie son capaces de producir
nuevos individuos, siendo el tallo la estructura principal involucrada en el crecimiento
clonal ya que produce raíces adventicias capaces de convertirse en nuevas raíces principales
y fragmentarias después de la muerte en tallos viejos. El tamaño de los fragmentos también
determina el número de yemas presentes y afecta el tamaño de los nuevos individuos en las
primeras etapas de desarrollo (Pino, et. al., 1995).
Características de invasión e impactos
R. obtusifolius se encuentra reportada además como una especie adventicia, por lo que se
presume que su llegada al país fue involuntariamente (Bernal et. al., 2015), quizá durante la
época colonial al igual que muchas plantas de este tipo, sin embargo, no se tienen a la fecha
indicios detallados de su ruta ni vectores de introducción.
83
Esta especie compite fuertemente por diferentes recursos con plantas de importancia
agrícola y es tóxico en grandes cantidades para la mayoría del ganado (debido a su alto
contenido de ácido oxálico), reduciendo así la calidad y cantidad de forraje duro o ensilado
(Gilgen, sf.). Después de la floración, la ingesta de bovinos y ovinos cae significativamente,
debido a los ácidos orgánicos y derivados de naftaleno y antraquinona en el tejido vegetal.
También ejerce un control alelopático sobre la geminación y el crecimiento radicular de los
pastos, además de que su rendimiento está relacionado al porcentaje de cobertura, así que es
inminente el impacto sobre las coberturas vegetales ya que una vez su raíz principal se ha
establecido y comienzan a crecer las subyacentes, les es muy difícil a otras especies la
supervivencia debido a la competencia por agua y nutrientes edáficos (CABI, 2018; GISD,
2018).
En condiciones naturales, las semillas germinan principalmente en suelo recientemente
cultivado. Hasta después del primer año de vida, su propagación aún no será un peligro
debido a que la raíz no se ha desarrollado por completo y las plantas no son competitivas y
tampoco resistentes a las perturbaciones, se puede decir que en este tiempo los cultivos no
correrán riesgo. Sin embargo, cuando el tamaño de la raíz principal aumenta se
desarrollarán raíces secundarias y las raíces subterráneas se fragmentan
(clonación),crecimiento que inicia aproximadamente a partir del segundo año de floración y
que representa el aumento de la población dela especie(Foster, 2012; Pino, et. al., 1995).
Medidas de control
Al igual que otros tipos de arvenses, la propagación y el establecimiento de Rumex
obtusifolius L. ha sido estudiado principalmente en sistemas agrícolas, en donde se han
identificado como factores que facilitan estos procesos, el tipo de labranza, las
características de los suelos y las relaciones ecológicas. El manejo no químico de la especie
incluye varias medidas entre las que se cuentan el control biológico, las prácticas culturales
(control mecánico) y el control de factores físicos.
Control biológico: Para el control biológico, en literatura se reportan insectos
(principalmente coleópteros), hongos, bacterias y virus, que actúan por herbivoría,
84
parasitismo o infección. En el caso de los escarabajos que depredan a R. obtusifolius
se cuentan a los del género Gastrophysa (principalmente G. viridula) y los cuales
tienen efectos en la producción de semillas, la regeneración, el crecimiento de
brotes y hojas, y alterando la cobertura vegetal (Zaller, 2004). Por su parte, el
“hongo del óxido” Uromyces rumicis afecta principalmente las hojas y raíces,
representando una reducción significativa del peso seco de las plantas infectadas
(Foster, 1989).
Para incrementar la efectividad del control biológico, es recomendable la acción
simultánea de más de un agente, en el caso se ha estudiado que la combinación de
U. rumicis con G. viridula representa una incidencia con un efecto aditivo
evidenciado en la reducción del área foliar, del recrecimiento estacional, y en la
masa medida en peso seco de los brotes y raíces (Zaller, 2004).
Control mecánico: En cuanto a las prácticas de control mecánico, se cuenta el
incrementar la labranza por medio de arado, la rotación de cultivos, pastoreo
regulado, y remoción antes de la etapa de producción de semillas. Así mismo, es
importante implementar dichas medidas a largo plazo para así maximizar su
efectividad (Zaller, 2004).
En otros estudios sobre la respuesta de Rumex obtusifolius L. a la luz y la
temperatura, han indicado que el control de estos factores tiene una incidencia
importante en la germinación, la producción de biomasa y el crecimiento foliar
(McLaren & Smith, 1978; Benvenuti, Macchia, & Miele, 2001).
Control químico: Para que el control de Rumex obtusifolius L. en los ecosistemas
urbanos y rurales del Distrito Capital tenga una máxima eficacia, se sugiere la
implementación de estrategias integrales que combinen control biológico y manejo
mecánico. Respecto al manejo mecánico y control de variables físicas, los arreglos
florísticos en procesos de restauración ecológica pueden contemplar especies
forestales que propicien sombra en áreas infestadas por R. obtusifolius, dado que
este es un factor limitante para su crecimiento y germinación.
85
FAMILIA ROSACEAE
Prunus serótina Ehrh.
Figura 27. Forma decrecimiento y características de P. serotina.
Fuente: Ángela Contreras, José A. Muñoz
Descripción
Es un árbol caducifolio de hasta 20 metros y
70 cm de diámetro en su tronco, perenne.
Corteza áspera, de color negro, rojo oscuro o
pardo, sus hojas son simples, alternas,
oblongo-ovadas a lanceoladas-oblongas, de
margen aserrado, de color verde lustroso y
dispuestas helicoidalmente. Presenta
inflorescencias a manera de racimos de hasta
15 cm de largo y con hasta 30 flores fragantes, distribuidas irregularmente por el raquis.
Corola blanca, ápice redondeado, entre 16 y 20 estambres organizados en dos series. Los
frutos son drupas globosas o subglobosas de color rosa hasta púrpura-negras cuando
maduras de 8-10 mm de diámetro (CABI, 2018; Barrie, 2011).
TAXONOMIA
Orden Rosales
Familia Rosaceae
N. científico Prunus serotina
Nombres comunes Cerezo, capulí (JBB,
2018b)
Usos reportados
Ornamental,
agroecológico,
medicinal, maderable,
ambiental (JBB, 2018b)
86
Información geográfica
P. serotina presenta un amplio rango de distribución comprendido entre la región de
Norteamérica y Guatemala (Marquis, 1990). Se ha introducido además a toda Europa,
África tropical, Sur de África, Cáucaso, Oeste de Asia, China, Australasia, Norteamérica y
Oeste de Suramérica (GBIF, 2018).
Esta especie está reportada como invasora en 14 países: Alemania, Bélgica, Bulgaria,
Dinamarca, Hungría, Italia, Letonia, Países Bajos, Polonia, Reino Unido, República Checa,
Sudáfrica, Suecia, Suiza (ISSG, 2017; CABI, 2018; Hulme, 2005; s.a., 2018).
Figura 28. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de P. serotina en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
En Colombia se reporta como establecido en los departamentos de Cundinamarca, Boyacá,
Antioquia, Huila y Nariño entre los 1.700 y 3.000 metros de altitud (SiB, 2018; Bernal et.
al. 2015). En Bogotá es ampliamente utilizando en el arbolado urbano por lo que es usual
encontrarlo en separadores de avenidas, andenes y zonas verdes.
87
Características biológicas y ecológicas
P. serotina es una especie que puede colonizar nuevos ambientes, especialmente lugares
perturbados de manera sencilla, prefiere los suelos eutróficos que no están muy secos y se
ve favorecida por el uso de fertilizantes orgánicos, químicos y entrada de nitrógeno
atmosférico, aunque puede crecer en distintas variedades de suelo, se le dificulta el
crecimiento en suelos muy secos o muy húmedos. Posee propiedades resistentes al estrés
por la depredación de insectos como la toxicidad de su corteza y hojas debido a la presencia
de ácido cianhídrico, efectiva contra los ataques de insectos, aunque en el caso del ganado
suelen aprovechar las hojas jóvenes para alimentarse; presenta además tolerancia a áreas de
sombra; es una especie con crecimiento rápido, presente en lugares sombreados, aunque sus
plántulas pueden sobrevivir en la sombra por 3 a 5 años, sin llegar a tener un gran tamaño.
Presenta un sistema reproductivo hermafrodita y una regeneración natural de manera fluida,
con una cubierta protectora del suelo, además presenta una descomposición rápida de la
hojarasca que proporciona un humus con un alto contenido nutricional; también ayuda a la
mejora de los suelos arenosos pobres en nutrientes. Produce bastantes semillas que son
dispersadas en ocasiones por mamíferos y principalmente por aves, la mayor dispersión se
produce a partir de los 5 años de vida del árbol. Es una especie intolerante a la
competencia, presentándose como dominante del espacio, en las situaciones que no puede
serlo tiende a disminuir su crecimiento y morir (CABI, 2018; Muys, 1992; Marquis, 1990)
En condiciones naturales, esta especie tiene un promedio de producción de 10.600 semillas
al año. La dispersión de semillas es efectiva por ornitocoria, por lo que se ve fuertemente
afectada si el árbol se encuentra muy cerca a otras especies semilleras; la dispersión de las
semillas no supera los 100 metros después de un periodo de 20 años de edad del árbol, la
máxima dispersión reportada es de 600 metros y un almacenamiento de semillas corto de 3-
5 años. La germinación es mucho mayor cuando las semillas han pasado por el tracto
digestivo de las aves, sin embargo, al pasar por el tracto digestivo del ganado las semillas
no pueden germinar; no se requiere de condiciones ambientales particulares ni se ha
comprobado que esté totalmente relacionada con procesos de perturbación, pero para una
oportunidad de germinación se facilita de acuerdo a las condiciones del suelo y la
disponibilidad de luz, que facilita el rápido crecimiento de las plantas beneficiando que
88
alcancen una altura favorable así como un nivel de vida prolongado (Muys, 1992; Marquis,
1990; Vanhellemont, 2009)
Igualmente, esta especie es capaz de reproducirse vegetativamente creciendo desde
fragmentos que brotan rápidamente, especialmente en pleno sol; las plántulas que se liberan
y caen al suelo formarán brotes bien formados del collar de la raíz. Estos brotes son de gran
importancia para la regeneración del árbol, el árbol es capaz de regenerarse después de ser
cortado, la propagación de las especies es más rápida en paisajes abiertos que en bosques,
las perturbaciones naturales como las tormentas benefician la propagación de P. serotina;
sin embargo esta brotación sucede en árboles de menos de 40-50 años. La especie es muy
vulnerable a las lesiones por fuego, incluso los árboles adultos pueden morir por incendios
moderados o severos, pero generalmente rebrotan a menos que se mantenga el fuego,
igualmente es intolerante a las inundaciones (Marquis, 1990; Vanhellemont, 2009)
Características de la invasión e impactos
En Norteamérica se popularizó su propagación a partir del siglo XIX por su potencial
maderable, e incluso se cultivó en otras regiones del continente como estrategia de
prevención frente a incendios forestales junto con especies de coníferas como Pinus
sylvestris L., y para el mejoramiento de suelos arenosos y sus frutos como alimento de
algunos animales silvestres, aunque también se ha encontrado que puede crecer a modo de
maleza, se vio favorecido por plantaciones repetidas y a gran escala. Su impacto ambiental
se genera debido a la capacidad de la especie de cambiar las condiciones del sitio abiótico,
alterar la biodiversidad, las copas densas de P. serotina modifican las condiciones de
entrada de luz y modifican la capa superior del suelo, afectando las condiciones del humus
y la disponibilidad de agua en el suelo debido a una mayor intercepción y transpiración; el
contenido de fósforo se ha encontrado mayor debajo de los árboles que en otras áreas, en
áreas abiertas como pastizales, P. serotina beneficia el crecimiento de vegetación leñosa,
que podría hacer que desaparezcan especies raras o que estén en peligro de desaparecer en
hábitats abiertos. En los bosques, los arbustos densos de esta especie pueden actuar como
una capa recalcitrante, que dificulta la regeneración de otras especies leñosas teniendo un
89
impacto en el desarrollo forestal de estos ecosistemas. Entre sus impactos económicos se
encuentra el sobrecosto que ocasiona la actividad de tala y la extracción de madera siendo
su control lento y costoso (Meersschaut, 1997; Muys, 1992; Vanhellemont, 2009).
A la facilidad de colonizar espacios perturbados se le suma la capacidad de una abundante
producción de semillas, su nivel de toxicidad en la madera y en las hojas que impiden que
sea devorada por insectos; según (Arbeláez, 1931) podrían existir casos de infección en
niños y animales (ovejas).
Medidas de control
Control físico: Se recomienda cortar los suministros de nutrientes y agua que llegan
al árbol, lo que eventualmente ocasiona su muerte. Otro método es la tala de los
árboles en alturas desde 1 metro, a la vez que se eliminan los brotes de las hojas, lo
que afectará las condiciones de vida del árbol, impidiendo su regeneración; otro
método utilizado es el pastoreo en áreas vulnerables. Sin embargo estos método es
considerado muy costoso debido a que se necesita mínimo un hombre por hectárea
para arrancar las plántulas y para los árboles adultos se necesita maquinaria pesada
(Meersschaut, 1997; Muys, 1992; Vanhellemont, 2009)
Control biológico: Para el control de esta especie se ha utilizado al hongo
Chondrostereum purpureum utilizado en Flanders (Bélgica)como el agente de
control biológico (micoherbicida); este hongo es un saprófito de madera muerta y
tiene cualidades parasitarias especialmente en la familia Rosaceae. En condiciones
naturales las basidiosporas son capaces de germinar en las heridas frescas que se
encuentren en el árbol; una vez que germina el micelio, está en la capacidad de
colonizar la madera hasta que sean visibles los síntomas de la enfermedad, se
observa una decoloración plateada en las hojas dando un aspecto opaco y reluciente.
Esto se da debido a una serie de toxinas segregadas por el micelio, que afectan la
savia llegando hasta las hojas donde pueden rasgar la epidermis; todo este fenómeno
dificulta en gran medida la capacidad de desarrollar la fotosíntesis y transpiración,
por lo que lleva a la muerte del árbol. También se ha utilizado en países de Europa
90
como en los Países bajos al ganado para que se alimenten de las plántulas de P.
serotina teniendo un control relativo de la especie (Meersschaut, 1997;
Vanhellemont, 2009).
Esta especie en Bogotá aún no reporta indicios de crear poblaciones importantes que
suponga algún impacto ambiental, socioeconómico o de salud pública en la región. Sin
embargo, dados sus antecedentes de invasión y partiendo del principio de precaución se
deben establecer monitoreos periódicos en las zonas donde se reporta su presencia,
especialmente en aquellas periurbanas y rurales donde la especie dispone de las condiciones
necesarias para establecerse exitosamente.
91
FAMILIA SOLANACEAE
Datura stramoniumL.
Figura 29.Forma de crecimiento y características de D. stramonium.
Fotos cortesía de Andreas Rokstein y Harry Rose.
Descripción
Sufrútice anual, en la juventud finamente
pubescente, glabra en estado adulto; olor
característico, raíz principal pivotante, corta y
con numerosas raíces secundarias de
tendencia superficial. Tallo erecto, cilíndrico con ramificación dicotómica, puede presentar
pelos simples muy esparcidos, tonalidad purpúrea con tintes verdes; hojas largamente
pecioladas, simples, alternas, limbos en ocasiones cuneados en la base, márgenes sinuadas,
leve acanalación en la superficie adaxial; Inflorescencia reducida a una sola flor axilar.
Flores actinomorfas, hermafroditas, ebracteadas, cortamente pediceladas, cáliz tubuloso con
sépalos soldados en un tubo con 5 lóbulos desiguales. Corola en forma de trompeta de
tonalidad purpúrea con cinco puntas; fruto erecto, pericarpo armado con espinas cortas y
romas. (Fuentes, 2011;Matuda, 1952; Flora Ibérica, 2018; Rodríguez & Delgado, 1975).
TAXONOMIA
Orden Solanales
Familia Solanaceae
N. científico Datura stramonium L.
Nombres comunes No reporta
92
Información geográfica
Datura stramonium L. es originaria de México y el sur de Estados Unidos (Luna, 2008;
Weaver y Warwick, 1984). Se encuentra distribuida en Europa, África, Península arábiga,
oeste de Asia, Subcontinente indio, China, este de Asia, Australasia, Pacífico, Norteamérica
y Suramérica (GBIF, 2018).
Esta especie está reportada como invasora en 28 países: Andorra, Australia, Bolivia,
Botsuana, Burundi, Chile, China, Croacia, Cuba, Ecuador (incluyendo Islas Galápagos),
España (incluyendo Islas Canarias), Estados Unidos, Etiopía, India (Región del Himalaya),
Islas Fiji, Israel, Japón, Kenia, Nueva Zelanda, Portugal, Reino Unido (Sólo territorio de
ultramar de Anguila), Ruanda, Sudáfrica, Suiza, Taiwán, Tanzania, Uganda, Zimbabue.
(GRIIS, 2018; CABI, 2018; USDA -Noxius, 2018; Atlas-USDA, 2018; Regalado,
2012;Fuentes, et al. 2014; Campos, 2001; Sanz-Elorza, et al. 2005; Inv. Portugal, 2018;
IBER, 2018; SEKAR, 2012; Axmacher & Sang, 2013; Matthews & Brand, 2004;
Henderson, 2001; Witt 2017; PIER, 2018).
Figura 30. Información sobre distribución nativa y reportes de invasión de D. stramonium en el mundo.
(Elaborado por José A. Muñoz).
93
En Colombia se encuentra distribuido en los departamentos de Antioquia, Boyacá,
Cundinamarca, Huila, Nariño, Norte de Santander, Tolima y Valle en altitudes de hasta
2.600 metros (SIB Colombia, 2018; Bernal et. al., 2015).
Características biológicas y ecológicas
D. stramonium es una planta anual que es invasora en casi todas regiones templadas y
tropicales del mundo, prefiere suelos ricos en nitrógeno, arenosos - limosos húmedos,
puede soportar suelos secos y pedregosos pero su nivel de germinación reduce su
viabilidad. (Sanz-Elorza et. al., 2004). La característica ecológica principal de esta especie
es la morfología de las flores, son grandes, en forma de campana, además son aromáticas y
tienen alto contenido de néctar. Su principal forma de dispersión es debido a los
organismos polinizadores, donde se encuentra principalmente la llamada polilla de halcón
(del género Macroglossum), seguido de las abejas nectaríferas que suelen llegar en las
horas de la tarde a polinizar; además también se habla de las aves terrestres que se acercan
a las flores por su olor y en menor medida llegan a ser polinizadoras. D. stramonium es
altamente autosuficiente y puede producir semillas por autogamia, los frutos son cápsulas
espinosas de hasta 4 cm de largo y puede contener hasta 650 semillas (Kleunen, et al.
2007) .D. stramonium tiene un banco de semillas muy persistente, donde las semillas
pueden germinar en cualquier época del año, sin embargo le favorecen las épocas lluviosas
para la emergencia de las semillas a la superficie del suelo a 10cm. Después de la
fertilización, las semillas maduran y se dispersan de las cápsulas durante épocas de clima
ligeramente frío, hasta un 91% de las semillas resultan ser fértiles. (Weaver &
Warwick,1984; Sanz-Elorza et. al., 2004).
Datura stramoniumL. Se encuentra en la mayoría de los tipos de suelos. En algunas áreas
se asocia exclusivamente con suelo perturbado rico en abono, como zonas de pastoreo o
con vocación agropecuaria, por ejemplo.
94
Características de invasión e impactos
Datura stramonium L. también está reportada para el país como adventicia, por lo que se
presume que su tipo de introducción a Colombia fue involuntario (Bernal et. al. 2015). A la
fecha no se tienen certeza del vector de la introducción.
Es una planta que contiene diversos alcaloides tropánicos potencialmente tóxicos como la
hiosciamina y la escopolamina debido a ello es una planta alucinógena. Su ingestión,
voluntaria o accidental, puede producir serios efectos tóxicos e incluso la muerte. La
hiosciamina es un éster de la base tropina con el ácido tropánico. Cuando se extrae, se
manipula la l-hiosciamina, e incluso en la planta seca, se transforma en una mezcla
racémica llamada l-hiosciaminao mejor conocida como atropina. La atropina en forma de
sulfato, al ser ingerida puede presentar signos clínicos o síntomas como midriasis,
taquicardia, arritmias, agitación, convulsiones y coma. En cuanto a la escopolamina, se
trata de un éster también del ácido tropánico, pero esta vez con la base escopina, también
conocida por el nombre de hioscina. El diagnóstico al consumo esta especies clínico y el
tratamiento debe ser precoz, incluyendo descontaminación gastrointestinal, medidas de
soporte y fisostigmina en casos con compromiso vital. El pronóstico habitualmente es
favorable. (Castañón, 2013; Bofill, 2007).Todas las partes de la planta principalmente las
semillas contiene estos alcaloides tóxicos lo que hace que se vea afectado el ganado y
animales silvestres herbívoros alterando la estructura trófica del ecosistema, además la
invasión de Datura stramonium L. llega a formar poblaciones densas como manchones y/o
matorrales que generan el desplazamiento de las plantas nativas, por ello la invasión de esta
especie genera impactos principalmente económicos ya que está asociada con el campo
agrícola (Sanz-Elorza et. al., 2004).
D. stramonium también genera un impacto ambiental siendo los lixiviados de las semillas
potentes inhibidores de la germinación de otras especies. Los alcaloides se lixivian de la
cubierta de la semilla antes de que ésta germine, su latencia puede romperse en la superficie
del suelo o en la profundidad, en cualquiera de los casos se libera en el medio producto
químico con potencial inhibidor sobre otras especies. (Lovett, et al.1981).
95
Medidas de control
Control biológico: Según Boyete, et al. (1991) el hongo Altenaria crassa puede
infectar y matar las plántulas de D. stramonium en una amplia gama de condiciones
ambientales.
Dos escarabajos se ven asociados a D. stramoniumL. ya que están presentes en la
mayor parte de su rango geográfico, Lema trilineata y Epitrix parvula. El primero
se encuentra en D. stramonium L., excepto las etapas pupales y el segundo es un
principal herbívoro de la planta, puede eliminar hasta el 100% de la superficie
filtrada de las plantas individuales y consume su follaje principalmente durante los
primeros años de vida. El daño que produce este insecto consiste en pequeños
agujeros en la lámina de la hoja, sin embargo esto es proporcional a la cantidad de
coleópteros asociados a cada plántula. También las hembras de Trichobaris biwelli
(coleóptero) ovipositan sobre las hojas de D. stramonium siendo éstas el alimento de
las larvas, lo que evidentemente afecta a la planta como tal. (Sanz-Elorza et. al.,
2004; Nuñez & Dirzo, 1994).
En México por ejemplo, el saltamontes Sphenarium purpurascens conocido
localmente como "chapulin", pese a ser una especie generalista, su presencia en las
plantas de D. stramonium L. indica que puede ser un controlador biológico eficiente.
(Nuñez & Dirzo, 1994).
Control químico: existen herbicidas que pueden controlar la invasión de D.
stramonium, y el control mecánico o manual de esta especie es eficaz. (Sanz-Elorza
et. al., 2004).
96
6.7. Implementación de la Herramienta I3N
Como se señaló en la metodología, se implementó la herramienta I3N (Zalba y Ziller,
2008)para evaluar el riesgo potencial de invasión de las 10 especies establecidas
priorizadas. La herramienta I3N cuenta con 29 criterios los cuales se encuentran
distribuidos como se muestra en la tabla 8.
Tabla 8.Criterios de evaluación comprendidos en la metodología de I3N.
Categorías Nro. de criterios Descripción de criterios
Riesgo de
establecimiento
e invasión
10
Antecedentes de invasión
Ajuste climático
Amplitud ecológica
Capacidad de establecimiento
Velocidad de crecimiento y maduración
Reproducción vegetativa
Producción de semillas
Dispersión natural de las semillas
Dispersión asociada a actividades humanas (intencional).
Dispersión asociada a actividades humanas (accidental).
Impacto potencial
11
Capacidad de crecer formando núcleos densos y cerrados
Capacidad de producir compuestos alelopáticos
Riesgo de hibridación con especies nativas
Toxicidad para la fauna silvestre
Propicio hospedador de parasitos o patógenos
Aumento en la frecuencia y/o intensidad de los incendios
Alteración de otros procesos o funciones ecosistémicas
Cambios en la estructura del hábitat y/o forma de vida
dominante
Impacto potencial de la especie sobre la economía
Impacto potencial sobre la salud humana
Impacto potencial sobre valores culturales y sobre usos
tradicionales de la tierra
Factibilidad de
Tipo de ambiente (acuático o terrestre)
Presencia de espinas o aguijones
Capacidad de rebrote
97
control
8 Tiempo generacional mínimo
Banco de semillas
Respuesta al pastoreo
Respuesta al fuego
Métodos de control conocidos
Cada uno de estos criterios permite daruna visión de la capacidad de invasión de la
especie, reconociendo los aspectos que favorecen el establecimiento e invasión, el
crecimiento poblacional, identificar los posibles impactos que puede producir y que
métodos de control son más favorables para cada caso.
En la tabla 9 se presenta el resultado de la aplicación de la herramienta mencionada.
Éste fue un ejercicio de evaluación de las especies a partir de información secundaria y
observaciones en campo, y pese a que se evidenció un fuerte vacío de información
sobre la ecología y biología de estas plantas en sistemas colombianos (nivel de
incertidumbre asociado a criterios sin calificar), se denota un alto riesgo de invasión.
Tabla 9. Se observan los resultados del nivel de riesgo de las especies, su categoría y el nivel de
incertidumbre.
Especie Nivel de riesgo Categoría Nivel
incertidumbre
Sonchus oleraceus (L.) L. 5,31 ALTO 3,45
Oxalis corniculata L. 5,25 ALTO 3,45
Rumex obtusifolius L. 5,44 ALTO 3,45
Conyza bonariensis L. 5,44 ALTO 3,45
Conium maculatum L. 5,69 ALTO 3,45
Hedera helix L. 5,61 ALTO 6,9
Cirsium vulgare (Savi) Ten. 6,45 ALTO 6,9
Tradescantia fluminensis Vell. 5,07 ALTO 10,34
Prunus serotina Ehrh. 4,84 REQUIERE MAYOR ANÁLISIS 6,9
Datura stramonium L. 6,56 ALTO 3,45
Nota: Riesgo bajo: 1,0 - 2,99; Riesgo moderado: 3,01 – 4,0; Requiere mayor análisis: 4,01-
5,00 y Riesgo alto: 5,01 - 10,0.
98
Como se puede observar en la tabla anterior la mayoría de las especies se encuentran en
una categoría de invasión alta de acuerdo al nivel de riesgo que se registró con la
aplicación de la herramienta, donde la especie con un el nivel de riesgo menor fue T.
fluminensis, presentado un muy alto nivel de incertidumbre en comparación a las demás
especies, esto debido a la falta de información de sus métodos de reproducción y
ecología de la especie.
C. vulgarey D. stramonium fueronlas especies priorizadas con los niveles de riesgo más
altos; sin embargo el nivel de incertidumbre de D. stramonium es menor que el de C.
vulgare mostrando una mayor confiabilidad debido a que no presenta tantos vacíos de
información y el nivel de riesgo está mejor soportado. En el caso de P. serotina se
clasificó en la categoría “Se requiere mayor análisis”, con un nivel de riesgo de 4, 84 y
un nivel de incertidumbre considerablemente alto, estos datos pueden deberse a la falta
de información que se presenta de los aspectos ecológico, biológicos y reproductivos de
la especie en ambientes similares a los de Colombia, generando dificultad en el
momento de medir el riesgo de invasión de esta especie de acuerdo a la características
del Distrito Capital.
En el anexo 7 se presenta la matriz completa con la evaluación de cada una de las
especies y sus respectivos puntajes con el uso de la herramienta I3N, esta actividad se
desarrolló a partir de la recopilación de información segundaria especializada
reportadaen el anexo 8.
De acuerdo a Baptiste et al.,(2010), las especies con riesgo de invasión alto según I3N
deberían ser catalogadas como plantas invasoras en Colombia, sin embargo, dado el
nivel de incertidumbre (% de criterios sin evaluar) y el vacío de información encontrado
de cada una de las especies en relación a su biología, ecología y comportamiento en
sistemas tropicales se requiere de un análisis más exhaustivo para llegar a ese objetivo.
Pese a esto, el ejercicio de este trabajo constituye una primera alerta sobre el potencial
invasor de estas especies no nativas establecidas en el país.
99
6.8. Manuscrito para publicación con el análisis de la información recopilada durante
la investigación.
Se estructuró un manuscrito para publicación enfocado en la implementación de la
Herramienta I3N y los resultados que se obtuvieron según el nivel de riesgo de cada
especie para generar una alerta sobre la probabilidad de que alguna de éstas pueda
comportarse como invasora en Bogotá. La versión preliminar de este manuscrito se
reporta en el anexo 9y se espera se pueda ajustar y someter próximamente a la revista
señalada en la metodología.
100
7. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
• La búsqueda de registros de especies no nativas se dificultó por el acceso a los
repositorios de las universidades y a la validez de los taxones encontrados en tesis
(presencia real de las especies apoyadas por ejemplares de herbario y actualidad en
los nombres científicos).
• De acuerdo a las plataformas y documentos especializados consultados para el
reporte de invasiones de las especies no nativas establecidas en Colombia y
presentes en Bogotá, 134 especies tienen al menos un reporte de invasión en otras
regiones del mundo, información que puede permitir establecer estrategias de
prevención en el Distrito Capital, cuyas coberturas vegetales con diversas presiones
antrópicas son susceptibles a eventos de invasión biológica tal y como se ha
evidenciado en los últimos años con especies como el retamo espinoso (Ulex
europaeus), retamo liso (Genista monspessulana), pasto kikuyo (Cenchrus
clandestinus) y ojo de poeta (Thunbergia alata).
• Se priorizaron diez especies establecidas en Colombia y que presentan reportes de
invasión en otras regiones del mundo, estas especies fueron: Sonchus oleraceus L,
Oxalis corniculataL., Rumex obtusifoliusL., Conyza bonariensisL., Conium
maculatumL., Hedera hélixL., Cirsium vulgare(Savi) Ten., Tradescantia
fluminensisVell, Prunus serótinaEhrh. y Datura stramoniumL.; esta priorización se
realizó teniendo en cuenta el número de reportes, la frecuencia en que se observan
en la ciudad, ejemplares de herbario colectados en el Distrito, nombres y usos
comunes reportados para Bogotá y teniendo en cuenta para algunas, su potencial
tóxico. A partir de bibliografía secundaria se obtuvo información sobre las
estrategias de invasión de las especies priorizadas. Sin embargo, éstas son
específicas de cada especie y están relacionadas con el hábitat que invaden.
• Muchas de las especies no nativas que crecen en el país han sido introducidas de
forma involuntaria como el caso de Sonchus oleraceus L., Conyza bonariensis
L.,Rumex obtusifolius L. y Datura stramonium L., y pese a la revisión bibliográfica,
en el caso de las especies priorizadas, no se tiene indicios claros de su ruta y
101
vectores de introducción. Este tipo de estudios son relevantes para el diseño de
estrategias de prevención y control de especies invasoras.
• A partir de este estudio se demostró la necesidad de mayores estudios que aporten a
la información acerca de las tasas de crecimiento, métodos de reproducción
vegetativa y estrategias de dispersión de las especies no nativas como en el caso de
P. serotina que dificultan la capacidad de reconocer a esta especie como invasora.
• A partir de la revisión bibliográfica, las especies priorizadas en una eventual
invasión biológica en la ciudad, representarían importantes impactos
socioeconómicos, ambientales y en algunos casos de salud pública especialmente en
las áreas periurbanas y rurales del Distrito como casos de intoxicación en animales,
problemas o daños en la piel en los seres humanos por contacto. Existe mucha
literatura sobre mecanismos de control mecánico, químico y biológico de estas
especies, sin embargo, se deben generar estudios puntuales para estos últimos dada
la compleja dinámica ecológica de los sistemas tropicales.
• La herramienta I3N para el análisis del riesgo de invasión de plantas, es un
instrumento que permite evaluar el potencial invasor de una especie, sin embargo,
es dependiente de la calidad y cantidad de información disponible sobre la especie
evaluada y de la experticia del grupo de profesionales evaluadores. En un primer
ejercicio en base a información secundaria y a sencillas observaciones en campo, se
comprobó el latente riesgo que representan las especies priorizadas en el Distrito
Capital, pese al enorme vacío de información sobre la ecología y biológica de éstas
en sistemas tropicales.
• La información presentada permite dar una primera alerta sobre el riesgo de
invasión de algunas especies no nativas que ya se encuentran establecidas en el
Distrito Capital como son Sonchus oleraceus L., Oxalis corniculata L., Rumex
obtusifolius L., Conyza bonariensis L., Conium maculatum L., Hedera hélix L.,
Cirsium vulgare (Savi) Ten., Tradescantia fluminensis Vell., Prunus serótina Ehrh.
y Datura stramonium L. con el fin de diseñar estrategias para el control y
propagación de las mismas, especialmente de aquellas con usos ornamentales
102
8. BIBLIOGRAFÍA
Arbelaez, E. (1931). Plantas venenosas en Colombia. Revista de Medicina Veterinaria, (pp.
189-198), 3(23). Bogotá, Colombia.
Asteraceae. 5(2). En G., Davidse, M., Sánchez, S. Knapp, & Cabrera.C (eds.) Flora
Mesoamericana. Missouri Botanical Garden, St. Louis.Recuperado de
http://www.tropicos.org/Name/50307371?projectid=3&langid=66
Axmacher, J., & Sang, W. (2013). Plant invasions in China–challenges and chances. PloS
one, 8(5), e64173.
Bajwa, A. A., Sehrish, S., Hafiz, H. A., Khawar, J., Arslan, M. P., & Bhagirath, S. C.
(2016). Biology and management of two important Conyza weeds: a global
review.Environmental Science and Pollution Research, 23(24), 24694–24710.
Baptiste M.P., Castaño N., Cárdenas D., Gutiérrez F. P., Gil D.L. y LassoC.A. (eds). 2010.
Análisis de riesgo y propuesta de categorización de especies introducidas para
Colombia. Bogotá D.C., Colombia: Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt.
Barrie, F.R. (2011). Flora Mesoamericana, Volumen 2(3), Rosaceae, (pg 66). Missouri
Botanical Garden.
Benvenuti, S., Macchia, M., & Miele, S. (2001). Light, temperature and burial depth effects
on Rumex obtusifolius seed germination and emergence. Weed Research, 41(2),
177-186.
Bernal, R., S.R. Gradstein & M. Celis (eds.). (2015). Catálogo de plantas y líquenes de
Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia,
Bogotá. Recuperado de http://catalogoplantasdecolombia.unal.edu.co
Binggeli, P. (2005). Crop Protection Compendium, Hedera helix L.
Bofill FX., Bofill J., Such G., Piqué E y Guitart R. (2007).Dos casos de intoxicación por
contaminación de maíz con Datura stramonium en ganado vacuno. Facultad de
Veterinaria, España: UniversidadAutónoma de Barcelona, Bellaterra.
Brummitt, R. (2001). World geographical scheme for recording plant distributions, 2sd
edition. International Working Group on Taxonomic Databases for Plant Sciences
(TDWG).
Buitrago, E., García, J. & Ramírez, H. (2018). La agroecología como aporte a la
construcción social y ambiental para el buen vivir en la zona rural de
Bogotá.Jardín Botánico José Celestino Mutis. Flora Capital Vol. 14. Bogotá,
Colombia.
Campos, J. (2001). Flora exótica de la Reserva de Biósfera de Urdaibai. Gobierno Vasco,
Departamento de Medio Ambiente y Ordenación del territorio. Dirección de
Biodiversidad y Participación Ambiental. España.
103
Castañón L., López, J., Martínez P., Badás, S., Gómez J., García L. (2013). Intoxicación
por Datura stramonium poisoning. Anales de Pediatría. Servicio de Pediatría. Vol.
53,(Pg. 53-55) Hospital de León
Cárdenas-López, D., Arboleda, N. C., yCárdenas-Toro, J. (2011). Plantas introducidas,
establecidas e invasoras en Amazonia colombiana. Bogotá D.C: Instituto
Amazónico deInvestigaciones Científicas – SINCHI.
Cárdenas-Toro, J., Baptiste M.P, Ramírez W. y Aguilar G,M. (eds.) (2015). Herramienta
de decisión para la gestión de áreas afectadas por invasiones biológicas en
Colombia. Bogotá, D. C., Colombia: Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt.
Cárdenas-López, D., Baptiste M.P. y Castaño N. (eds). (2017). Plantas exóticas con alto
potencial de invasión en Colombia.Bogotá D.C: Instituto de Investigación de
RecursosBiológicos Alexander von Humboldt.
Castells, E. Berhow, M, Vaughn, S & Berenbaum, M. (2005). Geographic variation in
alkaloid production in Conium maculatum populations experiencing differential
herbivory by Aganopterix alstroemeriana. Journal of Chemical Ecology, 31(8).
United States. DOI: 10.1007/s10886-005-5921-x
Castroviejo, S., Laínz, M., López-González, G., Montserrat, P., Muñoz F., Paiva J., y
Villar, L. (Eds.) (1990). Flora Iberica: Plantas vasculares de la Península Ibérica
e Islas Baleares. Vol II: Platanaceae-Plumbaginaceae. Madrid: Real Jardín
Botánico.
Centre for Agriculture and Bioscience International - CABI (2018). Invasive Species
Compendium. CAB International. Wallingford, UK. [En línea]. Disponible en:
https://www.cabi.org
Coll, O.,Remes Lenicov, A., Agostini, J.P & Paradell, S. (2000). Detection of Xylella
fastidiosa in Weeds and Sharpshooters in Orange Groves Affected with Citrus
Variegated Chlorosis in Misiones, Argentina. Fourteenth IOCV Conference.
Insect-Transmitted Procaryotes. (pg: 216-222).
Datura stramonium L. in GBIF Secretariat (2017). GBIF Backbone Taxonomy. Checklist
Dataset https://doi.org/10.15468/39omei accessed via GBIF.org on 2018-05-08.
Díaz-Espinosa, A., Díaz-Triana J. y O. Vargas. (eds). (2012). Catálogo de plantas
invasoras de los humedales de Bogotá. Grupo de Restauración Ecológica de la
Universidad Nacional de Colombia y Secretaría Distrital de Ambiente.Bogotá,
D.C., Colombia.
Drewitz, J. (2014). Invasive Plants of California´s Wildland. California Invasive Plant
Council. United States.
104
Dugdale, T. M., McLaren, D. A., & Conran, J. G. (2015). The biology of Australian weeds
65.'Tradescantia fluminensis' Vell. Plant Protection Quarterly, 30(4), 116.
Eckell, O. A. (1965). Los teratogenéticos a la luz de la patología comparada. Academia
Nacional de Agronomía y Veterinaria, Buenos Aires, Argentina.
Fernández, J., Galindo, A & Idrobo, J. (2007). Las plantas como evidencia legal.
Desarrollo de la botánica forense en Colombia. Revista Académica Colombiana
Ciencia Botánica. 31(119)(pp.181-198). Colombia.
Fuentes, N, et. al.,(2011). Flora arvense del altiplano Cundiboyacense de Colombia.
Universidad Nacional de Colombia. Bayer CropScience. Colombia.
Fuentes, N., Sánchez, P., Pauchard, A., Urrutia, J., Cavieres, L. y Marticorena, A. (2014).
Plantas invasoras del Centro-Sur de Chile: Una guía de Campo. Chile: Laboratorio
de Invasiones Biológicas. Recuperado de: http://www.lib.udec.cl/wp-
content/uploads/2017/11/plantas-invasoras.pdf
Foster, L. (2012) The Biology and Non-chemical Control of Dock Species Rumex
obtusifolius and R. crispus. Biological Agriculture y Horiculture. An International
Journal for sustainable production systems. Great Britain.
Foster, L. (1989). The Biology and Non-Chemical Control of Dock Species Rumex
obtusifolius and R. crispus. Biological Agriculture & Horticulture, (pp.11-25).
García-Barriga, H. (1992). Flora Medicinal de Colombia (2da ed.).Bogotá: Tercer Mundo
Editores.
Gilgen, A., Singnarbreux, C., Feller, U., & Buchmann. (s.f.). Competitive advantage of
Rumex obtusifolius L. migth temperate grasslands under drier climate. Institute of
Plant Sciences, ETH Zurish, Switzerland. Institute of Plant Sciences, University of
Bern, Bern, Switzerland.
Gomaa, N., Hassan, M., Fahmy G., Gonzàlez, L., Hammouda, O. & Afleya, A. (2014).
Alelopathic effects of Sonchus oleraceus L. on the germination and seedling
growth of drop and weed species. Acta Botánica Brasílica. Brasil.
Gonçalves, A., De Carvalho, R, Soares, I. & Felfili, J.(2007).Bancos de sementes do sub-
bosque de Pinus spp. e Eucalyptus spp. Na flona de Brasília. Brasil.
Gutiérrez, F. (2006). Estado de conocimiento de especies invasoras. Propuesta de
lineamientos para el control de los impactos. Bogotá, Colombia: Instituto de
Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt.
Hassan, M., Gomaa, N., Fahmy G., González, L., Hammouda, O. & Afleya, A., (2014).
Influence of Sonchus oleraceus L. Residue on soil properties and growth of some
plants. Philipp Agric Scientist. Vol. 97. España.
105
Henderson, L., (2001). Alien Weeds and Invasive Plants. Plan Protection Research Institute
Agricultural Research council. Acomplete guide to declared weeds and invaders in
South Africa, including another 30 species invasive in that region. South Africa.
Herrera, I., Goncalves, E., Pauchard, A., y Bustamante, R. O. (Eds.). (2016). Manual de
plantas invasoras de Sudamérica. Chile: Instituto de Ecología y Biodiversidad.
Recuperado de:
https://www.researchgate.net/publication/309491289_Manual_de_plantas_invasor
as_de_Sudamerica
Hillman, J. (1997). Potentially Allelopathic Effects of Poison Hemlock (Conium
maculatum) on Native Plant Revegetation at Wilder Ranch State Park. California
Exotic Pest Plant Council. United States
Hogan, A., Myerscough, M. (2017). A Model for the Spread of an Invasive Weed,
Tradescantia fluminensis.Society for Mathematical Biology. Springer. DOI
10.1007/s11538-017-0280-7
Hódi, A., Hódi, L., Palkovics, L. (2010). Comparative study of the allelopathic effects of
invasive wood sorrels (Oxalis corniculata L., Oxalis dillenii Jacq.). In Hungary.
Corvinus University of Budapest,Government Office for Csongrad County, Plant
Protection and Soil Conservation Directorate. Hungry.
Hutchinson, I. A., Colosi, J., & Lewin, R. A. (1984). The Biology of Canadian weeds: 63.
Sonchus asper (L.) Hill and S. oleraceus L. Canadian Journal of Plant Science,
64(3), (pp.731-744).
Ibrahim, M., Mahmood, S., Yasin, G. & Bashir, N. (2012). Oxalis corniculata a Successful
Lawn Weed: A study of morphological variation from contrasting
habitats.Pakistan Journal of Botany. Pakistan.
Invasive Species Specialist Group - ISSG (2014). The Global Invasive Species Database -
GISD, International Union for Conservation of Nature (IUCN). Auckland, New
Zealand. [En línea]. Disponible en: http://www.iucngisd.org
Invasive Species Specialist Group - ISSG (2017). Global Register of Introduced and
Invasive Species - GRIIS, Global Invasive Alien Species Information Partnership
(GIASIP). Auckland, New Zealand. [En línea]. Disponible en:
http://www.griis.org
Itani, T., Fujita, T., Tamaki, M., Kuroyanagi, M., (1999).Allelopathic activity and oxalate
content in oxalate-rich plants. Hiroshima Prefectural.Univ., Shobara. Japan.
Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis - JBB (2018b). Plataforma de nombres
comunes de las plantas de Bogotá. Disponible en:
http://colecciones.jbb.gov.co/nombrescomunesbogota
106
Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis (2018a). Disponible en:
http://colecciones.jbb.gov.co/herbario.
Klein, H. (2011). Bull thistle, Cirsium vulgare. Alaska Natural Heritage Program.
University of Alaska.
Kleunen, M., Fischer, M., Johnson, S., (2007). Reproductive Assurance through self-
fertilization does not vary with population size in the alien invasive plant Datura
stramonium. Centre for invasion biology, school of biological and conservation
Sciences.
Kok, L & Gassmann, A. (2002). Bull Thistle (Spear Thistle). Biological Control of Invasive
Plants in the Eastern United States, USDA, Forest Service Publication, (Pg:247-
250).
Lopez, et al. (1999). Biochemistry of hemlock (Conium maculatum L.) alkaloids and their
acute and chronic toxicity in livestock. A review. Toxicon, Vol 37. Elsevier
Science Ltd.
Lovett, J., Levitt, J., Duffield, A., Smith, G. (1981). Allelopathic Potential of Datura
stramonium L. (Thorn apple). Departament of agronomy and Soil Science.
University of New England Armidale N.S.W. 2351, and Biomedical Mass
Spectrometry unit, University of New Wales. Kensington. N.S.W 2033 Australia.
Lovett, L., MacKinnon & Lovett, J. (1985). Biology of Canadian Weeds. Oxalis stricta L.,
O. corniuculata L., O. dillenii Jacq. ssp., dillenii and O. dillenii Jacq. ssp. filipes
(Small) Eiten. Massachusets, Estados Unidos.
Malik, M. I., Mahmood, S., Yasin, G., & Bashir, N. (2012).Oxalis corniculata as a
successful lawn weed: A study of morphological variation from contrasting
habitats. Pakistan Journal of Botany, (pp. 407-411).
Marchante, E., Morais, M., Marchante, H., Schreck, C., Freitas, H., Carvalho, V. y Gamela,
A. (2013). Plantas Invasoras em Portugal. Escola Superior Agrária de Coimbra
and Centre for Functional Ecology, Univeristy of Coimbra, Portugal. Disponible
en: http://invasoras.pt/en/species-fact-sheets/
Marquis, D. A. (1990). Prunus serotina Ehrh. Black cherry. Silvics of North America, 2,
(pg. 594-604).
Mathews, S. & Brand, K. (2004). Africa invaded. GISP, The Invasive Species Programme
the Growing Danger of Invasive Species. Africa.
Matuda. E., (1952). El Género Datura en México. Sociedad Botánica de México, Vol. 14.
México
107
McCluggage, T. (1998). Herbicide trials on Tradescantia fluminensis. Conservation
Advisory Science Notes No. 180. Department of Conservation, Wellington, New
Zealand.
McGeoch, M. A., Genovesi, P., Bellingham, P. J., Costello, M. J., McGrannachan, C., &
Sheppard, A. (2016). Prioritizing species, pathways, and sites to achieve
conservation targets for biological invasion. Biological Invasions, 18(2), (pp. 299-
314).
McLaren, J., & Smith, H. (1978). Phytochrome control of the growth and development of
Rumex obtusifolius under simulated canopy light environments. Plant, Cell and
Environment,(pp. 61-67).
Meersschaut, V., Lust, N. (1997). Comparison of mechanical biological and chemical
methods for controlling Black cherry (Prunus serotina) in Flanders (Belgium).(pp.
90-109).
Michaux, B. (1989). Reproductive and vegetative biology of Cirsium vulgare (Savi) Ten.
(Compositae: Cynareae). New Zealand Journal of Botany, 27(3) (pp. 401-414),
doi: 10.1080/0028825X.1989.10414121
Mora Goyes, M.F., Rubio, J.A., Gutiérrez, R. & Barrera Cataño, J.I. (2016). Catálogo de
Especies invasoras del territorio CAR. Bogotá: Editorial Pontificia Universidad
Javeriana, CAR.
Muys, B., Maddelein,D & Lust, N. (1992). Ecology, practice, policy of Black Cherry
(Prunus serotina Ehrh.) Management in Belgium. International Conference of
Forest Vegetation Management, Auburn Alabama.
Nieto-Feliner, G., Jury, S. L., & Herrero, A. (Eds.). (2003). Flora ibérica. Plantas
vasculares de la Península Ibérica e Islas Baleares. (Vol. 10. Araliaceae-
Umbelliferae). Madrid: Real Jardín Botánico, CSIC.
Nuñez, J. & Dirzo, R. (1994). Evolutionary Ecology of Datura stramonium L. in central
México: Natural selection for resistance to herbivorous insects. Centro de
Ecología, Departamento de Ecología Evolutiva, Universidad Nacional Autónoma
de México. DF México.
Okerman, A. (2000). Combating the “Ivy Desert”: The Invasion of Hedera helix (English
Ivy) in the Pacific Northwest United States. Department of Horticultural Science,
University of Minnesota. 6(4).
Orr, S., Johnson, B., Gibson, K., Rehder, C. (2013). Conium maculatum. Indiana. Non
native plant invasiveness ranking form. United States.
Panter, K.E., Welch, K.D., Gardner, D.R., Lee, S.T., Green, B.T., Pfister, J.A., Cook, D.,
Davis, T.Z & Stegelmeier, B.L. (2012). Poisonous plants of the United States. In:
108
Ramesh C. Gupta, editors, Veterinary Toxicology. Oxford: Academic Press, (pp.
1029-1079).
Paulsen, E; Christensen, L & Andersen, K. (2010). Dermatitis from common ivy (Hedera
helix L. subsp. helix) in Europe: past, present, and future.University of Southern
Denmark. Contact Dermatitis. Vol 62, (pp. 201-209).
Pava, R., Ortíz, S & Quiroga C. (2018).La Agroecología en Bogotá ciudad -región: Un
marco de pensamiento y de acción ambiental para una visión compartida del
territorio. Jardín Botánico José Celestino Mutis. Flora Capital Vol. 14. Bogotá,
Colombia.
Pérez-Arbeláez, Enrique. (1978). Plantas útiles de Colombia. Bogotá: Litografía Arco.
Peter G. L. Klinkhamer &Tom J. de Jong. (1993). Cirsium vulgare (Savi) Ten. Journal of
Ecology.
Philip Hulme (2005). Delivering Alien Invasive Species In Europe - DAISIE. European
Commission’s 6th Framework, Programme for Research, Technological
Development, & Demonstration Activities. [En línea]. Disponible en:
http://www.europe-aliens.org
Pino, J., Haggar, R., Sans F., Masalles, R., Sckuille, R., Halmiton (1995). Clonal growth
and fragment regeneration of Rumex obtusifolius L. BB SREC Institute of
Grassland an Inviromental Research, Plas Gogerddan. Aberystwyth, Difed, and
Departament of Biology vegetal. University of Barcelona, Spain.
Pokorny, M. (2018). Poison Hemlock, Conium maculatum. Montana State University Dept.
of Land Resources and Environmental Sciences. United States
(s.a)(2018). Invasive Species South Africa. Disponible en: http://invasives.org.za/
Reddy, C., (2008). Catalogue of invasive alien flora of India. Florestry and Ecology
Division, National Remote sesing Agency, Balanaga, Hyderabad 500037. India.
Regalado, L., González-Oliva, L., Fuentes, I & Oviedo, R. (2012). La Plantas invasoras.
Introducción a los conceptos básicos. Jardín Botánico Nacional. Instituto de
Ecología y Sistemática. Bissea, Vol. 6. Cuba.
Ríos, H., & Vargas, O. (2003). Ecología de las especies invasoras. Pérez Arbelaezia, 14,
(pp. 119-148).
Rodríguez, A. & Delgado, J., (1975). El cultivo de la Datura Metel. Hojas divulgadas,
Publicaciones de extensión agraria, Núm. 18. Madrid, España.
109
Rodríguez, A. y Muñoz, J. (2018). Aproximación a la diversidad de plantas vasculares no
nativas reportadas para la flora de Bogotá. Jardín Botánico de Bogotá José
Celestino Mutis. Documento en preparación.
ROTAM (2015). Ficha técnica herbicida Abax. Jiangsu Rotam Chemistry Co, Ltd.
Recuperado de:
https://www.rotam.com/andina/UserFiles/ufyhto/image/products/herbicidas/ecuad
or/FT_ABAX.pdf
Sankaran, K.V., Suresh, T.A. (2013). Invasive Alien Plants in the Forest of Asia and the
Pacific; Food and Agriculture Organization of the United Nations, Bangkok,
Thailand.
Sanz-Elorza, M., Dana, E. & Sobrino, E. (2005). Aproximación al listado de plantas
vasculares alóctonas invasoras reales y potenciales en las Islas Canarias.
Sanz-Elorza, M., Dana, E. & Sobrino E. (2004). Atlas de las plantas alóctonas invasoras en
España. Madrid: Dirección General para la Biodiversidad. Recuperado de:
http://www.mapama.gob.es/es/biodiversidad/temas/inventarios-
nacionales/inventario-especies-terrestres/inventario-nacional-de-
biodiversidad/ieet_flora_vasc_aloct_invas.aspx
Scott, J., Mc Carren., K. (2012). Biological Control of Weeds in Australia 1960 to 2010.
Australia.
Secretariat, GBIF. (2013). GBIF Backbone Taxonomy. Global Biodiversity Information
Facility. Disponible en: http://www.gbif.org/species/2879175
Seitz, C & Clark M. (2016). Identification, Biology, and Control of Small-Leaf Spiderwort
(Tradescantia fluminensis): A Widely Introduced Invasive Plant. The Institute of
Food and Agricultural Sciences (IFAS), University of Florida.
Sekar, K. (2012) Invasive Alien Plants of Indian Himalayan Region.Diversity and
Implication. GB. Pont Institute of Himalayan Environment y Development.
American Journal of Plant Sciences. Almora, India.
Space, J. (2008). Pacific Island Ecosystems at Risk - PIER. U.S. Forest Service’s Institute
of Pacific Islands Forestry. [En línea]. Disponible en:
http://www.hear.org/pier/index.html
Standish, R. (2002). Experimenting with methods to control Tradescantia fluminensis, an
invasive weed of native forest remnants in New Zealand.New Zealand Ecological
Society. New Zealand Journal of Ecology 26(2) (pp. 161-170).
Swearingen, J., C. Bargeron. (2016). Invasive Plant Atlas of the United States. University
of Georgia Center for Invasive Species and Ecosystem Health.
http://www.invasiveplantatlas.org/
110
Sweeting, R. (2011). Dispersal and Genetic Variability of Sonchus Oleraceus L. in relation
to its resistance to Als-Inhibiting herbicides. The University of Adelaide Waite
Research Institute South Australia. Australia.
Talavera, S.,& Gallego, M.J. (2018). Plantas Vasiculares de Peninsula Iberica e Islas
Baleares. Real JardínBotánico, Consejo Superior de Investigaciones Cientificas
CSIC. España.
Trezzi, M., Vidal, Patel, F., Mioto, E., Debastiani F., Balbinot, A. & Musquen, R. (2014)
Impact of Conyza bonariensis density and establishment period on scyabean grain
yield, yield components and economic fhreshold. Weed research An International
Journal of weed Biology, Ecology and Vegetation Management. Brazil
United States Departament of Agriculture - USDA (2018). Fire Effects Information System
FEIS. Forest Service Departament of Agriculture. United States of America. [En
línea]. Disponible en: https://www.feis-crs.org/feis/faces/SearchByOther.xhtml
United States Departament of Agriculture - USDA (2018c). Germplasm Resources
Information Network (GRIN-Taxonomy). Agricultural Research Service, National
Plant Germplasm System. [En línea]. Disponible en: https://npgsweb.ars-
grin.gov/gringlobal/taxon/taxonomyquery.aspx
Vetter, J. (2004). Poison hemlock (Conium maculatum L.). Food and Chemical Toxicology,
Vol 42.
Vanhellemont, M. (2009). Present and future population dynamics of Prunus serotina in
forests in its introduced range. PhD thesis, Ghent University, Ghent, Belgium
Walker, S., Boucher, L., Cook, T., Davidson, B., McLean, A., & Widderick, M. (2012).
Weed age affects chemical control of Conyza bonariensis in fallows. Crop
Protection, (pp. 15-20).
Weaver S. & Warwick S. (1984). The biology of Canadian weeds. 64. Datura stramonium
L.Canadian Journal of Plant Science, 64, (pp. 979–991).
Werth, J., Walker, S., Boucher, L., & Robinson, G. (2010). Applying the double knock
technique to control Conyza bonariensis. Weed Biology and Management.
Widderick, M. & Walker, S. (2009). Management of common Sowthistle. Fact sheet. QPIF,
Leslie Research Centre, Toowoomba. Australia.
Witt, A., Luke, Q., CABI. (2017). Guide to the naturalized and invasive plants of Eastern
Africa. Printed and Bound by Gutenberg Press Ltda. Tarxien, Malta.
Woodard, C. (2008). Poison Hemlock (Conium maculatum L.): Biology, implications for
pastures and response to herbicides. University of Missouri. United States.
111
Wu, Y.Z. (2007). Flora of China Treatments. Flora of China. Science Press and Missouri
Botanical Garden Press. Beijíng & St. Louis.
Wu, H. (2007). The biology of Australian weeds 49. Conyza bonariensis
(L.)Cronquist.Plant Protection Quarterly, 22(4).
Wu, H., Walker, S., Rollin, M., Tan, D., Robinson, G., Woth, J. (2007). Germination,
persistence, and emergence of flaxleaf fleabane (Conyza boniriensis L. Cronquist).
Weed Biology and Management, Vol. 7 Australia.
Wu, H., Walker, S., Robinson, G., & Coombes, N. (2010). Control of Flaxleaf Fleabane
(Conyza bonariensis) in Wheat and Sorghum. Weed Technology, (pp. 102-107).
Zalba, S., & Ziller, S. R. (2008). Herramientas de prevención de invasiones biológicas de
I3N: Manual de uso. Invasive Information Network (I3N). Florianópolis: The
Nature Conservancy.
Zaller, J. (2004). Ecology and non-chemical control of Rumex crispus and R. obtusifolius
(Polygonaceae): A revew. Institute of organic Agriculture. University of Bonn,
Bonn, Germany.
Zaller, J. (2006). Sheep grazing vs. cutting: regeneration and suil nutrient exploitation of
the grassland weed Rumex obtusifolius. Institute of Organic Agricultures.
University of Bonn. Vienna, Austria.
Zambrano, B. C. (2002). La biodiversidad bogotana. Editorial Revista La Tadeo,
Universidad Jorge Tadeo Lozano.Bogota.
Zimmermann, H. (1991). Biological control of spear thistle, Cirsium vulgare (Asteraceae),
in South África. Agriculture, Ecosystems and Environment, (pp. 199-205).
Elsevier Science Publishers B.V, Amsterdam
Zotz, G. (2006). In situ growth stimulation of a temperate zone liana (Hedera helix) in
elevated CO2.
112
9. ANEXOS
Todos los anexos excepto el anexo 5, se encuentran de forma digital en una carpeta adjunta
a este informe:
ANEXO 1. Instructivo para recolección de material de herbario del Herbario JBB
ANEXO 2. Instructivo para la elaboración de etiquetas de ejemplares de herbario.
ANEXO 3.Herramienta I3N
ANEXO 4.Matriz priorización especies.
ANEXO 5. Insumo trabajo de campo especies no nativas
ANEXO 6. Etiquetas material recolectado en campo
ANEXO 7. Matriz I3N evaluación especies
ANEXO 8.Bibliografía soporte evaluación I3N
ANEXO 9. Manuscrito para publicación
113
ANEXO 5. Plantas no nativas y metodologías para su observación y
reconocimiento como invasoras en campo
Cuando hay una introducción de especies a un ecosistema existen cinco categorías que las
clasifica según su función en el mismo, así pues se destacan las plantas naturalizadas al
hablar de plantas invasoras, ya que sólo aquellas son las que a pesar de no encontrarse en
su hábitat original se establecen de forma natural; no siempre que exista una planta
naturalizada se hablará de invasión; sin embargo el hecho que nos lleva a deducir su estado
de invasión concierne a características intrínsecas (de la planta), y extrínsecas (del
ecosistema), como se verá más adelante.
CARACTERÍSTICAS CLASIFICACIÓN
Especies que ocupan su área de distribución Nativa, autóctona, indígena
Especies que se encuentran fuera de su área de
distribución natural
Introducida, exótica, foránea, alóctona, no
nativa, importada.
Especies introducidas que se extienden de
forma autónoma, pero dependientes de sistemas
humanizados, o sin capacidad para perdurar en
los territorios ocupados -
Adventicia, sub espontánea, casual
Especies introducidas que se extienden a
ecosistemas naturales, donde tienen capacidad
de mantener poblaciones de forma autónoma
Naturalizada, establecida
Especies naturalizadas con gran capacidad de
propagación, en número de individuos y en
distancia
Invasora
Especies naturalizadas con gran capacidad de
propagación, capaces de alterar sustancialmente
los ecosistemas nativos y/o ocasionar impactos
económicos.
“Invasora”, transformadora, peste, plaga
Fuente: Tomado de Baptiste et. al., (2010).
114
Vilá et al. (2008) categoriza las plantas naturalizadas en dos formas: La primera
son las especies naturalizadas con gran capacidad de propagación, número de
individuos y distancia, denominadas plantas invasoras; la segunda son las
especies naturalizadas con gran capacidad de propagación, capaces de alterar
sustancialmente los ecosistemas nativos y/o ocasionar impactos económicos,
llamadas plantas invasoras, peste o plaga. De los dos grupos mencionados
anteriormente Gutiérrez F. (2006) los califica en cuanto al nivel de riesgo en 4.5
y 5 respectivamente.
Una especie con probabilidad de invasión posee las siguientes características:
La especie se reproduce y su vida no depende de los acondicionamientos
de la mano del hombre.
La reproducción de la especie es regular (por ejemplo, se produce en
distintas temporadas reproductoras)
Se reproduce en número suficiente como para pensar en un incremento
poblacional.
El intervalo durante el que se ha comprobado su reproducción (o durante
el que la especie ha estado presente) es superior a la longevidad de la
especie. (Capdevila, et. al., 2006).
Elevada tasa de crecimiento y reproducción (crecimiento vegetativo
rápido, maduración sexual temprana, alta producción de semillas).
Euritípica (amplio rango en variables ambientales, pH, humedad, etc.).
Plasticidad fenotípica (genotipo capaz de mostrar distintos fenotipos
adaptados a nuevas condiciones ambientales).
Producción de toxinas y sustancias alelopáticas.
Mecanismos de dormancia, resistencia, plantas semillas longevas - banco
de semillas
Mecanismos de dispersión a corta y larga distancia semillas aladas
(Pérez, 2013).
115
La propagación de las plantas según Martínezet. al., (2012) puede ser de la siguiente
manera:
Cárdenas (2017) comenta que la respuesta de las especies y los ecosistemas a los procesos
de invasión no siempre es predecible pero hay factores que pueden fomentar a que se
generen estos procesos en determinadas circunstancias. También habla de la importancia de
la producción y dispersión de semillas y la clonalidad; la clonalidad es la capacidad que
tiene la especie de dispersarse vegetativamente, generando individuos genéticamente
idénticos al parental con capacidad de seguirse reproduciendo, favoreciendo la dispersión y
establecimiento de la especie invasor. Algunas pueden presentar tricomas, espinas,
compuestos secundarios o exudados para reducir la depredación herbivoría y tener mayor
oportunidad de dispersión.
Fuente: Elaboración propia
Metodologías para trabajar con especies invasoras
Diaz (2012) en el Catálogo de plantas invasoras en los humedales de Bogotá nos enseña
una metodologías que a mi parecer está bastante bien estructurada y puede ser utilizada en
la investigación. Se trata de tres pasos que inicia en la fase de campo donde se hace un
muestreo, recolecta de especímenes y de material fotográfico; a partir de esto se pasa a la
fase de laboratorio donde se hace el reconocimiento de las muestras hasta especie si es
posible y se pasa a su búsqueda en la fase de análisis, donde las especies son buscadas en
bases de datos para reconocer su origen, antecedentes de invasión y bajo qué factores se
PROPAGACIÒN
Sexual
Asexual
Semillas Estructuras
vegetativas Cultivo de
tejidos
Expresión del
banco de
semillas
presentes en
el suelo
Fragmentos de
hojas o tallos,
turiones,
estolones,
rizoides,
tubérculos,
bulbos.
Fragmentación de
órganos de la
planta.
Semillas y
frutos
maduros
116
puede comportar como invasora. Sin embargo se puede estar perdiendo tiempo y esfuerzo
recolectando en la primera fase ya que al no haber profundizado en antecedentes y plantas
nativas o no nativas presentes en Bogotá, se pudieron haber tomado más muestras de las
necesarias y muchas de ellas de especies nativas. Considero que se debería iniciar con una
consulta de la vegetación en Bogotá y a partir de esa profundización ir mejor preparados a
campo.
Baptiste (2010) y Cárdenas (2012) recomiendan igualmente la recolecta de muestras en
distintas áreas que puedan tener presencia de plantas invasoras, la importancia de realizar
una preevaluación con listado de todas las especies mirando cuáles de ellas tienen mayor
número de reportes de invasión en el mundo, búsqueda en las bases de datos mundiales,
como segundo paso mirar cuáles de estas están incluidas en I3N Colombia, la cual da
como resultado una puntuación y determinación sobre en qué nivel de invasión se
encuentra la especie y cuáles han sido reportadas como naturalizadas en investigaciones
anteriores. En esta metodología la herramienta I3N es muy útil ya que categoriza a la
especie en tres niveles según su riesgo de invasión: Alto A (valores entre 5.01 y 10.0),
moderado M (valores entre 3.01 y 4.0), bajo B (valores entre 1.0 y 3.0) y requiere mayor
análisis R si no se sabe si ponerlo entre riesgo medio o alto (4.01 y 5.0) por lo que se
requiere más análisis. Estos resultados son proporcionados a través de una serie de
preguntas de la especie que tienen en cuenta aspectos ecológicos, reproductivos, número de
semillas, afectaciones al hombre, tolerancia a incendios, entre otras como explica Baptiste
(2010), que hacen que entre las metodologías esta sea la más robusta al momento de
estimar el riesgo de invasión. Este modelo da un nivel de incertidumbre que nos permite
saber el nivel de desconocimiento de la especie, para así saber si la especie puede ser
potencialmente trabajada o tiene muy pocos datos. Este sistema me parece muy importante
ya que nos da indicaciones del estado de invasión de la especie así como de la cantidad de
información que se tiene de esta, este paso es necesario utilizarlo en nuestra metodología ya
que nos ayuda a priorizar las especies que trabajaremos.
Calderón (2003) recomienda que con las plantas priorizadas se debe realizar una base de
datos completa de cada una de las especies, con datos de la especies como: taxonomía, uso,
117
impactos, importancia económica (si es que la tiene), otros nombres científicos usados,
presencia en Colombia, presencia en otros países, reproducción, categoría mundial, entre
otros aspectos. Esta propuesta es interesante ya que puede ordenarse a modo de tabla en la
cual se pongan todas las especies y se facilite la búsqueda de la información de las especies
y su comportamiento y antecedentes como invasora.
BIBLIOGRAFÍA
Baptiste M.P, et al. 2010. Análisis de riesgo y propuesta de categorización de
especies introducidas para Colombia. Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, D. C., Colombia. 200 p.
Calderón, E. 2003. Plantas invasoras en Colombia: Una visión preliminar. Instituto
Alexander Von Humboldt. Colombia.
Cárdenas, et al. 2011. Plantas introducidas, establecidas e invasoras en Amazonia
colombiana. Instituto amazónico de investigaciones científicas SINCHI, Colombia.
Cárdenas-López, D., Baptiste M.P. y Castaño N. (Eds). 2017. Plantas exóticas con
alto potencial de invasión en Colombia. Instituto de Investigación de Recursos
Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá D.C. pg 60.
Díaz-Espinosa A.M, et al. 2012. Catálogo de plantas invasoras de los humedales de
Bogotá. Grupo de Restauración Ecológica de la Universidad Nacional de Colombia
y Secretaría Distrital de Ambiente. Bogotá, D.C., Colombia. 248 p.
Capdevila, L., Iglesias, A., Orueta, j., Zilletti, B., 2006. ESPECIES EXÓTICAS
INVASORAS: Diagnóstico y bases para la prevención y el manejo. Madrid.
Martìnez, M. , Dìaz A., Vargas O. , 2012. Protocolo de propagaciòn de plantas
hidrìfilas y manejo de viveros para La rehabilitación ecològica de los parques
ecológicos distritales de humedal. Bogotà.
Pèrez, G., 2013, Problemàtica y reconocimiento de las especies invasoras, Badajoz.
Vilà, M. et. al., 2008, Invasiones biológicas, Madrid.